Catalog number | TI051C |
Product type | ELISA |
Quantity | 96 Tests (12x8 breakable strip wells) |
Standard range | 2-75 ng/ml |
Analytical Sensitivity | 2 ng/ml |
Sample volume | 100 µl/well |
Species | Human |
Storage and Stability | Product should be stored at 2-8 °C. |
Precautions | For research use only. Not for use in diagnostic procedures. |
References | 1. Etievent, J., Chocron, S., Toubin, G., et. al.: The use of cardiac troponin I as a marker of peri-operative myocardial ischemia. Ann. Thorac. Surg., 59:1192-94, 1995. 2. Apple, F.: Acute Myocardial Infarction and Coronary Reperfusion: Serum Cardiac Markers for the 1990’s. Am. J. Clin. Path., 97: 217-26, 1992. 3. Adams,J., Bodor, G., Davila-Romain, V., et. al.: Cardiac troponin I: A marker for cardiac injury.Circulation, 88:101-6, 1993. 4. Corin S., Juhasz, O., Zhul, et. al.:Structure & expression of the human slow twitch skeletal muscle troponin I gene. J. Bio.Chem., 269:10651-7, 1994. 5. Perry, S.V.: The regulation of contractile activity in Muscle. Biochem. Soc. Trans. 7:593, 1979. 6. William, J.M., and Grand, R.J.A.: Comparison of amino acid sequence of troponin I from different striated muscles. Nature, 271:31, 1978. 7. Mehegan, J.P., and Tobacman, L.S.: Cooperative interaction between troponin molecules bound to the cardiac thin filament. J. Biol. Chem., 266:966, 1991. 8. Mair, J., Wagner, I., Puschendorf, B., et. al.: Cardiac troponin I to diagnose myocardial injury. The Lancet, 341:838-9, 1993. 9. Mair, J., Laruc, C., Mair, P., et al.: Use of Cardiac Troponin I to Diagnose Perioperative Myocardial Infarction in Coronary Artery Buypass Grafting. Clin. Chem., 40: 2066-70, 1994. 10. Vallins, W.J., et al.: Molecular cloning of human cardiac troponin I using polymerase chain reaction. FEBS Lett., 270:57, 1990. 11. Leszyk, J., Dumaswala, R., Potter, J.D., et. al.: Amino acid sequence of bovine cardiac troponin I. Biochemistry, 27: 2821-7, 1988. |
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Myoglobin ELISA
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石蜡切片组织茜素红钙染色试剂盒产品说明书(中文版)
主要用途
石蜡切片组织茜素红(ALIZARINREDS)钙染色试剂是一种旨在使用标准化的化学分离石蜡方法和鳌和技术,使钙离子和茜素红S产生复合物,来分析存档中的石蜡包埋的组织切片中橘红色钙沉积现象的权威而经典的技术方法。该技术经过精心改良、成功实验证明的。主要适用于石蜡包埋组织切片的钙沉积和钙化结节检测。广泛用于骨细胞或组织病理生理的研究。产品严格无菌,即到即用,操作简捷,性能稳定,显色清晰。
