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Cell Technology/ApoLogix SR-FMK/25/SR100
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- Description
- Additional Information
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- Assay Principle
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Key Benefits
- Non-cytotoxic assay arrests further apoptotic activity via caspase inhibition.
- Cell permeablity permits direct visualization of cytosolic apoptotic events.
- Apoptotic cell population does not diminish over time.
- Add reagent directly to cells. No special buffer or media needed. No preparation of cell lysates required. Simple wash procedure.
- Works in diverse cell lines: human, rodent, Drosophila.
- Can be performed in conjunction with Annexin staining, TUNEL, antibody staining, or with other APO LOGIX reagents on the same population of cells.
- Permits high through-put screening. Protocol can be adapted for ex vivo as well as in situ experiments.
- Applications – Works with fluorescence microscope, 96-well fluorescence plate readers
- Yields both quantitative and qualitative results. Gives strong signal with little background noise.
Additional information
| Kit Size | 25, 100 |
|---|
APO LOGIX SR kits contain a generic sulforhodamine labeled caspase inhibitor (sulforhodamine-peptide-fluoromethyl ketone). This reagent is cell permeable and is used on whole cells to detect apoptosis. Apoptotic cells are detected by a fluorescence plate reader or fluorescence microscope using an excitation source at 550nm and measuring emission at 595nm. The assay takes about 1 hr to completeAPO LOGIX Sulforhodamine
Jurkat cells stimulated with staurosporine for 2 hours and then labeled with SR-VAD-FMK.
Left side: 30X phase contrast
Right side: 30X fluorescence microscope. Excitation: 550nm emission > 580nm.APO LOGIX Sulforhodamine
Jurkat cells stimulated with staurosporine for 2 hours. Cells were then stained with SR-VAD-FMK for 1 hour and read in a 96 well fluorescence plate reader.
| Document Title |
| SR protocol |
| SRVADFMK Datasheet |
| msds.Apologix |
| Reference |
| Slee, E. A., C. Adrain, and S. J. Martin. 1999. Serial Killers: ordering caspase activation events in apoptosis. Cell Death and Differ. 6:1067-1074. |
| Walker, N. P., R. V. Talanian, K. D. Brady, L. C. Dang, N. J. Bump, C. R. Ferenz, S. Franklin, T. Ghayur, M. C. Hackett and L. D. Hammill. 1994. Crystal Structure of the Cysteine Protease Interleukin-1ß-Converting Enzyme: A (p20/p10)2 Homodimer. Cell 78:343-352. |
| Wilson, K. P., J. F. Black, J. A. Thomson, E. E. Kim, J. P. Griffith, M. A. Navia, M. A. Murcko, S. P. Chambers, R. A. Aldape, S. A. Raybuck, and D. J. Livingston. 1994. Structure and mechanism of interleukin-1 beta converting enzyme. Nature 370: 270-275. |
| Rotonda, J., D. W. Nicholson, K. M. Fazil, M. Gallant, Y. Gareau, M. Labelle, E. P. Peterson, D. M. Rasper, R. Ruel, J. P. Vaillancourt, N. A. Thornberry and J. W. Becker. 1996. The three-dimensional structure of apopain/CPP32, a key mediator of apoptosis. Nature Struct. Biol. 3(7): 619-625. |
| Kumar, S. 1999. Mechanisms mediating caspase activation in cell death. Cell Death and Differ. 6: 1060-1066. |
| Thornberry, N. A., T. A. Rano, E. P. Peterson, D. M. Rasper, T. Timkey, M. Garcia-Calvo, V. M. Houtszager, P. A. Nordstrom, S. Roy, J. P. Vaillancourt, K. T. Chapman and D. W. Nicholson. 1997. A combinatorial approach defines specificities of members of the caspase SRily and granzyme B. Functional relationships established for key mediators of apoptosis. J. Biol. Chem. 272(29): 17907-17911. |
| Amstad, P.A., G.L. Johnson, B.W. Lee and S. Dhawan. 2000. An in situ marker for the detection of activated caspases. Biotechnology Laboratory 18: 52-56. |
