| Overview |
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| Ex/Em (nm) | 511/525 |
| MW | ~500 |
| CAS # | N/A |
| Solvent | DMSO |
| Storage | F/D/L |
| Category |
Cell Biology Labeling Cells |
| Related |
Fluorescence Imaging Viability and Proliferation Biochemical Assays |
| Spectrum | Advanced Spectrum Viewer |
1. Prepare 500 X DMSO stock solution
Add 500 µL DMSO into the dye powder vial, mix it well by vortexing to have a 500X DMSO stock solution
Note: The stock solution should be used promptly; any remaining solution should be aliquoted and frozen at < -20 oC. Avoid repeated freeze-thaw cycles, and protect from light.
2. Prepare 1X dye working solution
Prepare a 1X dye working solution by diluting the 500X DMSO stock solution at 1 to 500 in Hanks and 20 mM Hepes buffer (HHBS) or the buffer of your choice, pH 7 (such as 1 µL of 500X DMSO stock solution to 500 µL buffer) right before use. Mix them well by vortexing.
Note: The final concentration of the dye working solution should be empirically determined for different cell types and/or experimental conditions. It is recommended to test at the concentrations that are at least over a t en fold range. Such as CytoTell™ Red might use much less amount in some cell types than the recommend concentrations.
3. Analyze cells with a flow cytometer or a fluorescence microscope:
3.1 Treat cells with test compounds for a desired period of time.
3.2 Centrifuge the cells to get 1-5 × 105 cells per tube.
3.3 Resuspend cells in 500 μL of the dye working solution (from Step 2).
Optional: One can add the 500X DMSO stock solution into the cells directly without medium removing (such as, add 1 µL500X DMSO stock solution into 500 µL cells)
3.4 Incubate cells with a dye solution at room temperature or 37 °C for 10 to 30 min, protected from light.
3.5 Remove the dye working solution from the cells, wash the cells with HHBS or buffer of your choice. Resuspend cells in 500 μL of pre-warmed HHBS or medium to get 1-5 × 105 cells per tube.
3.6 Monitor the fluorescence change at respected Ex/Em (see Table 1) with a flow cytometer or a fluorescence microscope.
| References & Citations |
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Cooperation of innate immune cells during Hepatitis C virus infection
Authors: Volker Klöss
Journal: (2017)
CXCL12--CXCR4 Axis Is Required for Contact-Mediated Human B Lymphoid and Plasmacytoid Dendritic Cell Differentiation but Not T Lymphoid Generation
Authors: Hirohito Minami, Keiki Nagaharu, Yoshiki Nakamori, Kohshi Ohishi, Naoshi Shimojo, Yuki Kageyama, Takeshi Matsumoto, Yuka Sugimoto, Isao Tawara, Masahiro Masuya
Journal: The Journal of Immunology (2017): ji1700054
Interaction and Mutual Activation of Different Innate Immune Cells Is Necessary to Kill and Clear Hepatitis C Virus-Infected Cells
Authors: Volker Klöss, Oliver Grünvogel, Guido Wabnitz, Tatjana Eigenbrod, Stefanie Ehrhardt, Felix Lasitschka, Volker Lohmann, Alexander H Dalpke
Journal: Frontiers in Immunology (2017): 1238
interaction and Mutual activation of Different innate immune cells is necessary to Kill and clear hepatitis c Virus-infected cells
Authors: Volker Klöss, Oliver Grünvogel, Guido Wabnitz, Tatjana Eigenbrod, Stefanie Ehrhardt, Felix Lasitschka, Volker Lohmann, Alexander H Dalpke
Journal: Frontiers in Immunology (2017): 1238
