
Product Description
iMatrix-511 Product SummaryLaminin 511 is known to bind to Intergin α6β1 of the cell surface. iMatrix-511 is highly purified human Laminin 511-E8 fragments recombinantly expressed by CHO-S cell.ApplicationiMatrix-511 can be used as cell culture matrix for various cell types including ES/iPS cells.ContentsLiquid Solution (175μg/vial @ 0.5 mg/mL Solvent: PBS(-)) .Product Size: 350μg (175μg x 2 pcs.)SpecificationsFormat: Solution (175μg/vial @ 0.5 mg/mL)Storage temperature: 2-15°CNaCl concentration: 137 mMActivityThe dissociation constant of the binding activity with integrin α6β1 is under 10 nM.
Procedure1. Dilute the solution with PBS (-). Coat dishes with 0.5μg/cm². The optimal coating concentration depends on cell lines from 0.1 to 1.5μg/cm². (For example, when you use 6-well plate (9.6 cm²/well), add 9.6μl iMatrix-511 (4.8ug) in 1.99ml of PBS(-). Add 2 mL of diluted iMatrix-511 solution to the well.)2. Incubate for 1 hour at 37°C, 3 hours at Room temperature, or over night at 4°C.3. Remove excess fluid from the coated surface. No rinse is needed.4. Immediately plate the cells at desired density.Notes:Don"t allow the plate to dry. Briefly spin down all liquid in the tube before use. Avoid repeated freeze-thaw cycles.DocumentationDownload Protocol [PDF]Download MSDS [PDF]Product Basics & StructureiMatrix-511 is an innovative cell culture matrix compatible with a wide variety of cell types, and exceptionally well suited for pluripotent stem cells. This product is comprised of recombinant Laminin-511 E8 protein fragments which permit ES/iPS cells to be maintained in xeno-free culture conditions, enable the passaging of single cells, and provide greater adhesion than full-length Laminin, Vitronectin or Matrigel⁵.Laminin-511 is a major component of the basement membrane used as a scaffold for pluripotent stem cells (ES/iPS cells), as it binds to integrin on cell surfaces. However Laminin-511 is a large protein (800kDa) composed of three chains (α-, β-, and γ-) forming a supramolecular aggregate, making it difficult to produce recombinantly. In order to overcome this challenge, Laminin-511 proteins were fragmented to find the smallest integrin-binding component and the E8 fragment was identified as the most promising result. In fact, hES cells were found to adhere more strongly to the E8 fragment than to the full-length protein.


In the same study cited above, Human ES cells were passaged on Laminin-511 E8 fragment and other cell culture substrates. Upon singly dispersing human ES cell colonies at the time of passage, it was confirmed that single cells adhere rapidly to Laminin-511 E8 and proliferate immediately.
Reference Literature
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FOR RESEARCH USE ONLY, NOT FOR USE IN DIAGNOSTIC PROCEDURES.
Manufactured by: Nippi, Inc.*License to manufacture and sell this product has been obtained from Osaka University & Kyoto University.*
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1新生大鼠鼠龄的选择新生大鼠心肌细胞在出生后3 d内具有部分的增殖能力,成年大鼠心肌细胞则为终末分化细胞,不再具有分裂增殖能力.因此,大鼠出生时间越短,其心肌细胞分离后成活率越高,越容易贴壁生长.大量观测表明,选择1~3 d龄大鼠分离其心肌细胞进行原代培养较为理想.其中尤以半日龄大鼠心肌细胞培养效果最佳.
2消化酶的选择及使用
新生大鼠心肌细胞的分离可采用组织块法和消化法,前者因不易获得密度均一的细胞且难控制成纤维细胞的生长而较少采用.消化法中常使用的酶有3种:胰蛋白酶、胶原酶I或Ⅱ以及透明质酸酶.透明质酸酶多与胰蛋白酶或胶原酶联合应用.胰蛋白酶作用较强,容易造成心肌细胞损坏.胶原酶作用较缓和,能消化细胞间质中的胶原纤维以释放细胞,对细胞损伤小,且在新生大鼠心肌组织,以胶原I为主,故我们选用胶原酶I.文献报道胶原酶的工作浓度一般在0.6~1 g・L1,我们使用的为0.8 g・L1.胶原酶最好现用现配.