| Bedner, E., P. Smolewski, P.A. Amstad and Z. Darzynkiewicz. 2000. Activation of caspases measured in situ by binding or fluorochrome-labeled inhibitors of caspases (FLICA): correlation with DNA fragmentation. Exp. Cell Research 259: 308-313. |
| Smolewski, P., E. Bedner, L. Du, T.-C. Hsieh, J. Wu, J. D. Phelps and Z. Darzynkiewicz. 2001. Detection of caspase activation by fluorochrome-labeled inhibitors: multiparameter analysis by laser scanning cytometry. Cytometry 44: 73-82. |
| Ekert, P. G., J. Silke and D. L. Vaux. 1999. Caspase inhibitors. Cell Death and Differ. 6:1081-1086. |
| Carcia-Calvo, M., E. Peterson, B. Leiting, R. Ruel, D. Nicholson and N. Thornberry. 1998. Inhibition of human caspases by peptide-based and macromolecular inhibitors. J. Biol. Chem. 273: 32608-32613. |
| Hirata, H., A. Takahashi, S. Kobayashi, S. Yonehara, H. Sawai, T. Okazaki, K. Yamamoto and M. Sasada. 1998. Caspases are activated in a branched protease cascade and control distinct downstream processes in Fas-induced apoptosis. J. Exp. Med. 187: 587-600 |
| Part# | Reagent | Temperature |
| Part # 679 | Lyophilized SR-VAD-FMK | 2-8C |
| Part # 635 | 10X Wash Buffer | 2-8C |
| Part # 636 | 10X Fixitive | 2-8C |
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公司简介
蚂蚁淘（www.ebiomall.cn）是中国大陆目前唯一的生物医疗科研用品B2B跨境交易平台，
该平台由多位经验丰富的生物人和IT人负责运营。蚂蚁淘B2B模式是指客户有采购意向后在蚂蚁
淘搜索全球供应信息，找到合适的产品后在蚂蚁淘下单，然后蚂蚁淘的海外买手进行跨境采购、
运输到中国口岸，最后由蚂蚁淘国内团队报关运输给客户...
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2021-09-12
规格（核心参数）：PH1.001L/瓶
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2016-04-18
货号：CT0015 查看更多
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2021-07-18
天根 增强型HRP-DAB底物显色试剂盒
规格（核心参数）：A:3ml；B:3ml；缓冲液：60ml 查看更多
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2021-08-10
规格：500ml 查看更多
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2016-02-21
广州威佳科技有限公司在发布的TAE（DNA电泳缓冲液）（50×）供应信息，浏览与TAE（DNA电泳缓冲液）（50×）相关的产品或在搜索更多与TAE（DNA电泳缓冲液）（50×）相关的内容。 查看更多
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2016-02-02
DIG清洗及阻断缓冲液组合是由北京鸿跃科技有限公司代理或销售的Roche品牌的试剂，产品来源于Roche。北京鸿跃科技有限公司是中国最权威的DIG清洗及阻断缓冲液组合试剂销售服务商之一，在北京等地方销售DIG清洗及阻断缓冲液组合试剂已经多年。生物在线为您提供众多企业DIG清洗及阻断缓冲液组合仪器产品及图片，以便挑选到性价比高，合适的DIG清洗及阻断缓冲液组合产品 查看更多
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2021-07-20
技术参数
6×Quadricolor-loading
Buffer 1 ml×5支
EDTA 30 mM
Glycerol 40%
Xylene Cyanol FF 0.05%
Cresol red 0.10%
Bromophenol Blue 0.05%
Orange G 0.10% 查看更多
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2021-08-03
Datasheet-ReadyBlot-中文.pdf 查看更多
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2021-09-20
规格（核心参数）：PH10.00袋装30x30mL
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2016-06-04
上海研生实业有限公司所提供的缓冲液STA-IBS（FIB专用）质量可靠、规格齐全,上海研生实业有限公司不仅具有精湛的技术水平,更有良好的售后服务和优质的解决方案,欢迎您来电咨询此产品具体参数及价格等详细信息！ 查看更多
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2021-07-21
改良磷酸盐缓冲液（Modified Phosphate Buffer）用 途：用于小肠结肠炎耶尔森氏菌的增菌培养。（GB4789.8-2008）原 理：山梨醇提供碳氮源，磷酸氢二钠和磷酸二氢钠为缓冲液，胆盐抑制革兰氏阳性菌，氯化钠提供细胞所需要的渗透压。配方(L)：磷酸氢二钠 8.23g... 查看更多
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2021-07-28
T4 DNA Ligase(T4 DNA 连接酶) 催化粘性末端或平末端两条DNA 链的相邻核苷酸的5`- 磷酸基和3`-OH 的连接。该酶也可催化RNA 与双链DNA 或RNA 的连接，但不能使单链核酸相连。
特点：
提供高浓度产品：Cat.# M1794 包含500 单位10–20u/μl 的T4DNA Ligase。
灵活：可用于5`、3` 或平末端DNA 插入片段。
提供10× 反应缓冲液：300mM Tris-HCl (pH 7.8,25℃ )，100mM MgCl2，100mM DTT 查看更多
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商品咨询
【为什么缓冲溶液具有缓冲能力?】123
2018-02-15
缓冲溶液具有缓冲作用的原因：
因为常用的缓冲溶液由弱酸及其共轭酸盐组合而成，当加入酸时，弱酸盐部分转化为弱酸；当加入碱时，弱酸部分转化为弱酸盐。而弱酸在水中不完全电离，弱酸盐在水中可以水解，所以ph变化较小，保持了溶液的PH基本不变。
Sika Paint Industrie进口数据及联系方式123
2021-07-30
我现在遇到一个题目，如题，硼砂是可也用来配置 缓冲溶液，问题是 ，他要我说原因，很纠结~求解啊！！！
缓冲溶液有哪些性质123
2018-02-06
缓冲液的pH值与该酸的电离平衡常数K及盐和酸的浓度有关.酸和盐浓度相等时,溶液的pH值与PK值相同.酸和盐浓度等比例增减时,溶液的pH值不变.酸和盐浓度相等时,缓冲液的缓冲效率为最高.
