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Smartox/Discriminates between α9α10 and α7 nAChRs/13CON017-00100/0.1mg
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Smartox/Discriminates between α9α10 and α7 nAChRs/13CON017-00100/0.1mg
品牌 / 
Smartox
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13CON017-00100
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α-conotoxin PeIA is a conotoxin that has been isolated from the venom of Conus pergrandisα-conotoxin PeIA discriminates between α9α10 and α7 nicotinic acetylcholine receptors (AChRs) with IC50 values of 7-50 nM (depending of the authors) and 1.8 µM, respectively. The toxin is also known to block α3β2 nicotinic AChRs (with an IC50 of 97 nM) and block voltage-gated N-type Ca2+ channels in rat DRG neurons with an IC50 of 1.1 nM. No significant inhibition of ACh-evoked currents for nicotinic α4β2 and muscle αβγδ AChRs by 1 µM α-conotoxin PeIA was observed. The action of α-conotoxin PeIA is fully reversible after washout of the peptide in the extracellular medium.


Description:

Product code: 13CON017. Category: Nicotinic Acetylcholine Receptor. Tags: bungarotoxin, nachr, nicotinic.

AA sequence: Gly-Cys2-Cys3-Ser-His-Pro-Ala-Cys8-Ser-Val-Asn-His-Pro-Glu-Leu-Cys16-NH2 
Disulfide bonds: Cys2-Cys8, Cys3-Cys16
Length (aa): 16
Formula: C65H98N22O21S4
Molecular Weight: 1651.9 Da
Appearance: White lyophilized solid
Solubility: water or saline buffer
CAS number: not available
Source: Synthetic
Purity rate: > 99 %

Reference:

Structure and Activity of α-Conotoxin PeIA at Nicotinic Acetylcholine Receptor Subtypes and GABAB Receptor-coupled N-type Calcium Channels

α-Conotoxins are peptides from cone snails that target the nicotinic acetylcholine receptor (nAChR). RgIA and Vc1.1 have analgesic activity in animal pain models. Both peptides target the α9α10 nAChR and inhibit N-type calcium channels via GABA(B) receptor activation, but the mechanism of action of analgesic activity is unknown. PeIA has previously been shown to inhibit the α9α10 and α3β2 nAChRs. In this study, we have determined the structure of PeIA and shown that it is also a potent inhibitor of N-type calcium channels via GABA(B) receptor activation. The characteristic α-conotoxin fold is present in PeIA, but it has a different distribution of surface-exposed hydrophobic and charged residues compared with Vc1.1. Thus, the surface residue distribution, rather than the overall fold, appears to be responsible for the 50-fold increase in selectivity at the α3β2 nAChR by PeIA relative to Vc1.1. In contrast to their difference in potency at the nAChR, the equipotent activity of PeIA and Vc1.1 at the GABA(B) receptor suggests that the GABA(B) receptor is more tolerant to changes in surface residues than is the nAChR. The conserved Asp-Pro-Arg motif of Vc1.1 and RgIA, which is crucial for potency at the α9α10 nAChR, is not required for activity at GABA(B) receptor/N-type calcium channels because PeIA has a His-Pro-Ala motif in the equivalent position. This study shows that different structure-activity relationships are associated with the targeting of the GABA(B) receptor versus nAChRs. Furthermore, there is probably a much more diverse range of conotoxins that target the GABA(B) receptor than currently realized.

Day N., et al. (2011) Structure and Activity of α-Conotoxin PeIA at Nicotinic Acetylcholine Receptor Subtypes and GABAB Receptor-coupled N-type Calcium Channels. JBC. PMID: 21252227

