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TheNativeAntigenCompany/Borrelia burgdorferi sensu stricto (B31) VlsE Protein/100ug/REC31669-100_蚂蚁淘,【正品极速】生物医学科研用品轻松购|ebiomall 蚂蚁淘商城
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TheNativeAntigenCompany/Borrelia burgdorferi sensu stricto (B31) VlsE Protein/100ug/REC31669-100
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BORRELIA BURGDORFERI SENSU STRICTO (B31) VLSE PROTEIN

This is a recombinant Borrelia burgdorferi VlsE protein, fused to an MBP-tag and produced in E. coli (>90% purity).

PRODUCT DETAILS – BORRELIA BURGDORFERI SENSU STRICTO (B31) VLSE PROTEIN

  • Recombinant Borrelia burgdorferi sensu stricto (B31) VlsE (NCBI Accession Number: CAH61549.1).
  • Greater than 90% purity (SDS-PAGE). In 0.02 M Potassium Phosphate, 0.15 M Sodium Chloride, pH 7.2 and 0.01% (w/v) Sodium Azide.

BACKGROUND

Many parasites have evolved antigenic variation systems that alter their surface proteins in order to evade recognition by an immune response and subsequent death. Variable Lipoprotein Surface-Exposed protein (VlsE) is a lipoprotein located on the surface of the Lyme Disease spirochete, Borrelia burgdorferi, which is detectable throughout its life stages and is believed to be involved in host immune evasion (Kornacki & Oliver, 1998). Strain B31 is the type strain (ATCC 35210) for this organism and was derived by limited dilutional cloning from the original Lyme-disease tick isolate obtained by A. Barbour (Johnson, et al., 1984).

The Vls antigenic variation locus resides on the linear plasmid, lp28-1 and it is believed that non-vls genes residing on lp28-1 do not play a role in spirochete persistence during infection of the mammalian host (Magunda & Bankhead, 2016). VlsE primary structure consists of N- and C-terminal constant domains that flank a central cassette region. Most of the sequence differences are concentrated in six variable regions (VR), interspersed among six invariant regions (IR).  IRs are either found anchored in the outer membrane of the bacteria, or exposed as antigens on the membrane surface.

During infection, VlsE undergoes antigenic variation through an elaborate gene conversion mechanism to present as many different isoforms in a mammal host. This variation is further exacerbated by an error-prone repair mechanism. In comparison, VlsE is apparently modified to a much lesser extent in tick or rodent vectors. Indeed, several putative envelope proteins of B. burgdorferi appear to be expressed only in the infected mammalian host (Bankhead & Chaconas, 2007).

The VRs are antigenic, irregularly-shaped loops on the bacterial surface, thought to hide both membrane-incorporated and surface portions of adjacent proteins from immune cells. These VR loops are coded by antigenic cassettes (Magnarelli, et al., 2002). A crystal structure of recombinant variant protein VlsE1 (2.3-Å resolution) confirms that the six VRs form loop structures that constitute most of the membrane distal surface of VlsE, covering the predominantly α-helical, invariant regions of the protein (Eicken, et al., 2002).

These protein loops can be switched in or out of the protein, or can be interchanged with different loop types. In B. burgdorferi, there seems to be at least fifteen different VlsE cassettes that can insert into any of the variable regions of VlsE, allowing it to appear as millions of different antigens. Replacement of the VR by Borrelia within days of being exposed to a mammalian host presents new surface antigens to the host immune system and this may reduce the effectiveness of the humoral immune response, facilitating immune evasion and persistent infection (Verhey, et al., 2018).

The surface localization of the variable amino acid segments may protect the conserved regions from interaction with antibodies and contribute to immune evasion. Indeed, B. burgdorferi strains lacking elements of the Vls system are cleared more quickly (several weeks) in infected mice by the adaptive immune response. Variable VlsE was shown to be required for reinfection of immunocompetent mice that had naturally cleared an infection with a VlsE-deficient clone (Rogovskyy & Bankhead, 2013).

Interestingly, the IR region C6 consistently stimulates a strong immune response and may act as a decoy to misdirect the immune system away from less protected sites through competition for binding antibodies. This may help Borrelia to enter T-cells and lead to their destruction (Ohnishi, et al., 2003). Because IR6 is invariable and found in all life stages of B. burgdorferi, it has been used in ELISA diagnostic tests for early IgM of Lyme Disease.

