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Signagen/NUP54 Adenovirus/Category: Ready to Package Adenovirus/
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Signagen/NUP54 Adenovirus/Category: Ready to Package Adenovirus/
品牌 / 
Signagen
货号 / 
SL183329
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Product Information
Product Name: Nucleoporin 54kDa, cloned into our Ad
-MAX™ adenovirus expression system, ready to package.
Promoter: CMV
Storage Buffer: DMEM with 2.5% BSA, 2.5% glycerol
Turnaround Time: 5~6 weeks

Gene Information
Gene Name: Nucleoporin 54kDa
NCBI Acc. #: NM_017426
Gene Symbol: NUP54
Gene ID: 53371
GI Number: 26051236
Fusion Tag: No

Customized service is available with other promoters (CAG, U6, H1, UBC or Synapsin) and reporters (GFP, mRFP, Luc, LacZ, etc). Please request a quote with us.
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脂质体介导的真核细胞转染实验的相关实验步骤、实验技巧、实验protocol、实验经验及常见问题。用脂质体将DNA导人各种真核细胞的效率比其他转染方法更高,重复性更好。 查看更多>
SignaGen 是一家专注于开发和生产基因转导工具的企业,服务于生物医学研究领域。借助我们独有的技术平台(美国专利商标局号码为 072308 和 61135606),SignaGen 已经成功开发出三大类 DNA/siRNA 转染试剂,经验证我们的产品比市场上主导产品效率更高,细胞毒性更低。更重要的是我们提供一个合理的价位。 查看更多更新引用文献 more info Recent Product & Service Cit... 查看更多>
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X-tremeGENEsiRNA转染试剂是由sigma-aldrich西格玛奥德里奇(上海)贸易有限公司代理或销售的ROCHE品牌的试剂,产品来源于瑞士。sigma-aldrich西格玛奥德里奇(上海)贸易有限公司是中国最权威的X-tremeGENEsiRNA转染试剂试剂销售服务商之一,在上海等地方销售X-tremeGENEsiRNA转染试剂试剂已经多年。生物在线为您提供众多企业X-tremeGENEsiRNA转染试剂仪器产品及图片,以便挑选到性价比高,合适的X-tremeGENEsiRNA转染 查看更多>
相关专题 脂质体介导是目前条件下最方便的转染方法之一,适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,其转染率高,优于磷酸钙法,比它高5~100倍,能把DNA和RNA转染到各种细胞。 用LR进行转染时,首先需优化转染条件,应找出该批LR对转染某一特定细胞适合的用量、作用时间等,对每批LR都要做:第一,先要固定一个DNA的量和DNA/LR混合物与细 ... 查看更多>
上海通善生物科技有限公司是qiagen DNA转染试剂盒专业供应商,价格低,质量好,批次最新,免费技术指导,免费产品代测,免运费,服务周到,是国家重点实验室及国内各大院校长期指定供应商。qiagen DNA转染试剂盒品牌的核心供应商——上海通善生物公司简介如下:依托复旦大学,集研发、销售、实验室技术服务于一体的高科技企业。产品领域:分子生物学、细胞生物学、细菌学、遗传学、免疫学、生物化学、蛋白质学、细胞治疗、临床应用等领域。qiagen 查看更多>
慢病毒专用转染试剂LentiFit™是由汉恒生物科技(上海)有限公司代理或销售的hanbio品牌的试剂,产品来源于上海。汉恒生物科技(上海)有限公司是中国最权威的慢病毒专用转染试剂LentiFit™试剂销售服务商之一,在上海等地方销售慢病毒专用转染试剂LentiFit™试剂已经多年。生物在线为您提供众多企业慢病毒专用转染试剂LentiFit™仪器产品及图片,以便挑选到性价比高,合适的慢病毒专用转染试剂LentiFit™产品 查看更多>
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各位版友求助,

我使用Hek293构建转染模型,瞬转5质粒,用lipo2000做转染体系。

转染48h,发现荧光较强的细胞都在爬片的边缘,比例十分少。是因为我添加试剂的手法不对吗。

同时也发现加入转染体系后细胞状态特别差。想问一下用lipo2000时可以用无双抗的10%FBSDMEM吗。我转染前6h现在用的是纯DMEM,不含FBS。


请各位大神帮忙

最近在做movas转染siRNA,用的是lipo2000,siRNA终浓度100nM,转染时细胞密度60%,80%,90%都尝试过,转染后6h换液,24h提RNA,效果一直不好,最好的时候沉默效率60%左右,非常崩溃

我刚开始做转染,悬浮细胞,分别做过表达和敲减,看了很多文献,大都没有提及转染后是用转染的这同一批细胞同时做pcr,wb,cck8,凋亡,细胞周期;还是说这次转染只做pcr或wb,再转染一次做cck8或细胞周期。剩下的功能试验均同前,转染一次做一次?我养的是悬浮细胞,转染后做cck8这些功能试验前需要离心换液吗?跪谢解答!