A novel α-conotoxin, PeIA, cloned from Conus Pergrandis, discriminates between rat α9α10 and α7 nicotinic cholinergic receptor
The alpha9 and alpha10 nicotinic cholinergic subunits assemble to form the receptor believed to mediate synaptic transmission between efferent olivocochlear fibers and hair cells of the cochlea, one of the few examples of postsynaptic function for a non-muscle nicotinic acetylcholine receptor (nAChR). However, it has been suggested that the expression profile of alpha9 and alpha10 overlaps with that of alpha7 in the cochlea and in sites such as dorsal root ganglion neurons, peripheral blood lymphocytes, developing thymocytes, and skin. We now report the cloning, total synthesis, and characterization of a novel toxin alpha-conotoxin PeIA that discriminates between alpha9alpha10 and alpha7 nAChRs. This is the first toxin to be identified from Conus pergrandis, a species found in deep waters of the Western Pacific. Alpha-conotoxin PeIA displayed a 260-fold higher selectivity for alpha-bungarotoxin-sensitive alpha9alpha10 nAChRs compared with alpha-bungarotoxin-sensitive alpha7 receptors. The IC50 of the toxin was 6.9 +/- 0.5 nM and 4.4 +/- 0.5 nM for recombinant alpha9alpha10 and wild-type hair cell nAChRs, respectively. Alpha-conotoxin PeIA bears high resemblance to alpha-conotoxins MII and GIC isolated from Conus magus and Conus geographus, respectively. However, neither alpha-conotoxin MII nor alpha-conotoxin GIC at concentrations of 10 microM blocked acetylcholine responses elicited in Xenopus oocytes injected with the alpha9 and alpha10 subunits. Among neuronal non-alpha-bungarotoxin-sensitive receptors, alpha-conotoxin PeIA was also active at alpha3beta2 receptors and chimeric alpha6/alpha3beta2beta3 receptors. Alpha-conotoxin PeIA represents a novel probe to differentiate responses mediated either through alpha9alpha10 or alpha7 nAChRs in those tissues where both receptors are expressed.

McIntosh M., et al. (2005) A novel α-conotoxin, PeIA, cloned from Conus Pergrandis, discriminates between rat α9α10 and α7 nicotinic cholinergic receptor. JBC. PMID: 15983035

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缓冲溶液为什么能够低抗外来酸碱对ph的改变
我的实验是考察药物不同PH值(水溶液,HCL和NaOH调PH值)下的稳定性情况等,PH从2-13。请问各位大侠:这种强酸性或强碱性水溶液样品可以直接进普通C18柱进行分析吗?
因为是考察不同PH对药物的影响,样品又不好改变其PH值,这种情况怎么办?希望有经验的高手指教。

我的流动相是甲醇-水(90:10)

谢谢赐教!

请进子版按格式发贴,自行修改,谢谢。
通HCl前,溶液是c(CH₃COOH)=c(CH₃COONa)=0.1mol/L的混合溶液,按照缓冲溶液pH的求法求.
pH(1)=pKa+lg[c(CH₃COONa)/c(CH₃COOH)]=pKa=4.74
通HCl后,溶液是c(CH₃COOH)=0.2mol/L、c(NaCl)=0.1mol/L的混合溶液,溶液pH按照弱酸溶液pH的求法求.
c(H⁺)=√[Ka*c(CH₃COOH)]=√(10^-4.74*0.2)=0.00191(mol/L)(采用了近似公式)
pH(2)=-lg{c(H⁺)}=2.72
两个pH求得,那么pH的变化量也就可得了.pH的变化量=|pH(2)-pH(1)|=|2.72-4.74|=2.02
1)PH缓冲溶液作用原理和pH值
  当往某些溶液中加入一定量的酸和碱时,有阻碍溶液pH变化的作用,称为缓冲作用,这样的溶液叫做缓冲溶液.弱酸及其盐的混合溶液(如HAc与NaAc),弱碱及其盐的混合溶液(如NH3·H2O与NH4Cl)等都是缓冲溶液.
  由弱酸HA及其盐NaA所组成的缓冲溶液对酸的缓冲作用,是由于溶液中存在足够量的碱A-的缘故.当向这种溶液中加入一定量的强酸时,H离子基本上被A-离子消耗:
  所以溶液的pH值几乎不变;当加入一定量强碱时,溶液中存在的弱酸HA消耗OH-离子而阻碍pH的变化.
  2)PH缓冲溶液的缓冲能力
  在缓冲溶液中加入少量强酸或强碱,其溶液pH值变化不大,但若加入酸,碱的量多时,缓冲溶液就失去了它的缓冲作用.这说明它的缓冲能力是有一定限度的.
  缓冲溶液的缓冲能力与组成缓冲溶液的组分浓度有关.0.1mol·L-1HAc和0.1mol·L-1NaAc组成的缓冲溶液,比0.01mol·L-1HAc和0.01mol·L-1NaAc的缓冲溶液缓冲能力大.关于这一点通过计算便可证实.但缓冲溶液组分的浓度不能太大,否则,不能忽视离子间的作用.
  组成缓冲溶液的两组分的比值不为1∶1时,缓冲作用减小,缓冲能力降低,当c(盐)/c(酸)为1∶1时△pH最小,缓冲能力大.不论对于酸或碱都有较大的缓冲作用.缓冲溶液的pH值可用下式计算:
  此时缓冲能力大.缓冲组分的比值离1∶1愈远,缓冲能力愈小,甚至不能起缓冲作用.对于任何缓冲体系,存在有效缓冲范围,这个范围大致在pKaφ(或pKbφ)两侧各一个pH单位之内.
  弱酸及其盐(弱酸及其共轭碱)体系pH=pKaφ±1
  弱碱及其盐(弱碱及其共轭酸)体系pOH=pKbφ±1
  例如HAc的pKaφ为4.76,所以用HAc和NaAc适宜于配制pH为3.76~5.76的缓冲溶液,在这个范围内有较大的缓冲作用.配制pH=4.76的缓冲溶液时缓冲能力最大,此时(c(HAc)/c(NaAc)=1.
  3)PH缓冲溶液的配制和应用
  为了配制一定pH的缓冲溶液,首先选定一个弱酸,它的pKaφ尽可能接近所需配制的缓冲溶液的pH值,然后计算酸与碱的浓度比,根据此浓度比便可配制所需缓冲溶液.
  以上主要以弱酸及其盐组成的缓冲溶液为例说明它的作用原理、pH计算和配制方法.对于弱碱及其盐组成的缓冲溶液可采用相同的方法.
  PH缓冲溶液在物质分离和成分分析等方面应用广泛,如鉴定Mg2离子时,可用下面的反应:
  白色磷酸铵镁沉淀溶于酸,故反应需在碱性溶液中进行,但碱性太强,可能生成白色Mg(OH)2沉淀,所以反应的pH值需控制在一定范围内,因此利用NH3·H2O和NH4Cl组成的缓冲溶液,保持溶液的pH值条件下,进行上述反应.
如何选择缓冲溶液?_123
sweetwater2021-07-21
做试验的时候用到很多种缓冲液,Tris,triethanolamine,HEPES,还有磷酸缓冲液,不知道这些缓冲液之间有没有大的区别,选择缓冲液的依据是什么?

