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EagleBio/easYmer HLA-A*68:02 MHC Tetramers Kit/1043-01
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EagleBio/easYmer HLA-A*68:02 MHC Tetramers Kit/1043-01
品牌 / 
EagleBio
货号 / 
1043-01
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easYmer HLA-A*68:02 MHC Tetramers Kit

easYmer HLA-A*68:02 MHC Tetramers Kit Developed and Manufactured by immunAware

Materials Included:

The easYmer kit contains a peptide receptive preparation of HLA, a folding buffer, a positive control peptide for HLA-complex folding. The exact identities of these components are given below:

  • easYmer: HLA-A*68:02 (C67S; unpaired Cysteine in position 67 is substituted for Serine) – peptide receptive, biotinylated in Tris/Maleate pH 7 with 30% Glycerol
  • Folding Buffer: Tris/Maleate pH7
  • Peptide: RRYTRRISL, a stable HLA-B*68:02 binder. Positive control for evaluation analysis of peptide-HLA folding.

For Research Use Only

Available Sizes:

  • 20 Tests (Sample-size)
  • 50 Tests (Standard Size)
  • 150 Tests
  • 500 Tests

Key Benefits of easYmer® MHC Tetramers

  • Ready-to-use
  • One step loading
  • Completely flexible and customizable*
  • Biotinylated
  • No special equipment needed
  • Long shelf-life

*For Custom Tetramer Production, please Contact Us for more information


Assay Principle

This protocol is designed to evaluate the efficiency of peptide-HLA-I interaction and complex formation. The assay is based on detecting the ß2-microglobulin (ß2m? light chain subunit of recombinant HLA Class I (HLA-I) comlexes, where the heavy chain has been biotin tagged. These tagged complexes are subsequently captured by streptavidin coated beads, labeled with PE-conjugated anti-human ß2m, and analyzed by flow cytometry. Since peptide-HLA-I complex formation is entirely peptide dependent, bead-associated signals will only be detected if the peptide in question supports the folding of the HLA-I allotype of interest; peptides that efficiently support folding will give strong signals whereas peptides that support folding sub-optimally, or not at all, will give moderate to non-detectable signals.


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CSF Extract Prep for Spindle AssemblyClaire Walczak11/95This protocol is essentially as described by Murray (1991), Cell Cycle Extracts. In Methods in Cell Bio 查看更多>
2021-09-04
(QMC Variant) For use on Life Sciences Linistainer 1. Dissolve 10g of haematoxylin in 100mls of alcohol 2. Dissolve 200g of potassium alum in 2 litres of disti 查看更多>
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数码相机的心脏——CCD 决定数码相机拍摄的画面质量高低的,从根本上来说是CCD。那么,只看CCD的性能,是否就能够了解相机的性能呢?回答是:"从某种程度上来说,是的"。 由CCD的性能决定的图象性能的要素有很多,其中,能够为使用者得到相关信息的,包括以下几项:CCD尺寸、像素数量、单 查看更多>
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Konica单反相机简史第一部柯尼卡单反相机是1960年代Konica F。它有一部直走幕廉快门,Hi-Synchro,最高速度为1/2000秒,闪光同步为1/125 秒。在当时为最快。想想直到七十年代,最快的专业相机也不过是1/1000秒而已。但是因为这个快门制造麻烦,而且太出色了,没有其它的制造商跟进。( 柯尼卡 查看更多>
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光声成像 123
██櫩9██2018-01-14
光声信号产生的基本原理是:当用短脉冲激光照射吸收体时,吸收体中的分子吸收光子后,当满足一定的条件时,吸收体分子的电子从低能级跃迁到高能级而处于激发态,而处于激发态的电子极不稳定,当电子从高能级向低能级跃迁时,会以光或热量的形式释放能量。在光声成像应用中通常会选择合适波长的激光作为激发源,使吸收的光子的能量转化为热能的效率最大,通常从光能转化为热能的效率可达到90%以上。释放的热量导致吸收体局部温度升高,温度升高后导致热膨胀而产生压力波,这就是光声信号。因此,光声信号的产生过程就是“光能”-“热能”-“机械能”的转化过程。
图1 光声成像工程 (a)光声信号激发与探测;(b)光声成像实现过程示意图
光声成像过程可以分为三个部分:信号的产生、信号的接收和信号处理及图像重建(见图1)。由于脉冲激光器具有光声转换效率高的优点,因此通常被作为光声成像研究中产生信号的激励源。脉冲激光器发出的激光束照射在待研究组织样品上,由于组织样品的吸收效应,在样品内部形成了与组织光学参数相关的能量沉积分布。由于激光脉宽很窄(ns)吸收的能量不能在短时间内释放,导致瞬间温度变化,从而通过热弹机制转化为热膨胀。周期性热流使周围的介质热胀冷缩而激发超声波,由于这种超声波信号的特殊产生机理,为了区别于其它的超声信号,通常称为光声信号。利用超声探测器接收光声信号并对采集到的信号进行适当地处理和采用相应的图像重建算法,就能够得到样品内部光能量沉积的分布。当保证入射光的均匀性的前提下,光声重建图像与吸收分布具有一一对应的关系。向左转|向右转
在图的照相机、反光镜、放大镜、投影仪四个光学仪器中,与其它三个成像原理不同的是(  )A.B.C.D.
根据我理解所说完美像应该指达衍射极限像质吧 近做反射式光系统理论单抛物面反射镜像质能达衍射极限且反射系统完全存色差 反射系统体积难控制且应用领域限
光系统设计难各种光系统都各自特点所像质优化重点全致 没像数或者物理领域种著名课题 希望能帮

