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我们每天长时间都在实验室里和移液器（俗称“枪”）打交道，枪已经成为实验室标配，因为它是很多实验过程和分析的基础。但正因为如此，我们都认为它很简单，就像走路和呼吸一样自然，不需要你花任何心思，它就可以做你想做的事情。但事实真的是这样吗？

事实上，枪虽小但往往关系到实验结果的准确性，有小伙伴经常抱怨枪老出问题：

1.用了一段时间就不准漏液了？

2.液体容易倒吸？

3.移液排不干净？……

到底是哪里出问题了呢，你有没有碰到这样的迷之困惑？

当当当，福利到，来自梅特勒-托利多瑞宁移液技术专家自告奋勇来解答大伙儿的困惑，有任何关于移液器使用的问题欢迎来和我们探讨共同进步哟~

最后感谢丁香园支持本活动！

我们会每天抽时间统一回复大家的问题，专家答疑截止12月31日哦！

查资料,或者问你们老师同学等

你首先要给出是什么单位啊？是毫摩尔每升，还是微摩尔每升啊？

实验室做的分子实验，PCR方面，要买移液器，Eppendorf，ThermoFinPipette，BrandTransferpette这三个品牌的移液器哪个比较好，希望热心网友给点建议！

你们在做试验时,发现没有,在吸不同密度的液体(如水和甲醇)时,同样200ul(或1毫升)容量,吸出来的体积不同,(体积小时看不出来,但超过一定量时,则非常明显).我估计是枪里边的压力造成的,但吸试剂时,到底准不准呢;如果用玻璃吸管则不会出现这种情况.大家讨论一下,看看是怎么回事,到底算不算准确.高手也可顺便指导一下.呵呵

简单地说，吸量管就是有刻度的移液管。下面详述。

1、移液管是准确移取一定量溶液的量器（量出式量器，符号为Ex）. 它是一根细长而中间膨大的玻璃管在管的上端有一环形标线，膨大部分标有它的容积和标定时的温度.常用的移液管有10 mL、25 mL、50 mL、100mL等规格。

2、吸量管的全称是"分度吸量管",又称为刻度移液管. 它是带有分度线的量出式玻璃量器。用于移取非固定量的溶液。吸量管可分为以下四类：

（1） 规定等待时间15s的吸量管
这类吸量管零位在上,完全流出式,它的任意一分度线的容量定义为:在20℃时，从零线排放到该分度线所流出20℃水的体积(m1).当液面降到该分度线以上几毫米时,应按紧管口停止排液15s，再将液面调到该分度线。在量取吸量管的全容量溶液时,排放过程中水流不应受到限制，液面降至流液口处静止后，要等待15s，再移走吸量管。

（2） 不完全流出式吸量管。
不完全流出式吸量管均为零点在上形式，最低分度线为标称容量.这类吸量管的任一分度线相应的容量定义为：20℃时，从零线排放到该分度线所流出的20C水的体积(mL) 。

（3）完全流出式吸量管。
这类吸量管有零点在上和零点在下两种形式.其任一分度线相应的容量定义为:在20℃时,从分度线排放到流液口时所流出20℃水的体积(mL),液体自由流下,直到确定弯月面已降到流液口静止后,再脱离容器(指零点在下式);或者从零线排放到该分度线或流液口所流出20℃水的体积(指零点在上式)。

（4） 吹出式吸量管。
这类吸量管流速较快，且不规定等待时间。有零点在上和零点在下两种形式，均为完全流出式。吹出式吸量管的任意一分度线的容量定义为：在20℃时，从该分度线排放到流液口(指零点在下)所流出的或从零线排放到该分度线(指零点在上)所流出的20℃水的体积(m1)。使用过程中液面降至流液口并静止时，应随即将最后一滴残留的溶液一次吹出。

目前市场上还有一种标“快”字的吸量管，其容量精度与吹出式吸量管相近似。吹出式及快流速吸量管的精度低、流速快，适于在仪器分析实验中加试剂用，最好不用其移取标准溶液。
吸量管的其它操作方法同移液管。

