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表面活性剂是一种具有两性基团的大分子有机物。它通常由亲水基和疏水基两个部分组成，能显著降低液体或两相之间的表面张力，从而有润湿、乳化、分散、起泡等作用。对于不溶于水的油脂，在表面活性剂的作用下，可以溶于水中。表面活性剂的亲油基将油分子拉住，然后通过亲水基与水分子连接，这样平常不能溶于水的油类有机物就能溶于水中。有些有机电镀挂具就是通过这种方法溶于镀液中的。
由于亲水基和疏水基的种类很多，因此组成表面活性剂后也就形成了不同的表面活性剂。按不同表面形式，可以作出不同的分类。
按溶解方式，可分为水溶性表面活性剂和油溶性表面活性剂；按溶解后是否有离子游离，可分为离子型表面活性剂和非离子型表面活性剂；
按溶解后有离子游离，可分为阴离子型表面活性剂，阳离子型表面活性剂和两性型表面活性剂。

请问各位大神，配制琼脂糖胶的电泳浓度是怎么设定，比如百分之1或百分之1.5的浓度是怎么设置，是1.5g的琼脂糖粉加100g的TAE麽？

奥曲肽微球是奥曲肽的长效制剂目前国际上只有两种长效生长抑素类似物
一种是奥曲肽微球商品名“善龙”一种是兰瑞肽微球商品名“索马杜林”
两种药物都是纯进口产品因工艺特殊国际上至今都没有仿制品出现
国外已经有了二代长效生长抑素类似物是凝胶预充剂型的长效兰瑞肽
其工艺比微球制剂更先进了一步患者可做到像胰岛素一样进行自我注射
注射周期也比现有的28天注射间隔更长能达到56天或天的注射周期

个人以为，从试剂的合成和反应原理上，没有什么大的区别。都属于免疫组化的非生物素检测系统。只不过，不同的公司，叫法不同。在二抗与HRP的聚合反应中，使用的载体不同。如有的说明中，利用有机单体小分子，有的公司说用的葡聚糖多聚物。其共同目的，就是使聚合体上结合更多的二抗和HRP，使阳性信号放大。在这样的原理下，派生出很多试剂盒。如：迈新公司有Maxvision（聚合物法）、Elivision（增强聚合物法）、Elivision Super（放大聚合物法）。不同的试剂盒可能在增强抗体结合上或放大信号上作了文章。使用效果都不错。想详细明白，问问公司吧，问明白告我。

