
ProductName | ThermusaquaticusMutSDNAmismatchrepairprotein,N-6XHis-MBP-Taq-Muts |
Size | 500µg |
Description | TheTaqMutSDNAmismatchproteinrecognizesheteroduplexDNAscontainingmispairedorunpairedbases.ThisMutsproteinbindsinvitrotoheteroduplexDNAscontainingmispairedorunpairedbasesoverawidetemperaturerangefrom4to70 °CandhasaThermostableATPaseactivity.ThisthermostableTaqMutSisactiveattemperaturebetween0to75°C.SinceTaqMutSefficientlybindsto1-4basesdeletion(orinsertion)andmismatchbasepairsofGT,CTandAG,itisusefulfordetectingthesemutations.MutationscanbedetectedinpolyacrylamidegelsoronasolidphasesuchasNiagaroseoramylosebeads,ormagneticNi-NTAparticles. |
Applications |
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Source | E.coli |
FusionTag | 6XHistagandMBPtagatN-terminus |
PurificationMethod | FPLC |
Concentration | 1mg/ml |
Purity | ~95%asdeterminedbySDS-PAGE |
Accession# | AAC43637,TAU3311,U33117 |
GeneName | ThermusaquaticusMutSDNAmismatchrepairprotein |
MW | 135.9kDa |
ProteinSequence | 1MGSSHHHHHHGTKTEEGKLVIWINGDKGYNGLAEVGKKFEKDTGIKVTVEHPDKLEEKFP 61QVAATGDGPDIIFWAHDRFGGYAQSGLLAEITPDKAFQDKLYPFTWDAVRYNGKLIAYPI 121AVEALSLIYNKDLLPNPPKTWEEIPALDKELKAKGKSALMFNLQEPYFTWPLIAADGGYA 181FKYENGKYDIKDVGVDNAGAKAGLTFLVDLIKNKHMNADTDYSIAEAAFNKGETAMTING 241PWAWSNIDTSKVNYGVTVLPTFKGQPSKPFVGVLSAGINAASPNKELAKEFLENYLLTDE 301GLEAVNKDKPLGAVALKSYEEELAKDPRIAATMENAQKGEIMPNIPQMSAFWYAVRTAVI 361NAASGRQTVDEALKDAQTGTDYDIPTTENLYFQGHMEGMLKGEGPGPLPPLLQQYVELRD 421QYPDYLLLFQVGDFYECFGEDAERLARALGLVLTHKTSKDFTTPMAGIPLRAFEAYAERL 481LKMGFRLAVADQVEPAEEAEGLVRREVTQLLTPGTLLQESLLPREANYLAAIATGDGWGL 541AFLDVSTGEFKGTVLKSKSALYDELFRHRPAEVLLAPELLENGAFLDEFRKRFPVMLSEA 601PFEPEGEGPLALRRARGALLAYAQRTQGGALSLQPFRFYDPGAFMRLPEATLRALEVFEP 661LRGQDTLFSVLDETRTAPGRRLLQSWLRHPLLDRGPLEARLDRVEGFVREGALREGVRRL 721LYRLADLERLATRLELGRASPKDLGALRRSLQILPELRALLGEEVGLPDLSPLKEELEAA 781LVEDPPLKVSEGGLIREGYDPDLDALRAAHREGVAYFLELEERERERTGIPTLKVGYNAV 841FGYYLEVTRPYYERVPKEYRPVQTLKDRQRYTLPEMKEKEREVYRLEALIRRREEEVFLE 901VRERAKRQAEALREAARILAELDVYAALAEVAVRYGYVRPRFGDRLQIRAGRHPVVERRT 961EFVPNDLEMAHELVLITGPNMAGKSTFLRQTALIALLAQVGSFVPAEEAHLPLFDGIYTR 1021IGASDDLAGGKSTFMVEMEEVALILKEATENSLVLLDEVGRGTSSLDGVAIATAVAEALH 1081ERRAYTLFATHYFELTALGLPRLKNLHVAAREEAGGLVFYHQVLPGPASKSYGVEVAAMA 1141GLPKEVVARARALLQAMAARREGALDAVLERLLALDPDRLTPLEALRLLQELKALALGAP 1201LDTMKG |
StorageBuffer | 20mMTris-HCl,pH8.0,250mMNaCl,0.1mMEDTA,1mMDTT,50%Glycerol |