3消化程度的把握
新生大鼠心肌细胞对酶消化极为敏感.消化过度可使肌原纤维出现萎缩,细胞死亡率增加或丧失贴壁能力及搏动能力;消化不足,细胞聚集成团,无法分清细胞边界,难以形态学观测.消化过程中使用磁力搅拌器时应注意1)转速一般控制在60~80 r・min1左右.(2)每次消化的时间须结合消化酶浓度确定.(3)将粘附在搅拌子上的心肌组织吹散,使酶液充分接触组织.(4)适宜温度为35~37℃.(5)当组织由红转白呈半透明状态时,应停止消化.
4接种的细胞密度
心肌细胞接种密度不仅影响细胞间的相互接触,进而影响细胞对肥大刺激的反应,而且影响长期培养细胞的成活率.接种细胞的绝对数量应经精确计算.一般而言,应根据实验的观测目的决定单位面积上的细胞数量.例如,如作形态学观测,六孔板中每孔的接种细胞数量应控制在1×105~2×105个;若需收获心肌细胞作mRNA或蛋白表达水平的观测,则每孔的接种密度可增加到5×105~6×105个.
根据传统定义,自组织第一次收获和接种的细胞被称为原代细胞[Freshney,R.I.(1987).CultureofAnimalCells.AManualofBasicTechnique.(NewYork,AlanR.Liss,Inc.)].这类细胞直接从组织分离,生命周期有限,经数次传代后会逐渐停止生长。原代细胞在有限的生命周期内需掌握好细胞的最大生长空间,以保持细胞群中基因型和表型的一致性。
细胞系是不断生长、分化的细胞群,因其经过遗传改造,致使其具有无限增长的潜能。体外生长的细胞系用于医疗或科研。
但实际上,经过长时间、连续的传代培养后,细胞系随着代数的增加,细胞的基因型和表型都有可能发生改变。
需要指出的是,在不同的科研小组中这些术语的定义会有所不同。许多研究员不用细胞系这个词表示细胞群,除非细胞经过了遗传改造。
二、倍增和代数有什么区别?
倍增是培养物中细胞总数的翻倍,通常是指细胞指数或对数生长期。代数是指细胞群从培养瓶中移出,传代培养过程的次数,传代培养的目的,是使细胞处于低密度以刺激其进一步生长。
三、接收到的冻存细胞该如何处理?
收到包装箱后,立即将冻存细胞从干冰移入液氮中冻存。此过程尽量快,以避免升温。不要将细胞储存在-80℃,这样会对细胞造成不可挽回的伤害。
四、有多少经验才能开始正常人类细胞培养?
推荐有经验者在无菌环境下用洁净操作台工作,如果有细胞系培养经验的话,对原代细胞的培养也是很有益处的。如果你是细胞培养的初学者或打算建立细胞培养实验室,我们会为你提供帮助。请联系我们的细胞培养专家(裕恒丰科技有限公司)。
五、冻存的细胞该如何开始培养?
(1)将一管细胞从液氮罐中取出,注意保护手和眼睛。
(2)将冻存管快速的放入37℃水浴中,轻轻握住并旋转,直到管内物体完全融化。
(3)将冻存管立即从水浴中拿出,擦干,转入无菌环境。
(4)用70%的酒精冲洗冻存管,然后擦去多余酒精。
(5)打开盖子,注意手指不要碰到里面的螺纹(注意,由于冻存管有负压,开盖时可能会有少量溢出,这是正常现象)。
(6)用多聚赖氨酸(或参照说明书)包被培养瓶。多数细胞推荐的接种密度为每平方厘米5000个细胞。
(7)盖好培养瓶的盖子,轻轻摇晃培养瓶以使细胞分布均匀。若需要气体交换可打开盖子。
(8)将培养瓶放入培养箱中(37℃,5%CO2,95%空气)
(9)放入培养箱后第6-16小时更换一次培养基,以去除残留的二甲基亚枫和未贴壁的细胞。
六、当我第一次复苏正常人类细胞时,是否需要先离心细胞以去除二甲基亚枫吗?
