| Target | 30-200 kDa Protein Marker |
| Storage | Store at -20°C. Stable for up to 2 years from date of receipt. |
| Buffer | 50 mM Tris-HCl, pH 6.8, 5 mM EDTA, 10 mM DTT, 10% glycerol, 1% SDS, 0.01% phenol red. |
| Concentration | 30 kDa band: 2 µg/5 µl100 kDa band: 1 µg/5 µlAll other bands: 0.5 µg/5 µl |
| Directions for use | Mix well before use. Use 5 µl/well for small gels or 10 µl/well for larger gels. Suggested Electrophoresis Conditions:Carry out electrophoresis at 200 V for 50 minutes. |
| Availability | Shipped within 5-10 working days. |
| Note | This product is for research use only. |
Abbexa是一家致力于为生命科学研究、药物研发及生物技术公司提供优质抗体、蛋白及检测试剂盒等产品的高科技生物技术公司。基于剑桥大学研发技术优势,Abbexa提供包括一抗、二抗、纯化蛋白、ELISA试剂盒、各种酶类及其它多种试剂与研究工具的大量生命科学研究产品。
目前Abbexa的产品涵盖单克隆抗体、多克隆抗体、纯化蛋白质及生物试剂,此外,为满足研发人员特殊的实验需要,Abbexa还提供抗体/多肽定制服务。严格的质控标准保证了Abbex产品的高性能,如您对产品不满意,Abbexa将直接提供退/换货服务
CLIAKits 化学发光免疫分析(chemiluminescenceimmunoassay,CLIA) RNAInterferenceProducts RNA干扰试剂 RNA干扰(RNAinterference,RNAi)是指在进化过程中高度保守的、由双链RNA(double-strandedRNA,dsRNA)诱发的、同源mRNA高效特异性降解的现象。基因沉默,主要有转录前水平的基因沉默(TGS)和转录后水平的基因沉默(PTGS)两类:TGS是指由于DNA修饰或染色体异染色质化等原因使基因不能正常转录;PTGS是启动了细胞质内靶mRNA序列特异性的降解机制。有时转基因会同时导致TGS和PTGS。 由于使用RNAi技术可以特异性剔除或关闭特定基因的表达,(长度超过三十的dsRNA会引起干扰素毒性)所以该技术已被广泛用于探索基因功能和传染性疾病及恶性肿瘤的治疗领域。 1. RNAi抑制转座子活性 两方面的证据提示转座子活性的抑制与siRNA有关 ①发现蠕虫mut-7基因参与RNAi并且与转座子的转座抑制有关; ②在果蝇中,参与RNAi的RNA解螺旋酶Spindle-E的突变将导致该基因引起的基因沉默的缺失,同时提高了反转录转座子活性。 2. RNAi抵御病毒感染 在拟南芥中研究转基因引起基因沉默时发现,sgs2/sde1基因突变的拟南芥对病毒的侵染表现出高度的敏感性。 3. RNAi参与异染色质的形成和维持 Hall等研究表明,着丝粒同源重复序列和RNAi组分一起正负调节着异染色质的形成并共同促使异染色质组装成核;Vople等在敲除裂殖酵母(S.pombe)的RNAi途径基因(如Argonaute、Dicer、RDRP)时发现异染色质转录得到的dsRNA可以在RNAi途径的参与下,加工成siRNA,siRNA募集异染色质蛋白1(HP1),然后靶向性引起相应异染色质区域的转基因沉默。 4. RNAi参与机体的发育调控及生理代谢 RNAi只抑制转录后的基因,所以RNAi在生物体发育学研究中具有优势。Chuang等用RNAi技术进一步证实了AG、CLV3、AP1、PAN等已知功能基因在拟南芥花发育过程中的功能。