烦请提供一下相关供应商的信息，最好价格便宜的。

本人是生物实验小白，但是现在要开始培养细胞了，后续会做细胞毒性之类的。打算要买多道移液器，想请问各位前辈多道移液枪具体用起来是怎样啊？难道配制的溶液要分装八个才能一起吸液吗？很苦恼吸液到底是怎样的，不要笑…

1、使用前：使用移液管，首先要看一下移液管标记、准确度等级、刻度标线位置等。
2、吸液：用右手的拇指和中指捏住移液管的上端，将管的下口插入欲吸取的溶液中，插入
不要太浅或太深，一般为10～20mm处，太浅会产生吸空，把溶液吸到洗耳球内弄脏溶液，
太深又会在管外沾附溶液过多。左手拿洗耳球，接在管的上口把溶液慢慢吸入，先吸入该管 容量的1/3
左右，用右手的食指按住管口，取出，横持，并转动管子使溶液接触到刻度以上 部位，以置换内壁的水分，然后将溶液从管的下口放出并弃去，如此用反复洗3
次后，即可 吸取溶液至刻度以上，立即用右手的食指按住管口。 3、调节液面：将移液管向上提升离开液面，管的末端仍靠在盛溶液器皿的内壁上，管身保
持直立，略为放松食指（有时可微微转动吸管）使管内溶液慢慢从下口流出，直至溶液的弯
月面底部与标线相切为止，立即用食指压紧管口。将尖端的液滴靠壁去掉，移出移液管，插 入承接溶液的器皿中。
4、放出溶液：承接溶液的器皿如是锥形瓶，应使锥形瓶倾斜30°，移液管直立，管下端紧
靠锥形瓶内壁，稍松开食指，让溶液沿瓶壁慢慢流下，流完后管尖端接触瓶内壁约15 秒后，
再将移液管移去，残留在管末端的少量溶液，不可用外力强使其流出，因较准时已考虑了末 端保留的溶液的体积。