如果只是为了缓冲酸碱度,是不是可以用一种缓冲液来代替所有其他的?这样做试验就方便多了。谢谢指教
如题:
两个CEX方法A和B测定同一单抗,结果碱性峰比例差不多,酸性峰比例相差约7%,相应主峰也差了7%左右。
具体来说,A方法酸性峰高,主峰低,碱性峰稍微低点;B方法酸性峰低,主峰高,碱性峰稍微高点;另外也做了CIEF,结果呢和A方法更接近。
仔细比较起来,AB两个方法的峰性和数量差不多,就不知道为什么会有这么大的差异。两个方法一个用的WCX柱-磷酸缓冲液,一个用SCX柱-MES缓冲液
大家帮我分析下:
1.两个方法哪个方法更准确,是以酸性峰高的为准还是什么?为什么?
2.这显著差异是由方法造成,具体原因是什么?柱子?
3.CIEF的结果和A方法更接近,是不是可以由此证明A方法更好或者CIEF的方法更好(因为CIEF更快更方便)?
欢迎讨论~
纠正下,A方法用的是Tosoh的柱子,B方法用的是SCX柱。TOSOH的柱子是7um的填料,10cm长。SCX是10um的填料。我本人TOSOH的阳离子柱子用的很少,这次信手用用,结果发现差异很大
那我现在就考虑,在以后方法开发过程中,除了通过流动相pH和组成、梯度、柱子选择来获得样品主峰和酸碱性的最大分离,还要关注各峰比例。因为之前比较方法好坏都只看分离度,尤其是主峰和邻近峰的分离度,获得最大分离度,自然可以做到主峰尽可能纯,但从未认真比较过各峰比例。这是一个大疏忽吧!
另外,CIEF和CEX方法原理还是有点差异的,所以分的是不同的异质体,原液放行两个方法肯定是都要做的。问题就是在早期细胞株筛选和工艺开发阶段,哪个方法才是又快又准。CIEF(iCE280)一般15分钟一个样,比CEX快多了。如果CIEF测得主峰要低于CEX结果,是不是真的完全可以取代CEX呢?CEX分离出的峰远比CIEF的多!
欢迎大家继续讨论~
相关疾病:高钾血症碱中毒代谢性酸中毒输入库存血,钾离子大量释放入血,会导致高钾血症,同时容易伴发代谢性碱中毒,查了相关资料解释说:大量输...
我按下面方法配制电泳缓冲液
Tris-base15.1g
甘氨酸94g
SDS5g
H2O1000ml
听人说就这样配制,PH值就会在8.3左右,都不要怎么调PH的,但不知我这样配制后PH值在6.4左右?迷惑,配制了几次还是这样。本人初次做sds-page,请前辈们指教。
另外Tris是以前师兄留下的,几年了已经,SDS也是以前的,但是没有开封,密封的很好。甘氨酸是新买进口封装的。会不会试剂过期的原因?
缓冲物质更重要。
由弱酸及其盐、弱碱及其盐组成的混合溶液,能在一定程度上抵消、减轻外加强酸或强碱对溶液酸碱度的影响,从而保持溶液的pH值相对稳定。这种溶液称为缓冲溶液。
求助:我目前需用离子交换法进行蛋白质的分离和纯化,但是我不知道要纯化的蛋白质的等电点,怎么样选择柱料及洗脱缓冲液呢?如果必须知道,有没有什么简便的方法测定蛋白质的等电点呢?谢谢
请问什么软件可以测蛋白质的酸碱性
纯化水药典2005版第二部