实验室新组建,想咨询一下Camag薄层色谱成像系统的价格及一套显微成像的设备清单与价格。显微成像主要用于中药材的显微鉴别

CRISPR打造强大成像系统123
论坛小文章2021-07-24

纽约大学的研究团队在CRISPR-Cas9的基础上开发了一个定向检测基因组区域的活体成像系统。该系统能够精确观测基因组位点和细胞核结构,揭示细胞核改变在基因表达调控和其他细胞过程中的重要作用。

CRISPR-Cas9原本是细菌在漫长的进化史中演化出的重要防御机制。规律成簇的间隔短回文重复CRISPR与内切酶Cas9的组合,可以在sgRNA的指引下,靶标并切割入侵者的遗传物质。2012年研究者们利用这一特点,将CRISPR系统发展成了强大的基因组编辑工具。现在CRISPR-Cas9基因组编辑系统的应用延伸到了基因敲除、删除、染色体重排、RNA编辑、全基因组筛选等众多领域。

研究人员用病毒RNA和sgRNA生成了嵌合转录本。这种转录本与缺乏剪切活性的Cas9共表达,可以把荧光标记的病毒RNA结合蛋白招募到基因组指定位点。为了证实CRISPR成像技术的效率和灵活性,研究人员同时标记了小鼠染色体12的两种卫星序列,以及不同的基因组位点。他们在文章中指出,这是一种快速、稳定的低背景成像技术,可以用来追踪染色质互作动态和验证表观遗传学过程。

为了更好的研究非编码RNA,哈佛大学的科学家们以CRISPR为基础打造出了一个定向的RNA定位法——CRISPR-Display(CRISP-Disp)。他们利用失去催化活性的dCas9,将整合在sgRNA中的大片段RNA带到特定DNA位点。文章通讯作者是RNA领域的著名青年科学家JohnRinn博士,他曾被评为2009年美国国内撼动科学界的青年英才。

在CRISPR系统的基础上使用sgRNA文库进行遗传筛选,是鉴定基因调控子的一种有效方法。研究者们可以通过CRISPR筛选在基因组非编码区域中寻找功能性元件。不过这样的应用需要高度覆盖又简单实用的自定义sgRNA文库。耶鲁大学医学院的研究人员开发了一个名为MolecularChipper的新技术。该技术能够针对指定基因组区域生成密集覆盖的sgRNA文库。

酿脓链球菌的Cas9现在已经被广泛用于基因组编辑。那么,对Cas9进行基因工程改造将面临哪些限制呢?加州大学伯克利分校的研究团队通过随机插入突变对Cas9结构进行了全面分析,鉴定了这种蛋白的基因改造热点。这些位点可以耐受PDZ结构域的插入,不影响Cas9的结合和剪切功能。


影像设备都有什么?CT,DR,乳腺机,谁能一一的介绍下它们的用途呢?在网上找复制过来也可以,我找不到它们的用途。。最好能简单介绍下。我是做医疗设备的新手。。问同行,他们看不起我,甚至连大概价格都不给我说
玩蛋白的大神们,你们在凝胶成像系统下拍照时是怎么做参照的啊,Marker也看不见啊。。。
显微成像系统及方法123
HailHydra52017-09-13

显微镜是OlympusDP71,弄比例尺的时候出来个“衸”,这是什么鬼啊?如何换算成微米?测量的那个选项我选的是10微米,也只有那个选项可以点。然后倍数选择200,然后他就出来这个200衸,选100倍数是500衸,400倍是200也衸,但长度是200的两倍,**各位大神帮帮忙,要怎样才能换成微米?另外1衸是多少微米?


本单位提供小动物超声,光声成像服务
通过对人体产生的热量进行捕捉 在呈现出来因而可以穿墙 整体浇筑的建筑应该是将外溢的热量封闭了才无效的把
我也最近才了解到,fluke红外热成像仪很抗摔,都说2米跌落都没问题!而且还并经过严苛的振动、电磁干扰、极温、高湿度环境的耐损测试,而市场上的其它产/品却无法证明其能够适用于同等恶劣环境检测。所以还是选择坚固耐用的福禄克靠谱!

总局关于发布医用磁共振成像系统临床评价等4项医疗器械注册技术审查指导原则的通告(2017年第6号)

2017年01月16日发布http://www.sfda.gov.cn/WS01/CL0087/168596.html



  为加强医疗器械产品注册工作的监督和指导,进一步提高注册审查质量,国家食品药品监督管理总局组织制定了《医用磁共振成像系统临床评价技术审查指导原则》《口腔颌面锥形束计算机体层摄影设备注册技术审查指导原则》《体外除颤产品注册技术审查指导原则》《光固化机注册技术审查指导原则》(见附件),现予发布。

  特此通告。

  附件:1.医用磁共振成像系统临床评价技术审查指导原则
     2.口腔颌面锥形束计算机体层摄影设备注册技术审查指导原则
     3.体外除颤产品注册技术审查指导原则
     4.光固化机注册技术审查指导原则


食品药品监管总局
2017年1月10日

2017年第6号通告附件1.docx

2017年第6号通告附件2.docx

2017年第6号通告附件3.doc

2017年第6号通告附件4.docx