楼主你好：
准确的分析方法对于生物化学实验是极为重要的，在各种生物化学分析技术中，首先要熟练掌握的就是准确的移液技术。为此要用到各种形式的移液管，其中有一些是学生们在化学实验中未用过而在生化实验中是常用的。
1 滴管
使用方便，可用于半定量移液，其移液量为1mL～5mL，常用2mL，可换不同大小的滴头。滴管有长、短两种，新出的一种带刻度和缓冲泡的滴管，可以比普通滴管更准确地移液，并防止液体吸入滴头。
2 移液管(吸管)
吸管使用前应洗至内壁不挂水珠，1mL 以上的吸管用吸管专用刷刷洗，0.1mL、0.2mL 和0.5mL的吸管可用洗涤剂浸泡，必要时可以用超声清洗器清洗。由于铬酸洗液致癌，应尽量避免使用。若有大量成批的吸管洗后冲洗，可使用冲洗桶，将吸管尖端向上置于桶内，用自来水多次冲洗后再用蒸馏水或无离子水冲洗。
吸管分为两种，一种是无分度的，称为大肚吸管，精确度较高，其相对误差A 级为0.7％~0.8％，B 级为1.5％~0.16％，液体自标线流至口端(留有残液)，A 级等待15s，B 级等待3s。另一种吸管为分度吸管，管身为一粗细均匀的玻璃管，上面均匀刻有表示容积的分度线，其准确度低于胖肚吸管，相对误差A 级为0.8％～0.2％，B 级为1.6％～0.4％，A 级、B 级在吸管身上有A、B 字样，有”快”字则为快流式，有”吹”字则为吹出式，无”吹”字的吸管不可将管尖的残留液吹出。吸、放溶液前要用吸水纸擦拭管尖。
3 微量进样器
微量进样器常用作气相和液相色谱仪的进样器，在生化实验中主要是用作电泳实验的加样器，通
常可分为无存液和有存液两种。
(1)10μL 以下的极微量液体进样。
无存液微量进样器：进样器的不锈钢芯子直接通到针尖端处，不会出现存液。
(2)10μL～100μL 有存液微量进样器：不锈钢的针尖管部分是空管，进样器的柱塞不能到达，因而管内会存有空气或液体，其使用注意事项是：①不可吸取浓碱溶液，以免腐蚀玻璃和不锈钢零件；②因为有存液，所以吸液时要来回多拉几次，将针尖管内的气泡全部排尽；③针尖管内孔极小，使用后尤其是吸取过蛋白质溶液后，必须立即清洗针尖管，防止堵塞。若遇针尖管堵塞，不可用火烧，只能用φ0.1mm 的不锈钢丝耐心串通；④进样器未润湿时不可来回干拉芯子，以免磨损而漏气；⑤若进样器内发黑，有不锈钢氧化物，可用芯子蘸少量肥皂水，来回拉几次即可除之。（更多质量检测、分析测试、化学计量、标准物质相关技术资料请参考中检所对照品查询 www.rmhot.com）
4 自动取液器
这种取液器在生化实验中大量地使用，它们主要用于多次重复的快速定量移液，可以只用一只手操作，十分方便。移液的准确度(即容量误差)为±(0.5％～1.5％)，移液的精密度(即重复性误差)更小些，为≤0.5％。
取液器可分为二种：一种是固定容量的，常用的有100μ L 等多种规格。每种取液器都有其专用的聚丙烯塑料吸头，吸头通常是一次性使用，当然也可以超声清洗后重复使用，而且此种吸头还可以进行120℃高压灭菌；另一种是可调容量的取液器，常用的有200μL、 500μL 和1000μL 等几种。
可调式自动取液器的操作方法是用拇指和食指旋转取液器上部的旋钮，使数字窗口出现所需容量体积的数字，在取液器下端插上一个塑料吸头，并旋紧以保证气密，然后四指并拢握住取液器上部，用拇指按住柱塞杆顶端的按钮，向下按到第一停点，将取液器的吸头插入待取的溶液中，缓慢松开按钮，吸上液体，并停留1～2秒钟(粘性大的溶液可加长停留时间)，将吸头沿器壁滑出容器，用吸水纸擦去吸头表面可能附着的液体，排液时吸头接触倾斜的器壁，先将按钮按到第一停点，停留一秒钟(粘性大的液体要加长停留时间)，再按压到第二停点，吹出吸头尖部的剩余溶液，如果不便于用手取下吸头，可按下除吸头推杆，将吸头推入废物缸。
自动取液器的使用注意事项是：
①吸取液体时一定要缓慢平稳地松开拇指，绝不允许突然松开，以防将溶液吸入过快而冲入取液器内腐蚀柱塞而造成漏气。
②为获得较高的精度，吸头需预先吸取一次样品溶液，然后再正式移液，因为吸取血清蛋白质溶液或有机溶剂时，吸头内壁会残留一层”液膜”，造成排液量偏小而产生误差。
③浓度和粘度大的液体，会产生误差，为消除其误差的补偿量，可由试验确定，补偿量可用调节旋钮改变读数窗的读数来进行设定。
④可用分析天平称量所取纯水的重量并进行计算的方法，来校正取液器，1mL 蒸馏水20℃时重0.9982g。

根据所移溶液的体积和要求选择合适规格的移液管使用，在滴定分析中准确移取溶液一般使用移液管，反应需控制试液加入量时一般使用吸量管。 摇匀待吸溶液，将待吸溶液倒一小部分于一洗净并干燥的小烧杯中，用滤纸将清洗过的移液管尖端内外的水分吸干，并插入小烧杯中吸取溶液，当吸至移液管容量的1/3时， 立即用右手食指按住管口，取出，横持并转动移液管，使溶液流遍全管内壁，将溶液从下端尖口处排入废液杯内。如此操作，润洗了3－4次后即可吸取溶液。
将用待吸液润洗过的移液管插入待吸液面下1～2cm处用吸耳球按上述操作方法吸取溶液（注意移液管插入溶液不能太深，并要边吸边往下插入，始终保持此深度）。当管内液面上升至标线以上约1～2cm处时，迅速用右手食指堵住管口（此时若溶液下落至标准线以下，应重新吸取），将移液管提出待吸液面，并使管尖端接触待吸液容器内壁片刻后提起，用滤纸擦干移液管或吸量管下端粘附的少量溶液。（在移动移液管或吸量管时，应将移液管或吸量管保持垂直，不能倾斜） 洗净移液管，放置在移液管架上。向左转|向右转

就是先往移液管中加入溶液，溶解的量必须是刻度以下即有读数，如0.90
然后往容器中滴液体直至读数为0.70时就可以了