在RNAi过程中形成的RISC复合物可根据不同情况分别利用siRNA或stRNA行使不同的功能,但最终均导致特定基因沉默。 IsotypeControl 同型对照 同型对照(IsotypeControl),使用与一抗相同种属来源、相同亚型、相同剂量和相同的免疫球蛋白及亚型的免疫球蛋白,用于消除由于抗体非特异性结合到细胞表面而产生的背景染色。 同型对照 同型对照的主要目的是确定一抗的结合是特异性的,而不是非特异性的Fc受体或与其他蛋白的相互作用。还可以用来竞争性的结合抗体,与功能阻断抗体发挥同样的功能。 同型对照要与一抗的来源,Ig分型和标记完全一致。 如果一抗是多抗,可以用annormalserum(与一抗相同的正常血清)(mustbethesamespeciesasprimaryantibody)。Thiscontroliseasytoachieveandcanbeusedroutinelyinimmunohistochemicalstaining.这个可以咨询试剂商。同型对照为免疫荧光标记中的阴性对照。由于荧光标记单抗的组来源不同,应选用相同来源的未标记单抗作为同型对照来调整背景染色。举个例子:比如检测一抗为单抗的mouseantiratCD11b,cloneOX-42purifiedIgG,那么它的isotype是mouseIgG2a,所以可以用purified(纯化的)mouseIgG2a来做OX-42的同型对照(IsotypeControl)。一般的的生物技术公司和国内的代理都有出售。 同型对照:是指与MoAb相同的、未免疫小鼠的免疫球蛋白亚类,若使用直接免疫荧光染色法,同型对照也应标记荧光色素,如IgG1FITC、IgG2a、PE等。主要考虑了细胞的自发荧光、FC受体介导的抗体结合和非特异性抗体结合等影响因素。此外,同型对照与MoAb所标记的荧光色素、浓度、F:P比值(标记的荧光色素与免疫球蛋白分子的比值)应该相同为最佳,这对准确设定阴性与阳性细胞的界标有重要意义,切忌使用与MoAb不相匹配的同型对照,最好为同一实验室、采用相同工艺或方法制备(如同一品牌)的产品。
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1. 粗纯:将制备抗体的血清或是腹水,细胞上清,直接用盐析法进行处理,这样可以将这些物质里面的其他杂质去掉,获得蛋白的成分,但是由于是粗纯,里面会混有大量的其他蛋白,这样获得的抗体,纯度较低,用于实验中背景比较高。
2.通用型纯化:用抗体结合蛋白Protein A,Protein G或者Protein L。因为不同来源的抗体和这些抗体结合蛋白的结合能力不同,所以需要根据抗体来源选择使用哪种抗体将诶和蛋白最好。对于有一些单链抗体,则多半使用protein L来进行纯化。经过抗体结合蛋白的亲和纯化后,溶液中基本只保留了抗体的成分,其他蛋白都去掉了,抗体纯度可以比较高。相对来说,这种方法是大规模抗体制备中,用得最多的纯化方法,很多抗体公司都采用这种方法来对抗体进行纯化。
3.特异型纯化:但是有些抗体,需要纯度特别高,特异性特别好,就不能简单采用上述两种方法进行纯化了。必须要通过将抗原固定制备成特异的亲和纯化柱,再纯化抗体。这个时候得到的就全是针对一种抗原的抗体了,特异性最好。当然,由于牵涉到抗原固定等操作,成本相应是最高的。
(一)高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)
【参考值】
0.94~2.0mmol/L
【临床意义】
降低具有临床意义。HDL-C与TG呈负相关系,见于冠心病、动脉粥样硬化、糖尿病、肝脏损害、肾病综合征。
(二)低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)
【参考值】
沉淀法:2.07~3.12mmol/L,3.15~3.61mmol/L为边缘升高,≥3.64mmol/L为升高。
【临床意义】
升高具有临床意义。LDL-C升高与冠心病发病呈正相关系。
(三)脂蛋白(a),LP(a)
【参考值】 <300mg/L
【临床意义】
脂蛋白(a)升高已作为冠心病及脑血管疾病发病的独立危险因素。
①在用超滤除白蛋白,IgG中硫酸铵盐时,膜包该如何选择?选择几个?