细胞转染的详细过程123
dppezmiu2017-10-02
您好,现在这个行业发展的不错,生物实验技术外包也会跟着发展,比如一些高校或者企业部分实验不想自己内部开展,或者涉及的设备比较昂贵,技术要求高,都会寻求外包。但是现在竞争也比较大,的得看单位这边整体做的怎么样。
其次要看下你选择单位的规模如何,上海这边的,你可以看下基尔顿生物,原代细胞培养,动物造模,整体课题外包。
质粒转染细胞后多久能提RNA做PCR
实验室一直都是用日常型质粒抽提试剂盒,转染细胞没问题。
我觉得只要是注意以下2点就可以了:
1,注意大肠杆菌(Escherichia coli)本身的污染,收集菌体沉淀时防止菌液散落,经常用75%的乙醇擦拭手套。
2,最后洗脱时最好使用无内毒素的水,我们是用注射用水的。
无论是小提还是大提我们都是用的日常型的,并没有刻意用转染级的,因为转染量大,去内毒素的操作太麻烦,损失太大。
BV2细胞用什么方法做转染123
风雨gHY22A2021-07-21
BV2细胞用什么方法做转染
悬浮细胞的转染方法:(以下内容转自生物帮资讯)
DXY721认为:
悬浮细胞和贴壁细胞在转染过程中差别不大,主要差别在于转染后的筛选,当然如果你做的是瞬时转染就不存在筛选的问题了。
其实转染的过程很简单,问题是能不能转的进去的,转染率能有多少,转进去是否可以稳定表达目的蛋白等等。
我们也是用脂质体做悬浮细胞的转染,说明书上都有具体的操作过程,将脂质体和目的基因按比例混合,然后加到细胞悬液里就OK了,说的简单,实际上还是有一些细节要注意的,比如脂质体和目的基因混合的比例,转染的细胞数,细胞的代数,细胞的状态,有的还要求在转染的前一天传代一次,不过不要怕,这些在脂质体说明书上都有明确的说明,按照说明书做就可以了。
jinghuanlv认为:
悬浮细胞和贴壁细胞转染还是有很大不同的。
脂质体转染的原理基于电荷吸引原理,先形成脂质体-DNA复合物,散布在细胞周围,然后通过细胞的内吞作用,将目的基因导入细胞内,而脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会比悬浮细胞高出很多倍,所以,脂质体转染时悬浮细胞的转染效率要明显低于贴壁细胞。
我们实验室转染悬浮细胞是用的电穿孔法,目前为止,悬浮细胞转染的最好方法还是电转,我们实验室用的电转仪是Bio-Rad的,使用条件是电压250V,电容975uF,效果不错,不妨一用。
可能有多种原因:目标蛋白对细胞有毒性,导致细胞死亡;转染试剂以及DNA用量信息需要优化,否则对细胞具有伤害;细胞贴壁转染之后没有正常换液。建议: 考虑对目标蛋白进行截短构建、尝试其他细胞系统; 摸索转染试剂以及DNA用量信息,如果转染试剂毒性太大,可以考虑尝试义翘转染试剂sinofection; 对转染后的细胞进行换液处理,如果细胞状态感觉不够理想,可以考虑添加一些血清来帮助细胞恢复健康。以上所有分析、建议的前提是,细胞培养、无菌操作等等都没有问题。祝顺利,加油~
腺相关病毒(AAV)是一种人细小病毒,目前因为能作为一种基因治疗载体而受到广泛关注。构建重组AAV(rAAV)涉及到用一个目的基因替换病毒基因组的大部分,然后将这个重组基因组包装到一个有感染性的病毒颗粒里。目前大多数生成rAAV的实验方案需要共转染一个载体质粒和一个表达病毒复制和结构基因的包装质粒到腺病毒(Ad)感染的培养细胞中。此方法的局限性包括(1) Ad辅助病毒污染rAAV,(2)rAAV的低产出,(3)生成有复制能力的AAV。在此我们描述了新的辅助质粒(pH3和pH5),排除了Ad共转染的需求。辅助质粒表达AAV的rep和cap基因和Ad E2A、VAI和E4基因。当辅助质粒在没有Ad感染的情况下共转染到人293细胞中,rAAV载体产量超过了pAAV/Ad包装质粒的80倍。另外,有复制能力的AAV在rAAV制备过程中少于0.00125%。此系统的主要优点是(1)无需感染性的腺病毒(2)只使用两个质粒就提高了转染效率和载体的产出。我们相信该双质粒转染系统因其简便性和高产出而使AAV载体系统能被更广泛地使用。该系统尤其将对多rAAV载体的临床前分析有用。
细胞转染GFP质粒并进行表达之后,一般细胞内会有大量的GFP蛋白,可以发出绿色荧光。
GFP发出绿色荧光的原理是Ca离子进入GFP的beta-barrel结构中引起的特定能级,因此只要这个结构仍然保持着,就可以发出荧光。
由于GFP的beta-barrel结构非常稳定,一些版本的GFP蛋白(如EGFP)甚至能抵抗94C的高温几分钟而不完全变性,因此想在溶液状态下去掉GFP的荧光是很难的,一般需要用光漂白法。
基于其非常稳定的结构,即便细胞被固定了,仍然会有一部分的GFP蛋白保持其构象而发出荧光。此时荧光可能较弱。在荧光显微镜下是有可能看得到的。
需要连接到载体上才能转染受体细胞,载体可能是质粒或者病毒

求助:本人现在做细胞转染,具体实验包括转染目的基因后测MTT,凋亡,侵袭等水平差异,现在有个疑惑,如果MTT结果是促进增殖,那凋亡或侵袭结果的意义是否受其影响,比如同样数量细胞里这个组的凋亡少是否其侵袭能力就强,结果是凋亡少造成的还是有协同作用,如何避免干扰,还有转染后凋亡检测时间的选择,因为不是做的药物而是转染,应如何设置时间,78小时是否有意义?问的有点多,求大家耐心指导