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TheNativeAntigenCompany/Rabbit Anti-Borrelia burgdorferi sensu stricto (B31) DbpB Antibody/100ug/PAB21450-100_蚂蚁淘,【正品极速】生物医学科研用品轻松购|ebiomall 蚂蚁淘商城
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TheNativeAntigenCompany/Rabbit Anti-Borrelia burgdorferi sensu stricto (B31) DbpB Antibody/100ug/PAB21450-100
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RABBIT ANTI-BORRELIA BURGDORFERI SENSU STRICTO (B31) DBPB ANTIBODY

This is a polyclonal antibody, prepared against Decorin Binding Protein B (DbpB) from the spirochete B. burgdorferi, for use in ELISA and western blotting applications. Strain B31 is the type strain (ATCC 35210) for this organism and was derived by limited dilutional cloning from the original Lyme-disease tick isolate obtained by A. Barbour (Johnson, et al., 1984). It should be noted that other microbial DbpA’s, such as E. coli (ATP-dependent RNA helicase DbpA), are significantly different to Borrelia DbpA. B. burgdorferi sensu stricto has a linear plasmid (lp54) which carries a two-gene operon encoding two surface lipoproteins, DbpA and DbpB, both of which bind decorin (Guo, et al., 1995).

PRODUCT DETAILS – RABBIT ANTI-BORRELIA BURGDORFERI SENSU STRICTO (B31) DBPB ANTIBODY

  • Rabbit anti-B. burgdorferi sensu stricto DbpB polyclonal IgG antibody (strain B31).
  • Greater than 95% purity by SDS-PAGE and buffered in 0.02 M Potassium Phosphate, 0.15 M Sodium Chloride, pH 7.2.

BACKGROUND

DbpA and DbpB are surface-exposed outer membrane lipoproteins that mediate the attachment of Borrelia to decorin, a major component of the host extracellular matrix, enabling bacteria to colonize mammalian tissues (Roberts, et al., 1998). Both can mediate interaction with the glycosaminoglycans (GAGs) heparin and dermatan sulfate (Guo, et al., 1998), but only DbpB binds chondroitin sulfate (Fischer, et al., 2003). The expression of decorin-binding protein (Dbp) A and/or DbpB is sufficient to convert a high-passage nonadherent B. burgdorferi strain into one that efficiently binds 293 epithelial cells.

The spirochete travels from the tick mid-gut during tick feeding, to the tick salivary glands and into the mammal host, and it is believed that this migration is facilitated by changes in expression of different B. burgdorferi genes. It is thought that expression of the various proteins associated with the spirochete may be regulated by the changes in tick life cycle, changes in conditions during tick feeding (such as temperature, pH, and nutrients) and/or in coordination with the course of infection of the mammal host. While not expressed in the unfed tick, DbpA (and possibly DbpB) are quickly upregulated, either during feeding or after entry, into the host. The location of DbpA and DbpB in the outer membrane of B. burgdorferi allows exposure of these proteins to the host immune system. DbpA has also been used to show high levels of genetic diversity in B. afzelii-infected rodent hosts, by qPCR (Coipan, et al., 2018).

NMR and a crystal structure of a DbpA monomer (resolution of 1.60 Å) confirmed three lysines co-localize with decorin to a common basic patch near the C terminus of the protein (Wang & Feng, 2015; Fortune, et al., 2014). Knockout strains confirmed that the lysine residues are required for binding and infection in mice (Fortune, et al., 2014). Strain-specific variations of Borrelia surface proteins also affect tissue tropism (Lin, et al., 2014) as well as differences in GAG binding affinities which is correlated with differences in GAG-binding pocket location and epitope number (Morgan & Wang, 2015).