②如用凝胶过滤来分级纯化血清中65%硫酸铵盐析出的白蛋白和纯化33%硫酸铵盐析出的IgG,其填充介质应选择什么?其洗脱缓冲液应用什么好?
下面有些关于这方面的数据,供参考:
①牛血清白蛋白:分子量:66210;分子形状:椭圆形;分子大小:
40Å*140Å;等电点:4.7;血浆中的含量:52.0g/L。
②IgG:分子量:15300;分子形状:球状;等电点:5.8—7.3;血浆中含量:2.0g/L。
③另外,我从书上看到说:凝胶过滤在分级方法中分辨率为中等,但对脱盐效果优良;流速较低,对分级每周期约≥8小时,对脱盐仅30分钟;适用于大规模纯化的最后步骤,在纯化过程的任何阶段均可进行脱盐处理,尤其适用于两种缓冲液交替时。
期待您的帮助,谢谢您。
非常急!
盐析 ——用于各种蛋白质酶离纯化;
蛋白质溶液加入量性盐破坏蛋白质胶体稳定性使其析种称盐析用性盐硫酸铵、硫酸钠、氯化钠等各种蛋白质盐析所需盐浓度及pH同故用于混蛋白质组离例用半饱硫酸铵沉淀血清球蛋白饱硫酸铵使血清白蛋白、球蛋白都沉淀盐析沉淀蛋白质经透析除盐仍保证蛋白质性调节蛋白质溶液pH至等电点再用盐析则蛋白质沉淀效更盐析两类第类叫Ks段盐析定PH温度通改变离强度实现用于早期粗提液;第二种叫b段盐析定离强度通改变PH温度实现用于期进步离纯化结晶影响盐析素包括:蛋白质浓度、离强度类型、PH值、温度等针温度条需要强调:低离强度或纯水蛋白质溶解度定范围内随温度增加增加高浓度蛋白质、酶肽类物质溶解度随温度升降般情况蛋白质盐析温度特殊要求室温进行某些温度比较敏酶要求0-4℃进行
使用硫酸铵沉淀蛋白需要注意:硫酸铵含少量重金属离蛋白质巯基敏作用使用前必须用H2S处理:硫酸铵配浓溶液通入H2S饱放置夜用滤纸除重金属离浓缩结晶100℃烘干使用另外高浓度硫酸铵溶液般呈酸性(PH=5.0左右)使用前需要用氨水或硫酸调节至所需PH
机溶剂沉淀 ——用于物、糖及核酸产品离纯化;
机溶剂沉淀机理降低水介电数导致具表面水层物脱水相互聚集析该优点于:1)辨能力比盐析高即蛋白质或其溶剂比较窄机溶剂浓度沉淀;2)沉淀用脱盐滤较容易;3)化制备应用比盐析广泛温机溶剂沉淀蛋白质往往引起变性例酒精消毒灭菌操作要求低温进行机溶剂选择首先能水混溶使用较机溶剂乙醇、甲醇、丙酮二甲基甲酰胺、二甲基亚砜、乙腈2-甲基-2,4戊二醇等
等电点沉淀 ——单独应用较少与其结合使用;
两性电解质净电荷零溶解度低同两性电解质具同等电点基础进行离工业产胰岛素粗提液先调PH8.0除碱性蛋白质再调PH3.0除酸性蛋白质利用等电点除杂蛋白必须解制备物酸碱稳定性盲目使用十危险少蛋白质与金属离结合等电点发偏移故溶液含金属离必须注意调整PH值等电点与盐析、机溶剂沉淀或其沉淀联合使用提高其沉淀能力
重金属盐沉淀 ——用于抢救误服重金属盐毒病;
许机物质包括蛋白内碱性溶液带负电荷能与金属离形沉淀根据机物与间作用机制羧酸、胺及杂环等含氮化合物类铜锌镉;亲羧酸疏含氮化合物类钙镁铅;亲硫氢基化合物类汞银铅蛋白质-金属离复合物重要性质溶解度溶液介电数非敏调整水溶液介电数(加入机溶剂)即沉淀种蛋白沉淀条件pH稍于等电点宜重金属沉淀蛋白质变性若低温条件并控制重金属离浓度用于离制备变性蛋白质临床利用蛋白质能与重金属盐结合种性质抢救误服重金属盐毒病给病口服量蛋白质用催吐剂结合重金属盐呕吐解毒
