- SpeciesReactivityHuman
- SpecificityDetectshumanCXCL9/MIGinELISAsandWesternblots. InELISAs,doesnotcross-reactwithrecombinantmouse(rm) CXCL9,recombinanthumanCXCL10.
- SourceMonoclonalMouseIgG1Clone#49106
- PurificationProteinAorGpurifiedfromhybridomaculturesupernatant
- ImmunogenE.coli-derivedrecombinanthumanCXCL9/MIG
Thr23-Thr125
Accession#Q07325 - FormulationSuppliedinasalinesolutioncontainingBSAandSodiumAzide.
- LabelFluorescein
- IntracellularStainingbyFlowCytometry10µL/106cellsSeebelow
- ShippingTheproductisshippedwithpolarpacks.Uponreceipt,storeitimmediatelyatthetemperaturerecommendedbelow.
- StABIlity&StorageProtectfromlight.Donotfreeze.
- 12monthsfromdateofreceipt,2to8°Cassupplied.
- Loetscher,M.etal.(1996)J.Exp.Med.184:963.
- Liao,F.etal.(1995)J.Exp.Med.182:1301.
- Vanguri,P.(1995)J.Neuroimmunol.56:35.
- EntrezGeneIDs:4283(Human);17329(Mouse);246759(Rat)
- AlternateNames:chemokine(C-X-Cmotif)ligand9;CMK;crg-10;C-X-Cmotifchemokine9;CXCL9;Gamma-interferon-inducedmonokine;Humig;MIG;MIGSmall-inducIBLecytokineB9;monokineinducedbygammainterferon;SCYB9Monokineinducedbyinterferon-gamma
Background:
CXCL9,amemberofthealpha subfamilyofchemokinesthatlacktheELRdomain,wasinitiallyidentifiedasalymphokine-activatedgeneinmousemacrophages.HumanCXCL9wassubsequentlyclonedusingmouseMIGCDNAasaprobe.TheCXCL9geneisinducedinmacrophagesandinprimaryglialcellsofthecentralnervoussystemspecificallyinresponsetoIFN-gamma. CXCL9 hasbeenshowntobeachemoattractantforactivatedT-lymphocytesandTILbutnotforneutrophilsormonocytes.ThehumanCXCL9cDNAencodesa125 aminoacid(aa)residueprecursorproteinwitha22aaresiduesignalpeptidethatiscleavedtoyielda103aaresiduematureprotein.CXCL9hasanextendedcarboxy-terminuscontaininggreaterthan50%basicaaresiduesandislargerthanmostotherchemokines.Thecarboxy-terminalresiduesofCXCL9arepronetoproteolyticcleavageresultinginsizeheterogeneityofnaturalandrecombinantCXCL9.CXCL9withlargecarboxy-terminaldeletionshavebeenshowntohavediminishedactivityinthecalciumfluxassay.Achemokinereceptor(CXCR3)specificforCXCL9andIP-10has beenclonedandshowntobehighlyexpressedinIL-2-activatedT-lymphocytes.TheE.coli-expressedCXCL9preparationsproducedatR&DSystemshavebeenshowntocontaingreaterthan80%fulllengthCXCL9.
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1. Buffer中离子浓度过大,甘氨酸或者Tris碱有可能疏忽多加了
2.没有加相应浓度的SDS
3.电泳周围温度高,也是一个原因
此外,我们常常用“电泳法”判断液体的性质,是胶体还是溶液。在高中化学中我们就用过这种方法判断给定的液体是否为胶体。MOPS电泳缓冲液、胚胎干细胞培养生长因子、动物肝细胞分离培养试剂盒、结晶紫细胞群落染色试剂盒、MFN-2蛋白表达检测试剂盒、血红细胞溶解液、磷酸缓冲盐溶液、Hanks平衡盐粉剂、胰蛋白酶溶液、
② 应取pH8.0,这样可使核苷酸带较多负电荷,利于吸附于阴离子交换树脂柱。虽然pH 11.4时核苷酸带有更多的负电荷,但pH过高对分离不利。
③ 当不考虑树脂的非极性吸附时,根据核苷酸负电荷的多少来决定洗脱速度,则洗脱顺序为CMP>AMP> GMP > UMP,但实际上核苷酸和聚苯乙烯阴离子交换树脂之间存在着非极性吸附,嘌呤碱基的非极性吸附是嘧啶碱基的3倍。静电吸附与非极性吸附共同作用的结果使洗脱顺序为:CMP> AMP > UMP >GMP。
低离子强度时,迁移率快。但离子强度过低,缓冲液的缓冲容量小,不易维持pH恒定。高离子强度时迁移率慢,因此为了获得更快的反应速度,在缓冲容量允许的范围内,离子强度应该尽可能小。
加样缓冲液的主要作用是使PCR产物与其混合,使DNA沉于加样孔的底部,防止DNA跑出来.
TAE是使用最广泛的缓冲系统。其特点是超螺旋在其中电泳时更符合实际相对分子质量(TBE中电泳时测出的相对分子质量会大于实际分子质量),且双链线状DNA在其中的迁移率较其他两种缓冲液快约10%,电泳大于13kb的片段时用TAE缓冲液将取得更好的分离效果,此外,回收DNA片段时也易用TAE缓冲系统进行电泳。TAE的缺点是缓冲容量小,长时间电泳(如过夜)不可选用,除非有循环装置使两极的缓冲液得到交换。 50×TAE Buffer 配制方法: 1. 称量Tris 242g,Na2EDTA.2H2O 37.2g 于1L烧杯中; 2.向烧杯中加入约800ml去离子水,充分搅拌均匀; 3加入57.1ml的冰乙酸,充分溶解; 4.加去离子水定容至1L后,室温保存。向左转|向右转

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