REFERENCES

  • Casselli, T., Tourand, Y. & Bankhead, T., 2012. Altered murine tissue colonization by Borrelia burgdorferi following targeted deletion of linear plasmid 17-carried genes. Infection and Immunity, 80(5), pp. 1773-1782.
  • Coipan, C. E. et al., 2018. The genetic diversity of Borrelia afzelii is not maintained by the diversity of the rodent hosts. Parasit Vectors, 11(1), p. 454.
  • Fischer, J. R., Parveen, N., Magoun, L. & Leong, J. M., 2003. Decorin-binding proteins A and B confer distinct mammalian cell type-specific attachment by Borrelia burgdorferi, the Lyme disease spirochete. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. , Volume 100, p. 7307–7312.
  • Fortune, D. E. et al., 2014. Identification of Lysine Residues in the Borrelia burgdorferi DbpA Adhesin Required for Murine Infection. Infect Immun., 82(8), p. 3186–3198.
  • Guo, B. P. et al., 1998. Decorin-binding adhesins from Borrelia burgdorferi. Mol. Microbiol. , Volume 30, p. 711–723.
  • Guo, B. P., Norris SJ, S. J., Rosenberg, L. C. & Hook, M., 1995. Adherence of Borrelia burgdorferi to the proteoglycan decorin. Infect. Immun., Volume 63, p. 3467–3472.
  • Johnson, R.C., et al. 1984. Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiologic agent of Lyme disease. Int J Syst Bacteriol, 34, pp. 496–497.
  • Lin, Y. P., Benoit, V., Yang, X. & Martínez-Herranz, R., 2014. Strain-specific variation of the decorin-binding adhesin DbpA influences the tissue tropism of the lyme disease spirochete. PLoS Pathog. , 10(7), p. 14.
  • Morgan, A. M. & Wang, X., 2015. Structural mechanisms underlying sequence-dependent variations in GAG affinities of decorin binding protein A, a Borrelia burgdorferi adhesin. Biochem J., 467(3), pp. 439-51.
  • Roberts, W. C., Mullikin, B. A., Lathigra, R. & Hanson, M. S., 1998. Molecular analysis of sequence heterogeneity among genes encoding decorin binding proteins A and B of Borrelia burgdorferi sensu lato. Infect. Immun., Volume 66, p. 5275–5285.
  • Wang, X. & Feng, W., 2015. Structure of decorin binding protein B from Borrelia burgdorferi and its interactions with glycosaminoglycans. Biochim Biophys Acta., 1854(12), pp. 1823-1832.

Product datasheet – PAB21450-25Product datasheet – PAB21450-100Safety datasheet

Western blot showing detection of 0.1 µg recombinant DbpB protein. Lane 1: Molecular weight markers. Lane 2: MBP-DbpB fusion protein (arrow; expected MW: 60.9 kDa). Lane 3: DbpB, MBP removed by TEV cleavage. Lane 4: MBP alone. Protein was run on a 4-20% gel, then transferred to 0.45 µm nitrocellulose. After blocking with 1% BSA-TTBS (overnight at 4°C), anti-DbpB primary antibody was used at 1:1000 at room temperature for 30 min. HRP-conjugated Goat-Anti-Rabbit secondary antibody was used at 1:40,000 in HiGlo Blocking Buffer and imaged on the VersaDoc™ MP 4000 imaging system (Bio-Rad).