固定金属离子亲和柱主要用于金属螯化离子。位于许多蛋白中的组氨酸残基将会和许多金属离子,例如锌。铜,镍,铁等形成复合物。因此,该柱料能选择性螯合一些具有组氨酸残基的蛋白质。但是半胱氨酸和咯氨酸残基也能和固定化金属螯和。但是亲和力比组氨酸要弱。所以,结合的强度是和缓冲液的PH和金属离子决定的。
金属螯和柱料主要是由亚氨基的乙酰乙酸成分耦联琼脂糖柱料,借助醚长生7个原子的空间。
全部容量:24-30um的含有zn的干胶
柱料结构:6%的高铰链的琼脂糖
柱料大小:45-165um
平均微粒:90um
直流速度:25度/0.1MPa/30倍柱床/5厘米高度/每小时可达700厘米
最大压强:0.3MPa
PH变化:长期3-13
短期2-14
化学稳定:通用含水缓冲液
0.01M盐酸,1.0M NAOH,20%乙醇(保存7天)
物理性质:可以忽略在PH或者离子变化下的体积变化
耐热性能:121度下0.1M乙酸钠作用半小时
金属螯和柱料保存于事先填充于20%乙醇。所以要搅拌驱除20%乙醇溶液。换成去离子水。比例是25%去离子水和75%处理胶。
处理金属螯和柱料:
1 平衡所有用到的材料于室温。
2 搅拌金属螯和柱料
3 倒水进柱子,驱除气体。用无离子水液封几厘米。
4 将金属螯和柱料连续倒进柱子,用玻璃棒支撑柱壁防止气泡形成。
5 然后立即用无离子水液封,装上柱盖,连接上泵。
6 打开柱子底部的开关,然后调节泵的流速。通常是不超过0.3MPa的。
7 经过一个稳定的柱床填鸭后,维持填压速度为3个柱床。
使用adaptor
1 经过上溯填鸭后,关闭柱床下面开关,移开上面的薄膜,小心的加上去离子水进行液封。
2 一定角度插入adaptor,确保没有气泡。
3 确保所有的连接都没有问题,柱子/泵/样品接受器
4 倾斜插入活塞确保没有气泡和管道充满液体。利用活泵正反向的流动确保没有气泡。
5 固定adaptor,打开柱子开关,开始缓冲液的流动。先以填鸭的速度直到柱床稳定后。
固定金属离子:
金属螯和柱料通过水来螯和金属的,避免发生沉淀在胶上。
1 确保柱子已经平衡好。如果有必要可以洗2个柱床(去离子水)
2 选择金属离子和0.1-0.3M中弱性酸。例如铁离子PH 3左右就好,避免形成沉淀和共沉。
3 加入一倍柱床的金属离子溶液
45倍柱床的去离子水洗涤
5至少2倍柱床的平衡缓冲液
结合:
发生于PH5.5-8.5之间.最强反映发生于最后
初始缓冲液的选择决定于金属离子和样品的结合性质。乙酸钠或者磷酸钠是比较好的缓冲液中不能使用EDTA或者柠檬酸盐
最通用缓冲液:
0.01-0.2M磷酸钠
0.05M乙酸钠
强烈推荐加入0.15-0.5M NaCl用于防止离子交换。
通常如果不知道一个蛋白的结合能力,最好的就是使用锌离子和中性的磷酸或者乙酸盐,同时含有0.15-0.5M NaCl
去垢剂不会影响蛋白质的结合能力
金属离子的取代意味着蛋白发生了结合。这种现象可以通过颜色来决定
洗脱蛋白:(3种方法)
1 降低PH(一步或者分步),大部分蛋白溶解于PH4-6最终3-4是可容的。可选择柠檬酸盐,磷酸或者乙酸盐。
