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基于VxWorks的NANDFLASH驱动程序设计_图文_
来自 : mayitao
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤

一、变性、还原和缓冲液置换

1.在真空干燥器中浓缩120ug混合蛋白样品,直至完全干燥。

2.将蛋白样品重新溶解在约1ml变性/还原缓冲液中,37°C孵育30min,使样品变性还原。

体积不掃要非常精确,因为在下一步操作中缓冲液还需置换。不过样品体积越小,需要置换的时间就越短。

3.除去还原剂,降低尿素浓度以及除去缓冲液中的干扰成分。用约4ml生物素化/胰酶消化缓冲液置换原液,在CentriconYM-3浓缩管中进行(4°C离心)。

二、标记Biotin-HPDP和缓冲液置换

4.标记所有自由巯基。加入50ul4mmol/LBiotin-HPDP(溶于DMSO中)到样品中(第③步操作后样品体积约为1ml),室温孵育标记混合物90min。

由于不确定标记反应是否能在2mol/L尿素存在的情况下有效进行,所以可加人过量的Biotin-HPDP。Biotin-HPDP的量应大于亲和柱的结合能力(理论上,Img抗生物素蛋白可结合59nmol的生物素)。

5.用新鲜的生物素/胰酶消化缓冲液置换原液,以除去未结合的Biotin-HPDP。

置换在CentriconYM-3浓缩管中进行(4°C离心)。

未结合的Biotin-HPDP会与生物素化的多肽竞争结合抗生物素蛋白。

第③步用过的CentriconYM-3浓缩管可在这一步重复使用。

三、标记后蛋白混合物的消化

6.加1.5ug胰酶到生物素化的样品中,孵育消化过夜(37°C)。

7.用PBS(含1mmol/LEDTA)稀释样品消化产物,使尿素浓度降到0.5mol/L以下。

如果在几个小时内就用于抗生物素亲和柱,样品则可以在室温、4°C或冰冻保存。若需要留存更长时间,则保存在-80°C。

四、固定化抗生物素亲和柱捕获及洗脱

8.用5mlPBS(含lmmol/LEDTA)平衡1ml固定化抗生物素亲和柱。

9.将消化后的样品(来自第⑦步)加到亲和柱上,封闭亲和柱,室温孵育30min。注意不要让柱子变干。

10.为收集不含半胱氨酸的多肽,用10mlPBS(含1mmol/LEDTA)淋洗柱子,并收集洗脱液。这样可获得穿透组分。

11.从固定化抗生物素亲和柱上洗脱含半胱氨酸的多肽。

(1)加2ml含50mmol/LDTT(现用现加)的PBS到柱子上,使其进入柱子。

(2)封闭柱子,室温孵育30min。

(3)打开柱子,收集2ml洗脱液,得到结合组分。

五、烷基化和除盐

12.如果要进行LC-MS/MS分析,需用IAA(分别为10mmol/L和100mmol/L)对穿透组分和结合组分分别进行烷基化,避光室温作用30min。

13.用90%甲酸酸化肽段(分别加20沁到结合组分,IOOiLd到穿透组分),使甲酸终浓度为1%。在脱盐前一直将样品保存在-80°C。

14.根据厂商提供的使用说明,在LC-MS/MS之前用OasisHLB抽提柱(或类似设备)对各个组分进行脱盐。

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