
CombiMag Transfection Reagent is the only existing reagent based on the use of magnetic nanoparticles (Magnetofection™), for improving your transfection reagent efficiency. It has been designed to be employed in association with any commercial transfection reagent and can be used with all types of nucleic acids. It has been successfully tested on a broad range of primary cells, hard-to-transfect cells and cell lines. Its efficiency has been reported in many publications. CombiMag allows creating your own optimal delivery system with at least 30% transfection efficiency enhancement.
- Ideal to enhance any transfection reagent efficiency without changing your protocol /cells
- Perfect for primary cells and hard-to-transfect cells
- Increase any transfection reagent efficiency
- Non toxic
- Compatible with and without serum
- Simple, rapid and easy-to-use
- For all types of nucleic acids
Sizes:
- 100 µL: 100 transfections with 1 µg of DNA
- 200 µL: 200 transfections with 1 µg of DNA
- 1000 µL: 1000 transfections with 1 µg of DNA
- #KC30200: Starting Kit with Super Magnetic Plate + 100 µL of CombiMag, PolyMag, PolyMag Neo
Storage: +4°C
Shipping conditions: Room temperature
- This reagent needs to be used with a magnetic plate
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这个问题出现很久了,一直没得到解决,问了好多实验室都说从来没有遇到这样的情况;问过一个工程师,他说这个不会是灌流引起的,可能是什么地方形成了短路;我以前做单细胞的时候(不用蠕动泵)也没有遇到这样的问题,在网上查了半天看见说可能是形成了原电池,导致AgCL的不断消耗,觉得很疑惑,这个原电池的另一极是什么?怎么形成的原电池?改怎么解决呢?
如果万一不行还想过把两根银丝都换成铂金丝,请问有没有谁是用铂金丝的?是不是和银丝一样用啊?有什么需要注意的?
现在因为这个没有办法做试验,心急如焚啊,请各位战友来帮帮我啊
传统膜片钳技术每次只能记录一个细胞(或一对细胞),对实验人员来说是一项耗时耗力的工作,它不适合在药物开发初期和中期进行大量化合物的筛选,也不适合需要记录大量细胞的基础实验研究。全自动膜片钳技术的出现在很大程度上解决了这些问题,它不仅通量高[3],一次能记录几个甚至几十个细胞,而且从找细胞、形成封接、破膜等整个实验操作实现了自动化,免除了这些操作的复杂与困难。这两个优点使得膜片钳技术的工作效率大大提高了!签于全自动膜片钳技术的这些优点,目前已经广泛的用于药物筛选。
2)内面向外式膜片( inside outpatch)细胞内外和电极内的溶液均可调控,既能较容易地改变细胞内的离子或物质浓度,又能把酶等直接加于膜的内侧面,适宜研究胞内物质对通道活动的影响。但实验中难以改变膜外侧物质,且需浸于低钙液中。常用于研究依赖细胞内钙的离子通道,如钙敏感的钾通道,还可用于细胞内激素和第二信使与通道的调节作用。
3) 外面向外式膜片(outside outpatch)能接触膜的两侧,可以任意改变膜外物质的浓度,有利于研究离子、递质对膜外表面的作用,多用于研究细胞膜外侧受体控制的离子通道。这些受体直接作用于离子通道,而不需经过第二信使系统。因细胞外液容易更换,故加药方便。缺陷是实验中难以改变胞内成分,而且电极管内必须充以低钙液。
4) 全细胞式膜片(whole cell patch)方式使细胞内与浴槽之间的漏流极少。电极本身阻抗(1~10MΩ)与细胞封接后的阻抗相比较低,这种低接触阻抗使单管电压钳容易实现。电极管内与细胞之间弥散交换与平衡快,因而容易控制细胞内液的成分。细胞钳记录的是许多通道的平均电流,有利于综合分析。如果有目的地将膜电位钳制在某一程度,可做到选择性抑制某些通道的活性而只记录某种通道电流的总和,并可在同一细胞上观察几种不同通道的情况。通过改变内部介质,如改变电极液成分,或在电极液中加入所需药物,通过渗透很快改变胞浆成分并达到平衡,该手段在全细胞记录中广泛应用。它适合于小细胞的电压钳位,对于直径大于30μm的细胞很难实现钳位。不足之处是由于电极与细胞间交换快,细胞内环境很容易破坏,因此记录所用的电极液应与胞浆主要成分相同,如高K+,低Na+和Ca2+及一定的缓冲成分和能量代谢所需的物质。
5) 穿孔膜片(perforated patch)是为克服常规全细胞模式的胞质渗漏问题,有学者将与离子亲和的制霉菌素或二性霉素B经微电极灌流到含有类甾醇的细胞膜上,形成只允许一价离子通过的孔,用此法在膜片上做很多导电性孔道,借此对全细胞膜电流进行记录。由于此模式的胞质渗漏极为缓慢,局部串联阻抗较常规全细胞模式高,所以钳制速度很慢,也称为缓慢全细胞模式。
感觉这样的提问没有什么意义
建议,可以自己查阅下资料
用场效应管运算放大器构成的I-V转换器是测量回路的核心部分。在场效应管运算放大器的正负输入端子为等电位,向正输入端子施加指令电位时,由于短路负端子以及膜片都可等电位地达到钳制的目的,当膜片微电极尖端与默片之间形成10GΩ以上封接时,其间的分流电流达到最小,横跨膜片的电流可100%作为来自膜片电极的记录电流(lp)而被测量出来。
这一伟大的贡献,使Neher和Sakmann获得1991年度的诺贝尔生理学与医学奖。
⒋另外,还应注意仪表的使用环境要符合要求,要远离外磁场。
直流电流表构造
查看图片[电流表]主要包括
三个接线柱[有"+","-"两种接线柱,如(+,-0.6A,-3A)或(-,0.6A,3A)],指针,刻度等(交流电流表无正负接线柱