技术背景
茜素红(ALIZARINREDS)是一种蒽醌(anthraquinone)衍生物:9,10-二氢-3,4-二羟基-9,10-二氧代-2-蒽磺酸单钠盐(9,10-Dihydro-3,4-dihydroxy-9,10-dioxo-2-anthracenesulfonicacidsodiumsalt),又称媒介红3(MordantRed3)或茜素磺酸钠(Sodiumalizarinesulfonate)。其分子式为C14H7NaO7S,分子量为342.25。茜素红和钙离子以鳌和方式形成复合物,用以识别组织细胞的钙盐成分。钙盐变化是骨细胞增殖分化和骨组织成骨潜能的标志之一。通过茜素红染色,产生桔红色沉积,但会受到其它金属元素的干扰。
产品内容
脱蜡液(ReagentA)自备
补水液A(ReagentB)100毫升
补水液B(ReagentC)100毫升
补水液C(ReagentD)100毫升
补水液D(ReagentE)100毫升
清理液(ReagentF)30毫升
染色液(ReagentG)10毫升
产品说明书1份
保存方式
保存在4℃冰箱里;染色液(ReagentG),避免光照;试剂具有腐蚀性,注意操作安全。有效保证3月
用户自备
小型染色缸:用于石蜡切片的脱蜡操作
光学显微镜:用于组织细胞染色后观察分析
实验步骤
一、脱蜡处理
1.取出10片待测的石蜡包埋的组织切片(注意:石蜡包埋前,组织切片须用10%甲醛4℃条件下,固定16小时,此步很重要)
2.(选择步骤)放进80℃烘箱,孵育30分钟
3.(选择步骤)室温下静置15分钟
4.按下表依次放进小染色缸里孵育
染色缸
孵育时间
50毫升脱蜡液(ReagentA)
15分钟
50毫升脱蜡液(ReagentA)
15分钟
50毫升脱蜡液(ReagentA)
15分钟
50毫升补水液A(ReagentB)
3分钟
50毫升补水液B(ReagentC)
3分钟
50毫升补水液C(ReagentD)
3分钟
50毫升补水液D(ReagentE)
3分钟
5.小心移去切片上的补水液D(ReagentE)
6.小心加上200微升清理液(ReagentF)在切片上,铺满整个切片样品表面
7.室温下孵育5分钟
8.小心移去切片上的清理液(ReagentF)
二、样本染色处理
1.小心加上200微升染色液(ReagentG),铺满整个切片样品表面
2.室温下孵育2分钟(注意:可以延长至20分钟);或直至可见桔红色
3.小心移去切片上的染色液(ReagentG)
4.空气中晾干
三、样本澄清处理
1.小心加上200微升补水液B(ReagentC)在切片上,铺满整个切片样品表面
2.小心移去切片上的补水液B(ReagentC)
3.重复实验步骤1和2二次
4.小心加上200微升补水液A(ReagentB)在切片上,铺满整个切片样品表面
5.小心移去切片上的补水液A(ReagentB)
6.重复实验步骤4和5二次
7.小心加上200微升脱蜡液(ReagentA)在切片上,铺满整个切片样品表面
8.小心移去切片上的脱蜡液(ReagentA)
9.重复实验步骤7和8一次
10.放上盖玻片或封片
11.即刻在一般光学显微镜下观察:钙沉积阳性细胞呈现桔红色
注意事项
1.本产品为50次操作
2.操作时,须带手套
3.试剂具有腐蚀性,注意操作安全
4.石蜡包埋前,组织样品须用10%甲醛4℃条件下,固定16小时,否则造成样品支离破碎
5.所有操作在室温下进行
6.试剂溶液在样品表面时,避免有气泡存在,同时确保铺满样品表面
7.样品染色避免过度,肉眼可见桔红色即可终止染色
8.组织细胞染色完成后,即刻进行光学显微镜观察
9.本公司提供系列组织细胞金属元素染色试剂产品
质量标准
1.本产品经鉴定性能稳定
2.本产品经鉴定显色清晰
1)做免疫组化的片子最好不要同时做HE染色,因为那样会掩盖阳性着色的结果;而且用苏木素复染细胞核也是淡染,若要在免疫组化的片子上观察形态学的改变,除非有非常典型的表现,一般是有很大的难度的。
2)你是培养的细胞做免疫组化吗?如果是的话,那就每个样本只有一张片子吧?唯一的办法是进行免疫双染,同时做CD34和AFP(甲胎蛋白)。我觉得后者阳性便可以或多或少的获得向肝细胞分化的证据。
3)用HE染色来识别造血干细胞向肝细胞分化,也就是说要看到肝细胞的典型形态学改变后才可以下结论。问题是:早期的肝细胞仅凭形细胞态学观察并不能很容易的被识别。病理大夫看组织切片,重要的是看其组织学结构,对肝细胞也是这样。如果单拿出来一个细胞,还是培养的细胞,染色后真的不容易区分。所以我觉得你设计的用HE染色来确定早期细胞向哪个方向分化不是很有说服力。
4)如果是切片,也就是说每个样本可以有多张切片,那可以在连续切片上分别染CD34和AFP,拍照时选择相同视野,也有一定说服力。但是还是不如双染法更可靠。
5)用双染最大的问题在于:这两者都表达在胞浆中,染色容易相互覆盖。所以在双染的方法选择上你还要再考虑一下,可不可以用免疫荧光双染?这样也很有说服力的
本人对软骨石蜡切片做了MMP-13的免疫组化染色,首次做,无法判断染色部位,请各位帮忙看一下