拼音名:Chunhuashui
英文名:PurifiedWater
【性状】本品为无色的澄清液体;无臭,无味。
【检查】酸碱度取本品10ml,加甲基红指示液2滴,不得显红色;另取10ml,加溴麝香草酚蓝指示液5滴,不得显蓝色。氯化物、流酸盐与钙盐取本品,分置三支试管中,每管各50ml。第一管中加硝酸5滴与硝酸银试液1ml,第二管中加氯化钡试液2ml,第三管中加草酸铵试液2ml,均不得发生浑浊。
硝酸盐取本品5ml置试管中,于冰浴中冷却,加10%氯化钾溶液0.4ml与0.1%二苯胺硫酸溶液0.1ml,摇匀,缓缓滴加硫酸5ml,摇匀,将试管子50℃水浴中放置15分钟,溶液产生的蓝色与标准硝酸盐溶液[取硝酸钾0.163g,加水溶解并稀释至100ml,摇匀,精密量取1ml,加水稀释成100ml,再精密量取10ml,加水稀释成100ml,摇匀,即得(每1ml相当于1pgNO3)0.3ml,加无硝酸盐的水4.7ml,用同一方法处理后的颜色比较,不得更深(0.000006%)。
亚硝酸盐取本品10ml,置纳氏管中,加对氨基苯磺酰胺的稀盐酸溶液(1→100)lml与盐酸菜乙H肢溶液(0.l+100)1ml,产生的粉红色,与标准亚硝酸盐溶液〔取亚硝酸钠0.750g(按干燥品计算),加水溶解,稀释至100ml,摇匀,精密量取1ml,加水稀释成100ml,摇匀,再精密量取1ml,加水稀释成50ml,摇匀,即得(每1ml相当于1μgNO2)]0.2ml,加无亚硝酸盐的水9.8ml,用同一方法处理后的颜色比较,不得更深(0.000002%)。
氨取本品50ml,加碱性碘化汞钾试液2ml,放置15分钟;如显色,与氯化铵溶液(取氯化铵31.5mg,加无氨水适量使溶解并稀释成1000ml)1.5ml,加元氨水48ml与碱性碘化汞钾试液2ml制成的对照液比较,不得更深(0.00003%)。
二氧化碳取本品25ml,置50ml具塞量筒中,加氢氧化钙试液25ml,密塞振摇,放置,小时内不得发生浑浊。
易氧化物取本品100ml,加稀硫酸10ml,煮沸后,加高锰酸钾滴定液(0.02mol/L)0.10ml,再煮沸10分钟,粉红色不得完全消失。
不挥发物取本品100ml,置105℃恒重的蒸发皿中,在水浴上蒸干,并在105℃干燥至恒重,遗留残渣不得过1mg。
重金属取本品50ml,加水18.5ml,蒸发至20ml,放冷,加醋酸盐缓冲液(pH3.5)2ml与水适量使成25ml,加硫代乙酰胺试液2ml,摇匀,放置2分钟,与标准铅溶液1.5ml加水18.5ml用同一方法处理后的颜色比较,不得更深(0.00003%)。
微生物限度取本品,采用薄膜过滤法处理后,依法检查(附录ⅪJ),细菌、霉菌和酵母菌总数每1ml不得过100个。
【贮藏】密闭保存。
【化学成分】本品为蒸馏法、离子交换法、反渗透法或其他适宜的方法制得的供药用的水,不含任何附加剂。
【分子式与分子量】H2O18.02
【药理作用】溶剂、稀释剂

这里药典纯化水标准中并无PH值项目,请问对纯化水有PH值的要求吗,范围应在多少?请说明出处?
在纯化水检测中,检验酸碱度合格,但是发现PH在8左右。如果按以上标准检验合格,是否要考虑PH值?请知道的解答,谢谢!
EDTA对金属离子的络合能力随酸度改变而不同,酸度越低,络合能力增强;酸度越高,络合能力越弱。可见控制溶液的pH在络合滴..