第一次复苏正常人类冻存细胞时,我们不推荐离心去除二甲基亚枫。与残留的二甲基亚枫相比,离心过程对细胞的伤害更大,尤其是不适当的高速离心时。我们的经验是:如果二甲基亚枫的浓度很低,细胞不会受毒害。如果你将1ml细胞放入含15ml培养基的T-75培养瓶中,二甲基亚枫的浓度将小于0.67%,没有发现负面影响。实际上,如果细胞的接种密度为每平方厘米5000-10000个,二甲基亚枫的浓度很低。
七、细胞培养过程中,多久更换一次培养基?
这取决于细胞生长的速度。一般而言2-3天更换一次培养基,许多细胞培养实验室通常在周一,周三,周五更换培养基。
注意:冻存细胞复苏后,在6-16小时内更换培养基,以去除残留的二甲基亚枫和死亡的细胞。
八、我能扩增培养和再次冻存Sciencell的正常人类细胞吗?
这取决于细胞的类型。一些细胞类型像神经细胞,神经胶质细胞和一些生长缓慢的上皮细胞,不推荐扩增培养和再次冻存。其它的细胞类型像成纤维细胞、星形细胞、肾系膜细胞、星形胶质细胞等等,可以扩增培养和再次冻存。然而,需要注意的是再次冻存的过程可能导致细胞生长性能的改变。如果你想要再次冻存细胞,请亲自咨询我们的技术支持并使用ScienCell无血清细胞冻存液(SF-CFM)和特定的无血清培养基,以获得最佳冻存效果。
九、我能长时间的冷冻保存ScienCell的原代细胞培养基吗?
我们不推荐冷冻保存培养基,高营养的培养基经过冷冻和复温后,可能导致培养基成分的不可逆降解,从而影响细胞的生长。
十、培养瓶中应该加入多少体积的培养基?
我们推荐的用量为:T-25培养瓶5ml,T-75培养瓶15ml,T-150培养瓶30ml。文章来源北京裕恒丰科技有限公司官方微信
关于第一问能回答的详细点么?谢谢各位大虾~~
原代细胞(primary cell) 是指从机体的组织(如人组织、小鼠组织、大鼠组织和兔组织等)经蛋白酶或其它的方法获得单个细胞并在体外进行模拟机体培养的细胞,称为原代细胞。一般认为,培养的原代的第1代细胞和传代到第10代以内的细胞统称为原代细胞培养。在人工条件下使其原代细胞生存、生长、繁殖和传代,进行细胞生命过程、细胞癌变、细胞工程等问题的研究。
细胞株(cell strain) 是通过选择法或克隆形成法从原代培养细胞中获得具有特殊性质或标志物的细胞称为细胞株。一般认为,细胞株是用单细胞分离培养或通过筛选的方法,由单细胞增殖形成的细胞群。细胞株的特殊性质或标志必须在整个培养期间始终存在。
我是用24孔板做的,换液后第二天细胞就成这样了,第一张是孔中间的细胞状态,第二张是孔边缘的细胞状态,中间的细胞状态很差,几乎成活的可能性很小了。同样的操作,为什么会有这样的结果,加液量是1ml/孔,是不是加的液体量太多了,导致孔中间的细胞缺氧?还是其他的什么原因?
细胞系是不断生长,分化的细胞群,因其经过遗传改造,致使其具有无限增长的潜能.体外生长的细胞系用于医疗或科研.实际上,连续细胞系可以用大量次培养基
其次要看下你选择单位的规模如何,上海这边的,你可以看下基尔顿生物,原代细胞培养,动物造模,整体课题外包。