Dry ice – PAB21450-25Ambient – PAB21450-100

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2018-04-10
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电导率仪如何校正 123
沪深感1232017-10-02
配制0.01mol/L的氯化钾溶液,将电导率仪调至校正档,把电极浸入氯化钾溶液中,在25℃时的电导率为1408.8μS/cm,如读数显示不正确,调节校正旋钮至读数显示1408.8。
现要做血球分析仪的配套试剂,需要pH计、电导率测定仪及渗透压测定仪,希望各位能推荐一下性价比高的仪器。能同时测PH值和电导率的多参数测定仪一般要多少钱?
可以使用电导仪检测滴定方法的终点。和生产厂家的品牌有关。
急需DDS-307型电导率仪标准操作规范,哪位老师有请给我发一份谢谢~
被测溶液差异较大,所以配备的电极常数也不尽相同,因此,可以通过量程确定。
  对于纯电阻线路,电导与电阻的关系方程为G=1/R, 其中G为物体电导,导体的电阻越小,电导就越大,数值上等于电阻的倒数: G = 1/R。 在交流电路中电导定义为导纳的实部(注意:不是电阻的倒数):Y = G + jB。电导会随着温度的变化而有所变化。
电导率是物质传送电流的能力,是电阻率的倒数。在液体中常以电阻的倒数——电导来衡量其导电能力的大小。水的电导是衡量水质的一个很重要的指标。它能反映出水中存在的电解质的程度。根据水溶液中电解质的浓度不同,则溶液导电的程度也不同。通过测定溶液的导电度来分析电解质在溶解中的溶解度。这就是电导仪的基本分析方法。
溶液的电导率与离子的种类有关。同样浓度电解质,它们的电导率也不一样。通常是强酸的电导率最大,强碱和它与强酸生成的盐类次之,而弱酸和弱碱的电导率最小。因此,通过对水的电导的测定,对水质的概况就有了初步的了解。电导率 电阻率的倒数即称之为电导率L。在液体中常以电阻的倒数——电导来衡量其导电能力的大小。电导L的计算式如下式所示: L=l/R=S/l电导的单位用姆欧又称西门子。用S表示,由于S单位太大。常采用毫西门子,微西门子单位1S=103mS=106μS。
当量电导 液体的电导仅说明溶液的导电性能与几何尺寸间的关系,未体现出溶液浓度与电性能的关系。为了能区分各种介质组成溶液的导电性能,必须在电导率的要领 引入浓度的关系,这就提出了当量电导的概念。所谓的当量电导就是指把1g当量电解质的溶液全部置于相距为1cm的两板间的溶液的电导,符号“λ”。由于在电导率的基础上引入了浓度的概念。因此各种水溶液的导电来表示和比较了。在水质监测中,一般通过对溶液电导的测量可掌握水中所溶解的总无机盐类的浓度指标。温度对电导的影响 溶液的电阻是随温度升高而减小,即溶液的浓度一定时,它的电导率随着温度的升高而增加,其增加的幅度约为2%℃-1。另外同一类的电解质,当浓度不同时,它的温度系数也不一样。在低浓度时,电导率的温度之间的关系用下式表示: L1=L0[1+α(t-t0)+β(t-t0)2]由于第二项β(t-t0)2之值较小,可忽略不计。在低温时的电导率与温度的关系可用以下近似值L1=L0[1+α(t-t0)]表示,因此实际测量时必须加入温度补偿。
电导的温度系数 对于大多数离子,电导率的温度系数大约为+1.4%℃-1~3%℃-1对于H+和OH-离子,电导率温度系数分别为1.5%℃-1和 1.8%℃-1,这个数值相对于电导率测量的准确度要求,一般为1%或优于1%,是不容忽视的。纯水的电导率 即使在纯水中也存在着H+和OH-两种离子,经常说,纯水是电的不良导体,但是严格地说水仍是一种很弱的电解质,它存在如下的电离平衡:H2O←→H++OH或2H2O←→H3+O+OH-
其平衡常数:KW=[H+].[OH-]/H2O=10-14
式中KW称为水的离子积[H+]2=[OH-]2=10-14∴[H+]2=[OH-]2=10-7lH2O,0=λOH-,0=349.82+198.6=548.42S/cm.mol2已知水的密度d25℃/H2O=0.9970781cm3 故原有假设为1的水分离子浓度只能达到0.99707。实际上是仅0.99707份额的水离解成0.99707.10-7的[H+]和[OH-],那么离解后的[H+]和[OH-]电导率的总和KH2O用下式求出:KH2O=CM/1000λH2O
=(0.99707.10-7/1000).548.42=0.05468μS.cm-1≈0.054μS.cm-1∴ρH2O=1/KH2O=1/0.05468×10-9=18.29(MΩ.cm)≈18.3(MΩ.cm) 由水的离子积为10-14可推算出理论上的高纯水的极限电导为0.0547μS.cm-1,电阻为18.3MΩ.cm(25℃)。 水的电导率的温度系数在不同电导率范围有不同的温度系数。对于常用的1μS.cm-1的蒸馏水而言大约为+2.5%-1。
先将测量/校正旋钮转到校正的位置,然后根据你的电导电极上的参数调节常数旋钮到显示数值与你的电极参数一致,这时就不要再动常数旋钮了,将测量/校正旋钮转到测量的位置,然后就可以选择量程档位进行测量了。
请问大家,程序菜单中的参数是根据什么来调节的?
具体的操作方法是怎样的,为什么我用的时候总是需要很长的时间才能稳定下来,我的测的纯化水的电导率和制水车间显示的有一定的差距,是测量的问题还是其他什么地方存在这种误差?
谢谢大家!
适用于测量液体的电导率值。推荐您具有温度补偿功能的托普仪器的经济型电导仪 DDS-307,,测量数值由大屏幕LED数码显示, 小数点位置及高低频率随量程同步变换, 测量结果直读不必乘倍率。如测量数值溢出量程, 屏幕具有溢出显示等优点
有没有那种测流体的电导的,和核酸蛋白检测仪那样的?
我看市面上都是那种探头和PH仪样的,那要怎么操作呢?把探头一直插在接洗脱液的杯子里?
普通织物,化纤的和棉的都是绝缘的,导电率在向左转|向右转这个范围内。
植物生理学实验8123
loujovi2021-07-23
凝胶申报过程需要用到什么检查仪器需不需要电导仪?这些仪器需要检验部门进行校正不?
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