2 逐步提高咪唑的浓度(0-0.5M),梯度变化最好是在初始缓冲液的PH范围。
3 加入EDTA或者EGTA可洗脱蛋白质。但是不是通用的。
利用离心或者重力作用纯化组氨酸位点蛋白
通过上镍进行选择性结合含有组氨酸位点蛋白,然后利用含有咪唑的缓冲液洗脱蛋白。
以下的实验是为了最大化将组氨酸位点蛋白结合到金属螯和柱料,然后确保能够洗脱下来。当结合和洗脱的条件尚未明了时,这些方法也是很好用的。
为了获得高纯度的蛋白,必须摸索咪唑的缓冲液在样品上柱和洗脱时的浓度。通常使用10mM-500mM范围的咪唑的缓冲液进行剃度洗脱,然后通过收集和SDS-PAGE 蛋白电泳确定洗脱浓度。
为了纯化不可容的含有his位点的蛋白质,(包含体),可以在变性条件下进行。利用8M尿素或者6M盐酸呱进行溶解蛋白。
样品处理:
样品要经可能溶解,避免出现堵塞现象,所以可以利用0.45uM虑膜过滤杂志
如果样品时溶解于20mM磷酸缓冲液中(含有0.5M Nacl,PH7.4),必须调整PH到7-8。
上柱前准备:
洗柱料:
1 亲柔震动胶瓶充旋胶料
2 利用吸管吸出足量柱料用以纯化目的。每毫升柱料可以吸纳5毫克蛋白
3 500g 离心2-5分钟,沉淀柱料。
4 小心去除上清
5 加入5倍体积去离子水,充分振荡柱料。可以倒置来回5分钟,不要机械搅拌。
6 再次500g 离心2-5分钟,沉淀柱料。
7 再次小心去除上清
挂镍:
1 加入0.5倍柱床体积0.1M硫酸镍,充分振荡柱料。可以倒置来回5分钟,不要机械搅拌。
2500g 离心2-5分钟,沉淀柱料。
3小心去除上清
洗柱:
1加入5倍体积去离子水,充分振荡柱料,来回倒置5分钟
2500g 离心2-5分钟,沉淀柱料。
3小心去除上清
4 再洗两次柱料(一共3×5柱床去离子水)
5 最后用一倍体积起始缓冲液充旋柱料(20mM Na2HPO4 /0.5MnaCl/10mM咪唑/PH7.4)
利用离心来纯化:
上样:
1 在起始缓冲液中加入样品,然后使整体胶浓度达到50%
2 亲柔搅拌,室温离心5-30分钟,结合能力取决于蛋白和样品浓度。
3 500g 离心2-5分钟,沉淀柱料。
4 取出上清。部分用于SDS-PAGE 蛋白电泳
洗胶:
1 加入5倍体积起始缓冲液,搅拌5分钟
2 500g 离心2-5分钟,沉淀柱料。
3取出上清。部分用于SDS-PAGE 蛋白电泳
4再洗两次柱料(一共3×5柱床起始缓冲液)。记得取出上清,部分用于SDS-PAGE 蛋白
电泳
洗柱:
1 加入2倍体积洗脱缓冲液(20mM Na2HPO4 /0.5MnaCl/10mM咪唑/PH7.4)搅拌5分钟
2再次500g 离心2-5分钟,沉淀柱料。
3再洗四次柱料(一共5×2柱床洗脱缓冲液)。记得取出上清,部分用于SDS-PAGE 蛋白电泳,280nM吸光值,ELISA,WESTERN
利用流速和重力纯化:
1 在柱子底部加上滤器
2 加水排气
3 加柱帽,去除残余水。推荐是最多2 Ml柱料就可以了
样品结合:
1 倒胶进入柱子
2 小心上样,用波棒室温搅拌5-30分钟
3 打开柱帽,收集流出峰用于分析
洗胶:
1 加入5倍体积起始缓冲液,收集流出液用于SDS-PAGE 蛋白电泳
2再洗两次柱料(一共3×5柱床起始缓冲液)。记得取出上清,部分用于SDS-PAGE 蛋白