REFERENCES

  • Bankhead, T. & Chaconas, G., 2007. The role of VlsE antigenic variation in the Lyme disease spirochete: Persistence through a mechanism that differs from other pathogens. Mol. Microbiol., Volume 65, pp. 1547-1558.
  • Eicken, C. et al., 2002. Crystal Structure of Lyme Disease Variable Surface Antigen VlsE of Borrelia burgdorferi. J Biol. Chem., 277(24), p. 21691–21696.
  • Johnson, R.C., et al. 1984. Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiologic agent of Lyme disease. Int J Syst Bacteriol, 34, pp. 496–497.
  • Kornacki, J. A. & Oliver, D. B., 1998. Lyme Disease-Causing Borrelia Species Encode Multiple Lipoproteins Homologous to Peptide-Binding Proteins of ABC-Type Transporters. Infection and Immunity, 66(9), pp. 4115-4122.
  • Magnarelli, L. A., Lawrenz, M., Norris, S. J. & Fikrig, E., 2002. Comparative reactivity of human sera to recombinant VlsE and other Borrelia burgdorferi antigens in class-specific enzyme-linked immunosorbent assays for Lyme borreliosis. J. Med. Microbiol., Volume 51, pp. 649-655.
  • Magunda, P. R. & Bankhead, T., 2016. Investigating the potential role of non-vls genes on linear plasmid 28-1 in virulence and persistence by Borrelia burgdorferi. BMC Microbiol., 16(1), p. 180.
  • Ohnishi, J. et al., 2003. Genetic Variation at the vlsE Locus of Borrelia burgdorferi within Ticks and Mice over the Course of a Single Transmission Cycle. J Bacteriol., 185(15), pp. 4432-4441.
  • Rogovskyy, A. S. & Bankhead, T., 2013. Variable VlsE is critical for host reinfection by the Lyme disease spirochete. PLoS ONE, Volume 8, p. 61226.
  • Verhey, T. B., Castellanos, M. & Chaconas, G., 2018. Antigenic Variation in the Lyme Spirochete: Insights into Recombinational Switching with a Suggested Role for Error-Prone Repair. Cell Reports, 23(9), pp. 2595-2605.

Certificate of analysisSafety datasheet

SDS-Page of recombinant VlsE protein. Lane 1: VlsE-MBP reduced. Lane 2: Molecular Weight Marker. Lane 3: VlsE-MBP non-reduced. Expected MW for VlsE-MBP is ~78 kDa as indicated by the arrow (~36 kDa for VlsE and ~42 kDa for MBP).

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原代细胞和细胞系哪个认可度更高
细胞系是不断生长,分化的细胞群,因其经过遗传改造,致使其具有无限增长的潜能.体外生长的细胞系用于医疗或科研.实际上,连续细胞系可以用大量次培养基
结肠肿瘤_可以看出哪一期123
dxy_h2lc4whq2021-08-03

如题,本人在做结肠肿瘤细胞时,每次从医院拿回来的组织都只有一指甲盖大小,我是剔除肉眼可见的一些血丝之类的,然后就进行处理了,不知道这样对不对,有没有清除干净,不知道大家在做肿瘤原代时,是怎么判断那一部分是肿瘤组织,有什么建议么?大家可以分享自己的经验。

原理 将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培 养,使细胞得以生存、生长和繁殖,这一过程称原代培养。

操作步骤
(一)胰酶消化法
1、器材:将孕鼠或新生小鼠拉颈椎致死,置75%酒精泡2—3秒钟(时间不能过长、以免酒精从口和肛门浸入体内)再用碘酒消毒腹部,取胎鼠带 入超净台内(或将新生小鼠在超净台内)解剖取肝脏,置平皿中。
2、用Hank’s液洗涤三次,并剔除脂肪,结缔组织,血液等杂物。
3、用手术剪将肝脏剪成小块(1mm2),再用Hank’s液洗三次,转移至小青霉素瓶中。
4、视组织块量加入5—6倍的0.25%胰酶液,37℃中消化20—40分钟,每隔5分钟振荡一次,或用吸管吹打一次,使细胞分离。
5、加入3—5ml培养液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制剂)。
6、静置5—10分钟,使未分散的组织块下沉,取悬液加入到离心管中。
7、1000rpm,离心10分钟,弃上清液。
8、加入Hank’s液5ml,冲散细胞,再离心一次,弃上清液。
9、加入培养液l—2 ml(视细胞量),血球计数板计数。
10、将细胞调整到5×105/ml左右,转移至25ml细胞培养瓶中,37℃下培养。 上述消化分离的方法是最基本的方法,在该方法的基础上,可进一步分离不同细胞。细胞分离的方法各实验室不同,所采用的消化酶也不相同(如 胶原酶,透明质酶等)。
(二)组织块直接培养法 自上方法第3步后,将组织块转移到培养瓶,贴附与瓶底面。翻转瓶底朝上,将培养液加至瓶中,培养液勿接触组织块。入37℃静置3—5小时,轻 轻翻转培养瓶,使组织浸入培养液中(勿使组织漂起),37℃继续培养。

各位专家们大家好,最近在做一些原代细胞相关实验。细胞是自己分离提取的,老板说直接用就行。我想问问大家一般都会做鉴定吗?如果做鉴定是什么方法?普通的鉴定与检测一般都会做,我想咨询的是大家有没有一整套完整的原代细胞检测及鉴定方案。小小10蚁豆敬上,求大神解答!