Onionin A inhibits ovarian cancer progression by suppressing cancer cell proliferation and the protumour function of macrophages
Authors: Junko Tsuboki, Yukio Fujiwara, Hasita Horlad, Daisuke Shiraishi, Toshihiro Nohara, Shingo Tayama, Takeshi Motohara, Yoichi Saito, Tsuyoshi Ikeda, Kiyomi Takaishi
Journal: Scientific Reports (2016)
Multiplexing analysis of cell proliferation and cellular functions using a new multicolor panel of fluorescent cell proliferation dyes (P1290)
Authors: Jinfang Liao, Qin Zhao, Yibo Wu, Zhenjun Diwu
Journal: The Journal of Immunology (2013): 119--4
AAT Bioquest AAT Bioquest是一家位于美国的生物公司，前身为ABD Bioquest，总部位于加利福尼亚州。专门从事光学检测技术十多年，一直致力于光谱学检测领域技术的创新和突破。其独特的光学检测技术，综合了化学、生物学和信息学等各个领域的研究，引领了比色、荧光和发光技术新一代光学探针的浪潮。AAT Bioquest在全球拥有强大的经验丰富的专业分销商网络，为从小型研究机构到《财富》500强企业的各类客户提供卓越的产品和定制服务。
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2、苏丹三 脂肪 橙红
3、苏丹四 脂肪 红
4、双缩脲 蛋白质 紫
5、龙胆紫 染色质 紫
6、碘 淀粉 蓝
7、健那绿 线粒体 绿
8、甲基绿 DNA 绿
9、吡罗红 RNA 红
10、溴麝香草酚蓝 CO2 由蓝变绿再变黄
11、重铬酸钾 酒精 酸性条件下由橙色变成灰绿
12、醋酸洋红（龙胆紫、改良苯酚品红） 染色质 红
13、台盼蓝 检验活死细胞 死细胞会被染成蓝色（不常用）
请各位大侠给予帮助！！
谢谢！！
产品主要应用：点击化学(Clickchemistry)、蛋白质组学研究中的双向荧光差异凝胶电泳(2DDIGE)和实时荧光定量PCR(RealtimePCR)。
菁染料是性能优良的荧光标记染料，摩尔吸光系数在荧光染料中是最高的。N-羟基琥珀酰亚胺酯是最常用的脂肪氨基标记试剂，广泛用于蛋白质、氨基酸多肽、抗体、核酸及其他生物分子的标记和检测。通过改变次甲基链的长度,可改变其荧光发射波长，每增加一个双键，按照Huoffman规则正好红移约100nm。
菁染料Cy3和Cy5已成为基因芯片的首选荧光标记物；另外,Cy5,Cy5.5和Cy7，Cy7.5的吸收在近红外区背景非常低，是荧光强度最高、最稳定的长波长染料，特别适合于活体小动物体内成像。但由于菁染料,尤其是不对称菁染料的合成副反应多,副产物极性相近,产物的分离提纯相当困难。菁染料特别是水溶性菁染料分子极性大,分离提纯越加困难。Lumiprobe供应脂溶性和水溶性菁染料。
相关产品：
产品分子结构可替代染料编号：AGF1371A
6-ROX-N-羟基琥珀酰亚胺酯
ROXNHSester,pure6-isomer[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704102819_7906.jpg[/img]AlexaFluor568编号：AGF1326A
Cy3-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Cy3NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704103024_8531.jpg[/img]AlexaFluor546NHSester
DyLight549NHSester
编号：AGF1330A
Cy3.5-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Cy3.5NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704103242_2437.jpg[/img]AlexaFluor594NHSester
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Cy5-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Cy5NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704103422_4468.jpg[/img]AlexaFluor647NHSester
DyLight649NHSester
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Cy5.5-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Cy5.5NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704103557_5875.jpg[/img]AlexaFluor680NHSester
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Cy7-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Cy7NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704103713_8843.jpg[/img]编号：AGF1356A
Cy7.5-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Cy7.5NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704103756_5406.jpg[/img]编号：AGF1374A
磺酸基-Cy3-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Sulfo-Cy3NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704103830_1656.jpg[/img]AlexaFluor546
DyLight549
编号：AGF1377A
磺酸基-Cy5-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Sulfo-Cy5NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130705/20130705095752_6656.jpg[/img]AlexaFluor647
DyLight649
编号：AGF1379A
磺酸基-Cy7-N-羟基琥珀酰亚胺酯
Sulfo-Cy7NHSester[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704104047_6968.jpg[/img]相似系列产品：
羰基活性荧光染料
氨基类染料
巯基反应性染料
羧酸类染料
而且样品中的无水硫酸钠未变色,而做标准曲线的五个和空白对照的变为蓝色了,请高手指教,多谢!
还有,是否变蓝对测定结果有影响吗?