缓冲溶液的选择和应用123
3717136502021-07-26
配制缓冲溶液一般包括哪些步骤_123
南农小宇宙2018-01-22
您好！磷酸缓冲液可以用Na2HPO4-NaH2PO4体系，也可以用K2HPO4-KH2PO4体系，或者Na-K体系。缓冲液的配置一般先配置母液，如0.2M Na2HPO4及NaH2PO4母液，然后根据比例进行混合稀释。
百度教育团队【海纳百川团】为您解答。
感谢您的采纳 O(∩_∩)O 。如有疑问，欢迎追问。
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感谢您的采纳 O(∩_∩)O 。如有疑问，欢迎追问。
配制缓冲溶液一般包括哪些步骤_123
2018-03-15
配制缓冲溶液常用方法有：
1、根据所需求的酸碱性选择合适的缓冲对，若是配制酸性缓冲液就选择弱酸与弱酸盐缓冲对；若是配制碱性缓冲液就选择弱碱与弱碱盐缓冲对。
2、根据所需要控制的PH范围以及弱酸和弱碱的解离常数（pKa/pKb）选择具体的共轭酸碱对，公式为PH＝pKa±1＝（14-pKb）±1。
3、根据公式计算缓冲溶液的组分比，酸性缓冲液PH＝pKa－lgc酸/c盐，碱性缓冲液PH＝14-pKb+lgc碱/c盐。
4、根据共轭酸碱对以及其组分比配制缓冲液，方法同普通溶液。
举例：试配制一种缓冲液，体积为1L，PH能维持在10.25左右。
a、依题意选择弱碱与弱碱盐的共轭对；
b、由PH＝（14-pKb）±1，算出pKb在3.75与4.75之间，查弱碱的解离常数表可知氨水（pKb=4.75）符合要求，故可选择NH3-NH4Cl体系；
c、由PH＝14-pKb+lgc碱/c盐，算出c(氨水)/c(氯化铵)＝10；
d、设氨水的浓度为10mol/L，则氯化铵的浓度为1mol/L，所以在浓度为10mol/L体积为1L的氨水中加入1mol的氯化铵即可。
1、根据所需求的酸碱性选择合适的缓冲对，若是配制酸性缓冲液就选择弱酸与弱酸盐缓冲对；若是配制碱性缓冲液就选择弱碱与弱碱盐缓冲对。
2、根据所需要控制的PH范围以及弱酸和弱碱的解离常数（pKa/pKb）选择具体的共轭酸碱对，公式为PH＝pKa±1＝（14-pKb）±1。
3、根据公式计算缓冲溶液的组分比，酸性缓冲液PH＝pKa－lgc酸/c盐，碱性缓冲液PH＝14-pKb+lgc碱/c盐。
4、根据共轭酸碱对以及其组分比配制缓冲液，方法同普通溶液。
举例：试配制一种缓冲液，体积为1L，PH能维持在10.25左右。
a、依题意选择弱碱与弱碱盐的共轭对；
b、由PH＝（14-pKb）±1，算出pKb在3.75与4.75之间，查弱碱的解离常数表可知氨水（pKb=4.75）符合要求，故可选择NH3-NH4Cl体系；
c、由PH＝14-pKb+lgc碱/c盐，算出c(氨水)/c(氯化铵)＝10；
d、设氨水的浓度为10mol/L，则氯化铵的浓度为1mol/L，所以在浓度为10mol/L体积为1L的氨水中加入1mol的氯化铵即可。
酶反应缓冲液怎么配 123
jyyaohappy2021-07-20
这上面的浓度都是终浓度。如果你配的量比较小，比如只有10ml，如果直接计算称量的话，可能误差很大。你可以将每一种单独配成浓缩液，如1MTris-HCl，再加入十分之一（配10ml加入1ml）。DTT也可以配成1M的，加入两百分之一体积，最后用水补足体积。混匀就是。其他的几个也可以这样配。而且这种缓冲液也有一个PH值。你可以用1M Tris-HCl来控制。其他的PH值不用管。