爆竹中主要原料除了火药还要加入适量的铝粉、镁粉、镁铝合金粉、铁粉等金属粉末，在烟花爆竹中作用起爆炸闪光作用，增强其他发光剂的色彩效果，使颜色更鲜艳亮丽。

什么是琼脂糖，由什么构成
琼脂糖凝胶电泳是常用的分离和检测方法，琼脂是最常用的载体支持物，核酸分子具有电荷效应和分子筛效应，利用此特性可达到分离检测的目的。
一、琼脂糖凝胶的特点
天然琼脂(agar)是一种多聚糖，主要由琼脂糖(agarose，约占80%)及琼脂胶(agaropectin)组成。琼脂糖是由半乳糖及其衍生物构成的中性物质，不带电荷，而琼脂胶是一种含硫酸根和羧基的强酸性多糖，由于这些基团带有电荷，在电场作用下能产生较强的电渗现象，加之硫酸根可与某些蛋白质作用而影响电泳速度及分离效果。因此，目前多用琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳，其优点如下。
1. 琼脂糖凝胶电泳操作简单，电泳速度快，样品不需事先处理就可以进行电泳。
2. 琼脂糖凝胶结构均匀，含水量大(约占98%~99%)，近似自由电泳，样品扩散较自由电流，对样品吸附极微，因此电泳图谱清晰，分辨率高，重复性好。
3. 琼脂糖透明无紫外吸收，电泳过程和结果可直接用紫外光灯检测及定量测定。
4. 电泳后区带易染色，样品极易洗脱，便于定量测定。制成干膜可长期保存。
目前，常用琼脂糖作为电泳支持物，分离蛋白质和同工酶。将琼脂糖电泳与免疫化学相结合，发展成免疫电泳技术，能鉴别其他方法不能鉴别的复杂体系，由于建立了超微量技术，0.1ug蛋白质就可检出。
琼脂糖凝胶电泳也常用于分离、鉴定核酸，如DNA鉴定，DNA限制性内切核酸酶图谱制作等。由于这种方法操作方便，设备简单，需样品量少，分辨能力高，已成为基因工程研究中常用实验方法之一。
二、DNA的琼脂糖凝胶电泳
琼脂糖凝胶电泳对核酸的分离作用主要是依据它们的相对分子量质量及分子构型，同时与凝胶的浓度也有密切关系。
1、核酸分子大小与琼脂糖浓度的关系
① DNA分子的大小 在凝胶中，DNA片段迁移距离(迁移率)与碱基对的对数成反比，因此通过已知大小的标准物移动的距离与未知片段的移动距离时行比较，便可测出未知片段的大小。但是当DNA分子大小超过20kb时，普通琼脂糖凝胶就很难将它们分开。此时电泳的迁移率不再依赖于分子大小，因此，就用琼脂糖凝胶电泳分离DNA时，分子大小不宜超过此值。
② 琼脂脂糖的浓度 如下表所示，不同大小的DNA需要用不同浓度的琼脂糖凝胶进行电泳分离。
表 琼脂糖浓度与DNA分离范围琼脂糖浓度/%0.30.60.70.91.21.52.0线状DNA大小/kb60-520-110-0.87-0.56-0.44-0.23-0.1
2、核酸构型与琼脂糖凝胶电泳分离的关系
不同构型DNA的移动速度次序为：供价闭环DNA(covalently closed circular，cccDNA)>直线DNA>开环的双链环状DNA。当琼脂糖浓度太高时，环状DNA(一般为球形)不能进入胶中，相对迁移率为0(Rm=0)，而同等大小的直线双链DNA(刚性棒状)则可以长轴方向前进(Rm>0)，由此可见，这三种构型的相对迁移率主要取决于凝胶浓度，但同时，也受到电流强度、缓冲液离子强度等的影响。
3、电泳方法
① 凝胶类型
用于分离核酸的琼脂糖凝胶电泳可分为垂直型及水平型(平板型)。水平型电泳时，凝胶板完全浸泡在电极缓冲液下1-2mm，故又称为潜水式。目前更多用的是后者，因为它制胶和加样比较方便，电泳槽简单，易于制作，又可以根据需要制备不同规格的凝胶板，节约凝胶，因而较受欢迎。
② 缓冲液系统
缺少离子时，电流太小，DNA迁移慢;相反，高离子强度的缓冲液由于电流太大会大量产热，严重时，会造成胶熔化和DNA的变性。
常用的电泳缓冲液有EDTA(pH8.0)和Tris-乙酸(TEA)，Tris-硼酸(TBE)或Tris-磷酸(TPE)等，浓度约为50mmol/L(pH7.5~7.8)。电泳缓冲液一般都配制成浓的贮备液，临用时稀释到所需倍数。
TAE缓冲能力较低，后两者有足够高的缓冲能力，因此更常用。TBE浓溶液长期贮存会出现沉淀，为避免此缺点，室温下贮存5×溶液，用时稀释10倍0.5×工作溶液即能提供足够缓冲能力。
③ 凝胶的制备
以稀释的电极缓冲液为溶剂，用沸水浴或微波炉配制一定浓度的溶胶，灌入水平胶框或垂直胶膜，插入梳子，自然冷却。
④ 样品配制与加样
DNA样品用适量Tris-EDTA缓冲液溶解，缓冲液内含有0.25%溴酚蓝或其他指示染料，含有10%-15%蔗糖或5%~10%甘油，以增加其比重，使样品集中。为避免蔗糖或甘油可能使电泳结果产生U形条带，可改用2.5%Ficoll(聚蔗糖)代替蔗糖或甘油。
⑤ 电泳
琼脂糖凝胶分离大分子DNA实验条件的研究结果表明，在低浓度、低电压下，分离效果较好。在低电压条件下，线性DNA分子的电泳迁移率与所用的电压呈正比。但是，在电场强度增加时，较大的DNA片段迁移率的增加相对较小。因此随着电压的增高，电泳分辨率反而下降，为了获得电泳分离DNA片段的最大分辨率，电场强度不宜高于5V/cm。
电泳系统的温度对于DNA在琼脂糖凝胶中的电泳行为没有显著的影响。通常在室温下进行电泳，只有当凝胶浓度低于0.5%时，为增加凝胶硬度，可在4℃进行电泳。
⑥ 染色和拍照
常用荧光染料溴乙锭(EB)染色，在紫外光下观察DNA条带，用紫外分析仪拍照，或用凝胶成像系统输出照片，并进行有关的数据分析。
注意事项：电泳中所使用的染料EB是致癌物质，一定要小心，避免其接触皮肤等，进行电泳操作的时候一定要带手套，手套要及时更换，现在也除了一些EB的替代物，如Goldview等。

这个对熟悉玻璃钢制作的工人来说显然不是什么问题。因为树脂型号、固化剂和厂家的不同，固化配比单会稍有出入，当然网上也有类似根据温度调节的固化配比单，也可在厂家没有提供固化配比单的情况下用作参考。但没有实际操作应用意义。首次施工要根据厂家提供的单子自己制作一张固化配比单，精确的话首次要使用电子秤（少量树脂实验用量杯或针筒误差偏大），内容有湿度、温度、促进剂、固化剂配比比例、固化时间。后期在冬天也是按照正常温度比如20--25度的配比来适当增加促进剂和固化剂来解决固化时间拉长的问题。那么按你的经验，固化剂比例是2.5%促进剂比例3-4%左右固化时间是2个小时左右，如果温度变化不大，用电子秤，比如100克的树脂添加3%促进剂，添加4.5%的固化剂来实践测量固化温度。操作上不要没有经过实验就盲目添加，这是为施工提供一个有效的操作规程，而不是凭工人经验操作。那么问题就解决了，逐步添加得出固化时间即可。预促进的树脂如果没有提供促进剂，也可单一提高固化剂添加比例解决，夏天和冬天固化剂添加比差别很大，做完一年才能得到实际配比，记录下按不同温度下实际添加的比例，以后就可以按最接近的温度表格来添加或适当调整即可。

发光试剂一20度冻溶有否影响结果

常见的表面活性剂有哪些？越多种越好，谢谢~~~`

鲁米诺(luminol)，又名发光氨。化学名称为3-氨基邻苯二甲酰肼。常温下是一种黄色晶体或者米黄色粉末，是一种比较稳定的人工合成的有机化合物。化学式为C8H7N3O2，结构式见右图，溶液显强酸性，对眼睛、皮肤、呼吸道有一定刺激作用。由于血红蛋白...

染料是Genviews的GenGreen的。图中Marker是NEB的1KBLadder，我相信marker本身是没什么问题的，但我的电泳系统跑出来总是会出现这种弯弯的现象，有可能是什么原因呢？好像随着电泳时间的延长，会弯的更明显。

请问有什么方法检测细胞内活性氧更好，各位有什么经验，及相关试剂盒推荐一下。