谢了哈
欢迎你！请下次规范发贴:)
二苯胺
甲基绿派洛宁
还有一种忘了。
假期没法联系老师呵呵。
这三种的作用都是什么。
产品主要应用：点击化学(Clickchemistry)、蛋白质组学研究中的双向荧光差异凝胶电泳(2DDIGE)和实时荧光定量PCR(RealtimePCR)。
氨基类染料是包含自由氨基的活性染料，染料可与活化羧酸衍生物和其他亲电子的试剂结合。比如：氨基与EDC-活化的羧基结合。
相关产品如下：
中文名英文名产品编号分子结构Cy7.5胺Cy7.5amineAGF1350A[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704110804_5250.jpg[/img]Cy5胺Cy5amineAGF1332A[img]/KindEditor_4.0.1/attached/image/20130704/20130704110715_7750.jpg[/img]相似系列产品：
抗体、核酸、蛋白质等生物分子标记染料
羰基活性荧光染料
巯基反应性染料
羧酸类染料
分子生物学实验的染料主要涉及到核酸染料和蛋白质染料.核酸染料主要有EB（溴化乙锭,高致癌性）,goldview,sybr green（实时定量PCR时常用染料）.这些染料可以和核酸双链分子特异性结合发出强荧光而被检测到.蛋白质染料最常用的是考马斯亮蓝 R-250,硝酸银.其中硝酸银有时也用于核酸染色.
染料分为天然染料和人工染料两种。天然染料有胭脂虫红、地衣素、石蕊和苏木素等，它们多从植物体中提取得到，其成分复杂，有些至今还未搞清楚。目前主要采用人工染料，也称煤焦油染料，多从煤焦油中提取获得，是苯的衍生物。多数染料为带色的有机酸或碱类，难溶于水，而易溶于有机溶剂中。为使它们易溶于水，通常制成盐类。
染料可按其电离后染料离子所带电荷的性质，分为酸性染料、碱性染料、中性（复合）染料和单纯染料四大类。 标本干燥后即进行固定，固定的目的有三个：
1）杀死微生物，固定细胞结构。
2）保证菌体能更牢的粘附在载玻片上，防止标本被水冲洗掉。
3）改变染料对细胞的通透性，因为死的原生质比活的原生质易于染色。
前一阵子实验室开始使用一种新的核酸染料-goldview,取代原先用的溴化乙锭-EB.goldview现在是由赛百盛出售.以下摘自官方网站:
GoldViewTM核酸染料——使用说明
概述
GoldViewTM是一种可代替溴化乙锭（EB）的新型核酸染料，采用琼脂糖电泳检测DNA时，GoldViewTM与核酸结合后能产生很强的荧光信号，其灵敏度与EB相当，使用方法与之完全相同。在紫外透射光下双链DNA呈现绿色荧光，而单链DNA呈红色荧光。GoldView不仅能染DNA，也可用于染RNA。
通过Ames试验、小鼠骨髓嗜多染红细胞微核试验、小鼠睾丸精母细胞染色体畸变试验，致突变性结果均为阴性；而溴化乙锭（EB）是一种强致癌剂。因此用GoldviewTM代替EB不失为一种明智的选择。
使用方法
1.将100ml琼脂糖凝胶溶液（浓度一般为0.8%~2%）在微波炉中融化。
2.加入5µlGoldView，轻轻摇匀，避免产生气泡。
3.冷却至不烫手时倒胶，待琼脂糖凝胶完全凝固后上样电泳。
4.电泳完毕在紫外灯下观察。若使用数码相机照像记录，则关闭相机的闪光灯，放在自动档即可；若使用凝胶成像系统照相，通过调节光圈、曝光时间，选择合适的滤光片，可得到成像清晰、背景较低的照片。
注意事项
1.胶厚度不宜超过0.5cm，胶太厚会影响检测的灵敏度。
2.加入GoldView的琼脂糖凝胶反复融化可能会对核酸检测的灵敏度产生一定影响，但不明显。
3.通过凝胶电泳回收DNA片段时，建议使用GoldView染色，在自然光下切割DNA条带，避免紫外线与EB对目的DNA产生的损伤，可明显提高克隆、转化、转录等分子生物学下游操作的效率。
4.虽然未发现GoldView有致癌作用，但对皮肤、眼睛会有一定的刺激，操作时应戴上手套。
电泳结果显示GV灵敏度与EB相当
问题1.Goldview到底是不是丫啶橙？
2.赛百盛不公布其成分的原因是害怕其为丫啶橙还是出于技术保密？
健那绿染液是一种活体染液，实验对象必须是活细胞，健那绿可以使活细胞中的线粒体呈现蓝绿色，而细胞质接近无色。
