The ImmunoStar Neurotensin antiserum was quality control tested using standard immunohistochemical methods. The antiserum demonstrates strongly positive labeling of rat amygdala using indirect immunofluorescent and biotin/avidin-HRP techniques. Recommended primary dilution is 1/4000-1/8000 in PBS/0.3% Triton x-100 - Bn/Av-HRP Technique. Staining is completely eliminated by pretreatment with 10 µg of Neurotensin per 1 mL of diluted antibody.
Photo Description: IHC image of rat amygdala staining for neurotensin. The tissue was fixed with 4% formaldehyde in 0.1 M phosphate buffer, before being removed and prepared for vibratome sectioning. Floating sections were incubated at RT in 10% goat serum in PBS, before standard IHC procedure. Primary antibody was incubated at 1:5000 for 48 hours, goat anti-rabbit secondary was subsequently added for 1 hour after washing with PBS. Light microscopy staining was achieved with standard biotin-streptavidin/HRP procedure and DAB chromogen.
Host:Rabbit
Quantity / Volume: 100 µL
State: Lyophilized Whole Serum
Reacts With: Cat, Dog, Frog, Human, Monkey, Mouse, Pigeon, Rat, Turtle
Availability: In Stock
Alternate Names: neuromedin N; Preproneurotensin; pro-neurotensin, anti-neurotensin
Gene Symbol: NTSRRID: AB_572254
Database Links:
Entrez Gene:101095835Cat Entrez Gene:611687Dog Entrez Gene:100485937Frog Entrez Gene: 4922Human Entrez Gene: 700189Monkey Entrez Gene:67405 Mouse Entrez Gene:102087679Pigeon Entrez Gene:299757Rat Entrez Gene:102446489Turtle
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虽然没有具体用过检测这个抗原的抗体，但是如果希望抗体特异性好点，能检测丰度低的蛋白，还是选Abcam吧，Santa有时候全凭人品了，内参抗体什么的还能凑活，其他的比较勉强。
我觉得封闭这一步时间长短多少并不能减少背景…背景过深多半还是抗体浓度过大…不管一抗还是二抗过大都会使背景加深…一抗的浓度不一定是条带清晰就是最佳了…联系进一步优化一下
这个主要还是抗体的问题，WB最主要的还是要选择一个特异性较好的抗体，抗体是整个实验的重中之重
各位大神，有谁做WB，选用球虫的GADPH作为内参？知道哪个公司有针对球虫内参的抗体？
所以免疫组化在组织定位和定性上比较准确，但是在定量上不够准确。
western blot也是利用抗体和抗原之间的结合具有高度的特异性。经过聚丙烯酰胺凝胶电泳分离的蛋白质样品，转移到固相载体上，固相载体以非共价键形式吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原，与对应的抗体起免疫反应，再与酶或同位素标记的第二抗体起反应。
western blot因为有内参标定，所以在定量上要更加准确。但是在组织定位上不如免疫组化
一.样本种属来源：
首先要考虑的就是实验样本来源于什么物种。
1、哺乳动物的组织或者细胞样本，通常选择β-actin、β-tubulin、GAPDH、Lamin B、Histone H3、Na,K atpase等。
2、植物来源实验样本，则可以选择plantactin、Rubisco等。
3、其他来源样本研究较少，所以就应该参照文献报导，选择合适的蛋白作为内参。
二.目的蛋白分子量：
选择内参抗体时，应该考虑目的蛋白分子量的大小。通常应该保证目的蛋白与内参蛋白分子量相差5KD以上。比如目的蛋白分子量为45KD，此时不适宜选择β-actin作为内参，可以考虑选择GAPDH或者β-tubulin作为内参。
三.目的蛋白表达部位：
就一般的蛋白检测来说，β-actin、β-Tubulin抗体等就可以了，而针对于核蛋白的定量，特别是样本蛋白就是核蛋白时，选择恰当的核蛋白内参则更能体现内部参照的价值。常用的核内参抗体有Lamin A、Lamin B、Histone H3，除此之外，其它常见的核蛋白内参还有PCNA、K70、K80等，在一些文献报道中，Erk2、TATA binding protein(TBP)以及c-Jun、c-Fos等都有使用。而对于膜蛋白检测，常用的内参抗体为Na,K ATPase。对于线粒体蛋白的检测，常用VDAC1和COX IV作为内参抗体。
以上几条原则只是针对通常情况，但是需要注意的问题是——内参的选择需要考虑实际的试验环境，比如某些细胞中，由于组织缺氧、糖尿病等因素会导致GAPDH的表达增高，不适合做内参。比如在涉及细胞增殖相关试验中，c-Jun由于自身表达变化就不适合做内参;而在凋亡实验时，TBP、Lamin等也不适合作为内参。因此设计实验方案的时候应该考虑这些因素并查询相应文献，在实验过程中也应该注意如果内参表达出现异常，应考虑这方面因素。