ReactionBuffer | 100mMKCl,50mMTris-HCl,pH8.5,5~20mMMgCl2,0.1mMEDTA,1mMDTT,2%Glycerol,65°C |
Storage | -20to-80°C. |
Shipping | 4°Cordryice |
Protocol (example) | 1.AfterfirstroundPCR,purifyPCRfragmentsusingQiagenQIAquickPCRpurificationkitwithelutionindH2O. 2.DilutePCRproductto250ng/µlin10mMTris–HCl,pH7.8,50mMNaClandheatto95oCfor5minfollowedbycoolingat0.1oC/sto25oC. 3.Addbindingbuffer(20mMTris–HCl,pH7.8,10mMNaCl,5mMMgCl2,1mMDTTand5%glycerol)toannealedPCRproduct,adjustDNAconcentrationto11.5ng/µl,add6XHis-MBP–MutSdimersto950nM. 4.Incubatethemixtureatroomtemperaturefor10min,thenaddanequalvolumeofamyloseresin(NEB)preequilibratedwith1Xbindingbuffer,andincubatefor30minatroomtemperature. 5.Gentlyspindownbeadsandsavesupernatantforsubsequentprocessing(secondroundPCR,cloningetc). |
References | 1.Protein-mediatederrorcorrectionfordenovoDNAsynthesis.NucleicAcidsRes.2004Nov23;32(20):e162. 2.CorrectingerrorsinsyntheticDNAthroughconsensusshuffling.NucleicAcidsRes.2005Mar30;33(6):e55. 3.MutSasatoolformutationdetection.ActaBiochimPol.2005;52(3):575-83.Epub2005Aug4. 4.OnetubemutationdetectionusingsensitivefluorescentdyeingofMutSprotectedDNA.NucleicAcidsRes.2000Apr15;28(8):E36. 5.RapidSNPdiagnosticsusingasymmetricisothermalamplificationandanewmismatch-suppressiontechnology.NatureMethods-4,257-262(2007)doi:10.1038/nmeth1007 |
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2013 年 1 月份,美国两个实验室在《Science》杂志发表了基于 CRISPR-Cas9 技术在细胞系中进行基因敲除的新方法,该技术与以往的技术不同,是利用靶点特异性的 RNA 将 Cas9 核酸酶带到基因组上的具体靶点,从而对特定基因位点进行切割导致突变。该技术迅速被运用到基因敲除小鼠和大鼠动物模型的构建之中。通过一系列研究,首先证明了通过 RNA 注射的方式将 CRISPR-Cas 系统导入小鼠受精卵比 DNA 注射能更有效的在胚胎中产生定点突变。在此基础上,又发现了该方法没有小鼠遗传品系的限制,能够对大片段的基因组 DNA 进行删除,也可以通过同时注射针对不同基因的 RNA 序列达到在同一只小鼠或大鼠中产生多个基因突变的效果。此外,还证明了利用 CRISPR-Cas 技术构建的基因敲除大鼠模型与传统方法构建的同一基因(肥胖相关 G 蛋白偶联受体 Mc4R)突变大鼠相比具有一致的表型。该方法构建的基因突变动物具有显著高于传统方法的生殖系转移能力,是一种可靠、高效、快速的构建敲除动物模型的新方法。
CRISPR-Cas 技术是继锌指核酸酶(ZFN)、ES 细胞打靶和 TALEN 等技术后可用于定点构建基因敲除大、小鼠动物的第四种方法,且有效率高、速度快、生殖系转移能力强及简单经济的特点,在动物模型构建的应用前景将非常广阔。向左转|向右转
是不是CRISPRall-in-one只能设置一个sgRNA?
尽量简洁
客户提供:
1.目的基因信息(GenBankAccessionnumber、GeneID、或关键词)。
2.细胞系和培养条件
我想问一个基础问题啊,用CRISPR/cas系统敲除某个基因后,如果突变株表型没法通过肉眼分辨,怎么把突变株找出来?要用到什么Marker吗?还是需要对细胞逐个测序检测?
如果是逐个检测,那就涉及到效率问题了,当效率比较低的时候,岂不是工作量很大?
还有cas9基因会残留在细胞里吗?
CRISPR derived RNA
就是用来抵御病毒侵袭/躲避哺乳动物免疫反应的基因系统衍生的RNA。


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