电泳
洗柱:
1 加上柱帽,加入2倍体积洗脱缓冲液(20mM Na2HPO4 /0.5MnaCl/10mM咪唑/PH7.4)搅拌5分钟。打开柱帽,收集流出峰
2再洗四次柱料(一共5×2柱床洗脱缓冲液)。记得取出上清,部分用于SDS-PAGE 蛋白电泳,280nM吸光值,ELISA,WESTERN
注意:0.5M咪唑的280nM吸光值=0.5
常见问题:
1 样品太粘稠
答:核酸存在影响,可以继续超声,加入RNA酶至10ug/mlDNA酶至5ug/ml。然后冰浴1
0-15分钟。或者也可以用注射器来回充旋。这样可以防止堵塞柱料。
2 平衡时样品洗脱了下来
答: 检查PH和缓冲液成分,如果缓冲液成分不正确,EDTA加入,强还原剂加入,都会导致这个现象出现。
加大胶的量,如果胶料承载能力过头,也绘出出现这现象。
准备新鲜的柱料,如果柱料断裂,也挂不上蛋白。
3 在洗脱液中不含有组氨酸蛋白
答:如果SDS-PAGE 蛋白电泳已经发现蛋白存在于超声液中
超声可能不完全。可以用显微镜观察超声情况。AD260/280比值。(通常是超声前将10mg/ml溶菌酶加入25mM Tris-HCL,PH6-8),避免发泡以降解融合蛋白。
蛋白可能是是包含体,可以使用4-6M盐酸呱或者4-8 M尿素溶解。
尿素溶解的可以进行SDS-PAGE 蛋白电泳,盐酸呱溶解的不可以进行SDS-PAGE 蛋白电泳,必须换缓冲液。
洗脱液浓度太稀,可以加大咪唑浓度或者降低PH 来决定最佳洗脱条件如果在平衡前的洗柱发现了目的蛋白,证明起始缓冲液中的咪唑浓度太高,可适当降低。
4 考马氏亮蓝或者银染发现多条带
答:加入蛋白激酶抑制剂。可能是蛋白降解。用凝血酶切割前必须去除丝氨酸蛋白酶抑制剂采用梯度咪唑来洗脱蛋白。在平衡洗脱液中加入10mM咪唑可以洗脱大量杂质而不会洗脱融合蛋白。低于500mM咪唑可以洗掉绝大部分杂质。
在洗脱步奏往起始缓冲液加入去垢剂(2%TRITON x-100或者2%Tween20)50% 葡萄糖,20mM B-巯基乙醇。记得杂质通常没有特意结合能力,可以改变缓冲液来洗脱。
如果杂志和目的蛋白有相同结合能力,那就不能用于纯化。因此可以使用别的纯化系统,例如含有GST尾巴就用谷胱甘肽琼脂糖4B
柱料再生,清洁和保存
柱料再生:
1 使用0.05M EDTA,0.5M NaCl来洗脱镍离子。然后用3柱床的0.5M NaCl来洗干净EDTA
2如果是铁离子可以用0.05M EDTA泡过夜
3 这一步可以洗脱上面未能洗脱的残余结合蛋白
清洗柱料:
1 0.5倍柱床2M NaCl,反向洗脱10-15分钟
2 1M NaOH洗1小时去除残余蛋白
3 每一步都要用3倍柱床起始缓冲液清洗
4 4倍柱床70%乙醇洗脱强亲水蛋白和脂类蛋白。
也可以使用2倍柱床去垢剂。0.1-0.5%非离子去垢剂溶于0.1M乙酸。浸泡1-2小时。最后用5个柱床的70%乙醇去除去垢剂。
清洁:
1 尽可能去除微生物
2 0.5-1M NaOH反向流动半小时
3 再用3-5倍柱床消毒的起始缓冲液平衡
4 这个清洁步奏不一定能够提高纯化能力
保存:
长期保存于20%乙醇或者0.01M NaOH 于4度

