These mammalian expression vectors allow you to express a protein of interest fused to either the c-Myc or hemagglutinin (HA) epitope tag. c-Myc and HA are well-characterized and highly immunoreactive tags, and thus are ideal for co-immunoprecipitation studies but are also easily detected via Western blot. Moreover, c-Myc and HA are small tags and thus unlikely to interfere with the function of your protein.
These mammalian expression vectors allow you to express a protein of interest fused to either the c-Myc or hemagglutinin (HA) epitope tag. c-Myc and HA are well-characterized and highly immunoreactive tags, and thus are ideal for co-immunoprecipitation studies but are also easily detected via Western blot. Moreover, c-Myc and HA are small tags and thus unlikely to interfere with the function of your protein.
The pCMV vectors use the CMV promoter for constitutive, high-level expression in a wide variety of mammalian cells. The myc-tagged protein of interest can be detected by either Western blot analysis or fluorescence microscopy using an anti-myc antibody.
The pCMV-Myc & pCMV-HA Vector Set (Cat. # 631604) includes c-Myc monoclonal and HA-Tag polyclonal antibodies, which can also be used in Western blot, ELISA, or immunostaining assays. A sequencing primer is also included in the set to confirm that the insert is in the correct reading frame.
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最好能说得具体点，小弟对此几乎一窍不通
谢谢
1. 粗纯：将制备抗体的血清或是腹水，细胞上清，直接用盐析法进行处理，这样可以将这些物质里面的其他杂质去掉，获得蛋白的成分，但是由于是粗纯，里面会混有大量的其他蛋白，这样获得的抗体，纯度较低，用于实验中背景比较高。
2.通用型纯化：用抗体结合蛋白Protein A，Protein G或者Protein L。因为不同来源的抗体和这些抗体结合蛋白的结合能力不同，所以需要根据抗体来源选择使用哪种抗体将诶和蛋白最好。对于有一些单链抗体，则多半使用protein L来进行纯化。经过抗体结合蛋白的亲和纯化后，溶液中基本只保留了抗体的成分，其他蛋白都去掉了，抗体纯度可以比较高。相对来说，这种方法是大规模抗体制备中，用得最多的纯化方法，很多抗体公司都采用这种方法来对抗体进行纯化。
3.特异型纯化：但是有些抗体，需要纯度特别高，特异性特别好，就不能简单采用上述两种方法进行纯化了。必须要通过将抗原固定制备成特异的亲和纯化柱，再纯化抗体。这个时候得到的就全是针对一种抗原的抗体了，特异性最好。当然，由于牵涉到抗原固定等操作，成本相应是最高的。
1. 粗纯：将制备抗体的血清或是腹水，细胞上清，直接用盐析法进行处理，这样可以将这些物质里面的其他杂质去掉，获得蛋白的成分，但是由于是粗纯，里面会混有大量的其他蛋白，这样获得的抗体，纯度较低，用于实验中背景比较高。
2.通用型纯化：用抗体结合蛋白Protein A，Protein G或者Protein L。因为不同来源的抗体和这些抗体结合蛋白的结合能力不同，所以需要根据抗体来源选择使用哪种抗体将诶和蛋白最好。对于有一些单链抗体，则多半使用protein L来进行纯化。经过抗体结合蛋白的亲和纯化后，溶液中基本只保留了抗体的成分，其他蛋白都去掉了，抗体纯度可以比较高。相对来说，这种方法是大规模抗体制备中，用得最多的纯化方法，很多抗体公司都采用这种方法来对抗体进行纯化。
3.特异型纯化：但是有些抗体，需要纯度特别高，特异性特别好，就不能简单采用上述两种方法进行纯化了。必须要通过将抗原固定制备成特异的亲和纯化柱，再纯化抗体。这个时候得到的就全是针对一种抗原的抗体了，特异性最好。当然，由于牵涉到抗原固定等操作，成本相应是最高的。