哪种要好,有什么要求吗?接种多少代的细胞?

各位大神,求指导,我最近在提取大鼠原代肝星状细胞,因为实验室地方比较小,在细胞房的缓冲间操作,也是按一般的步骤,先消毒,备皮,开腹,然后门静脉穿刺进行灌注,灌注的时间大概接近一个小时,实验用的器械也都用酒精泡一整夜才用,灌注结束后剪下肝脏,放入烧杯中消化震荡半小时,之后离心。整个操作的过程也很小心,用的东西也都高压灭菌过,但是每次提取的细胞刚开始还好,放几天就出现污染,孵箱里面的空培养液体镜下观察却没有问题,到底是哪里出了问题,求教


是胰蛋白酶或胶原蛋白酶吧,使组织分散成单个细胞
原理 将动物机体的各种组织从机体中取出,经各种酶(常用胰蛋白酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理,分散成单细胞,置合适的培养基中培 养,使细胞得以生存、生长和繁殖,这一过程称原代培养。

操作步骤
(一)胰酶消化法
1、器材:将孕鼠或新生小鼠拉颈椎致死,置75%酒精泡2—3秒钟(时间不能过长、以免酒精从口和肛门浸入体内)再用碘酒消毒腹部,取胎鼠带 入超净台内(或将新生小鼠在超净台内)解剖取肝脏,置平皿中。
2、用Hank’s液洗涤三次,并剔除脂肪,结缔组织,血液等杂物。
3、用手术剪将肝脏剪成小块(1mm2),再用Hank’s液洗三次,转移至小青霉素瓶中。
4、视组织块量加入5—6倍的0.25%胰酶液,37℃中消化20—40分钟,每隔5分钟振荡一次,或用吸管吹打一次,使细胞分离。
5、加入3—5ml培养液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制剂)。
6、静置5—10分钟,使未分散的组织块下沉,取悬液加入到离心管中。
7、1000rpm,离心10分钟,弃上清液。
8、加入Hank’s液5ml,冲散细胞,再离心一次,弃上清液。
9、加入培养液l—2 ml(视细胞量),血球计数板计数。
10、将细胞调整到5×105/ml左右,转移至25ml细胞培养瓶中,37℃下培养。 上述消化分离的方法是最基本的方法,在该方法的基础上,可进一步分离不同细胞。细胞分离的方法各实验室不同,所采用的消化酶也不相同(如 胶原酶,透明质酶等)。
(二)组织块直接培养法 自上方法第3步后,将组织块转移到培养瓶,贴附与瓶底面。翻转瓶底朝上,将培养液加至瓶中,培养液勿接触组织块。入37℃静置3—5小时,轻 轻翻转培养瓶,使组织浸入培养液中(勿使组织漂起),37℃继续培养。
如题~~
关于第一问能回答的详细点么?谢谢各位大虾~~
细胞很微小,接种进去,都是随机的,我们看不见。有可能两个细胞黏在一起,也有可能分离的很开。

就好像撒一撮芝麻在培养基那么大的地方上,我们不能知道它会怎么落。

我是用24孔板做的,换液后第二天细胞就成这样了,第一张是孔中间的细胞状态,第二张是孔边缘的细胞状态,中间的细胞状态很差,几乎成活的可能性很小了。同样的操作,为什么会有这样的结果,加液量是1ml/孔,是不是加的液体量太多了,导致孔中间的细胞缺氧?还是其他的什么原因?

细胞培养—组织块法(细胞培养,原代培养,培养瓶,培养液)] 组织块培养法1概述 组织块培养是常用的、简便易行和成功率较高的原代培养方法,即将组织剪切成小块后,接种于培养瓶。培养瓶可根据不同细胞生长的需要做适当处理。例如预先涂以胶原薄层,以利于上皮样细胞等的生长。如果原代细胞准备做组织染色、电镜等检查,可在做原代培养前先在培养瓶内放置小盖玻片,小盖玻片要清洗干净,在消毒前放置,并在放入组织块前预先用1-2滴培养液湿润瓶底,使之固定。
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