包被缓冲液有几样123
韩春阳5042021-07-28
我只知道Elisa中用的包被液一般都是PH9.6碳酸盐缓冲液
缓冲溶液是指在一定范围内，能够使溶液ph不变或变化不大的溶液。
根据组成不同，可分为两种，弱酸及其对应的强碱弱酸盐，弱碱及其对应的强酸弱碱盐。
因为HF可以和NaOH反应生成NaF和水，当NaOH反应完之后，NaF就可以与HF组成缓冲溶液，所以说可以直接使用NaOH和HF来配制缓冲溶液。
这也是一般配制缓冲溶液的方法，也就是用强碱和弱酸（或者强酸和弱碱）来配制缓冲溶液。
根据组成不同，可分为两种，弱酸及其对应的强碱弱酸盐，弱碱及其对应的强酸弱碱盐。
因为HF可以和NaOH反应生成NaF和水，当NaOH反应完之后，NaF就可以与HF组成缓冲溶液，所以说可以直接使用NaOH和HF来配制缓冲溶液。
这也是一般配制缓冲溶液的方法，也就是用强碱和弱酸（或者强酸和弱碱）来配制缓冲溶液。
缓冲溶液到底是什么性质的溶液123
2021-07-24
不会
mops缓冲溶液7_完美作业网_www.wanmeila.com123
24212邑绦2018-02-15
0.05mol/L PBS(磷酸缓冲液Phosphate Buffer Solution,PBS)的配制：
甲液：0.05mol/L Na2HPO4溶液 ：称取磷酸氢二钠9.465g 7.099g,加蒸 馏水至1000ml ;
乙液：0.05mol/L KH2P04溶液: 称取磷酸二氢钾, 9.07g 6.803g,加蒸馏水至1000m1.
将甲乙液分装在棕色瓶内,于4℃冰箱中保存,用时甲、乙两液各按不同比例混合,即可得所需pH的缓冲液,见下表:
pH 甲液ml 乙液mI
5.29 2.5 97.5
5.59 5.0 95.0
5.91 10.0 90.0
6.24 20.0 80.0
6.47 30.0 70.0
6.64 40.0 60.0
6.81 50.0 50.0
6.98 60.0 40.0
7.17 70.0 30.0
7.38 80.0 20.0
7.73 90.0 10.0
8.04 95.0 5.0
你要配制pH=6.8的PBS,可用甲、乙液各50ml混合即可.
甲液：0.05mol/L Na2HPO4溶液 ：称取磷酸氢二钠9.465g 7.099g,加蒸 馏水至1000ml ;
乙液：0.05mol/L KH2P04溶液: 称取磷酸二氢钾, 9.07g 6.803g,加蒸馏水至1000m1.
将甲乙液分装在棕色瓶内,于4℃冰箱中保存,用时甲、乙两液各按不同比例混合,即可得所需pH的缓冲液,见下表:
pH 甲液ml 乙液mI
5.29 2.5 97.5
5.59 5.0 95.0
5.91 10.0 90.0
6.24 20.0 80.0
6.47 30.0 70.0
6.64 40.0 60.0
6.81 50.0 50.0
6.98 60.0 40.0
7.17 70.0 30.0
7.38 80.0 20.0
7.73 90.0 10.0
8.04 95.0 5.0
你要配制pH=6.8的PBS,可用甲、乙液各50ml混合即可.
【求助】紧急求助上样缓冲液的问题 PCR技术讨论版论坛123
2021-07-27
当往某些溶液中加入一定量的酸和碱时，有阻碍溶液pH变化的作用，称为缓冲作用，这样的溶液叫做缓冲溶液。
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