Description:
Signosis"rat miRNAarrayallowsyoutoprofile113miRNAsfromratsamples.ApplicableGrid:
ListofApplicablemiRNAs
| Let-7a-5p | Let-7b-5p | Let-7c-5p | Let-7d-5p | Let-7e-5p | Let-7f-5p | miR-1 | miR-7-5p | ||
| miR-9-5p | miR-10a-5p | miR-15b-5p | miR-16-5p | miR-17-5p | miR-18a-5p | miR-19a-3p | miR-19b-3p | ||
| miR-20a-5p | miR-21-5p | miR-25-3p | miR-28-5p | miR-34a-5p | miR-99a-5p | miR-122a-5p | miR-124a-3p | miR-125a-5p | miR-125b-5p |
| miR-126-3p | miR-133a-3p | miR-133b | miR-143-3p | miR-145-5p | miR-146a-5p | miR-146b-5p | miR-148a-3p | ||
| miR-181a-5p | miR-181b-5p | miR-181c-5p | miR-182-5p | miR-192-5p | miR-194-5p | miR-195-5p | miR-199a-5p | ||
| miR-200a-3p | miR-200c-3p | miR-204-5p | miR-206 | miR-216-5p | miR-223-3p | miR-224-5p | miR-342-3p | miR-375 | |
| miR-9-1-5p | miR-10b-5p | miR-22-3p | miR-23a-3p | miR-24-3p | miR-26a-5p | miR-26b-5p | miR-27a-3p | miR-27b-3p | |
| miR-29a-3p | miR-29b-3p | miR-29c-3p | miR-30a-3p | miR-30a-5p | miR-30b-5p | miR-30c-5p | miR-92-3p | miR-92b-3p | miR-93-5p |
| miR-101-1-3p | miR-103-3p | miR-106b-5p | miR-107 | miR-128a-3p | miR-128b-3p | miR-132-3p | miR-134-5p | ||
| miR-135b-5p | miR-136-5p | miR-137 | miR-140-5p | miR-141-3p | miR-142-3p | miR-150-5p | miR-151-3p | miR-153-3p | |
| miR-154-5p | miR-181d-5p | miR-183-5p | miR-185-5p | miR-186-5p | miR-188-5p | miR-190-5p | miR-191-5p | miR-196a-5p | miR-196b-5p |
| miR-200b-3p | miR-203a | miR-205-5p | miR-210-3p | miR-214-3p | miR-215-5p | miR-218-5p | |||
| miR-219 | miR-221-3p | miR-222-3p | miR-296-5p | miR-100-5p | miR-127 | miR-142-5p | |||
| miR-31-5p | miR-181a-3p | U6 |
Principle:
miRNAisdifferentfromlargemessengerRNAinthreeaspects;(1)miRNAsaresmallsizemoleculeswithquiteabigdifferenceinabundance,(2)maturemiRNAsco-existwiththeirprecursorpre-miRNAandpri-miRNA,whichonlydifferinlength,and(3)manymiRNAsareverycloselyrelatedinsequences,suchasisoforms,onlydifferingbyoneorafewnucleotides.Therefore,theconventionalmircoarraytechnologiescannotdirectlybeappliedtoanalyzingthesemolecules.AnumberofmiRNAmicroarrayproductsarecommerciallyavailable,buttheyareeithertediousinrequiringpre-isolationofmicroRNA,lackthediscriminativepowertodifferentiatebetweenisoforms,orarenotsensitiveenoughtomonitorlowabundantmiRNAs.
Inourarrayassay,eachmiRNAmoleculeistargetedbytwooligosthathybridizewiththetargetmiRNAtoformaRNA/DNAduplex.Whenthesequencesareperfectlymatched,theoligosarealignedwiththemiRNAandthejointcanbeligatedbyDNAligase(figure1).AsinglenucleotidedifferenceamongmiRNAswillblockeitherthehybridizationortheligation;Thus,miRNAisoformscanbedifferentiated.DuetothesmallsizeofmiRNA,thehybridmightnotbestable;Therefore,weintroducethestackingsequences.Byextendingthesetwooligosalongwiththeircomplementaryoligos,thestABIlityisincreased.Oncethepairofoligosisligated,theligatedmoleculesaresubjectedtolinearamplificationviaT7transcriptionintoRNAinthepresenceofbiotin-UTP,whichareusedasprobesforarrayhybridization.Todifferentiateeachisoform,weassigneduniquetagsequencestotheligationoligos,sothatsinglenucleotidedifferencesareconvertedintouniquetagsequences.Inthisway,eachisoformcanbeeasilydistinguishedbyarrayhybridization.
Theassayprocedureincludesthreesteps:(1)mixthemiRNAwithprovidedoligostoformmiRNA/oligohybrids;(2)selectthehybridsandremovefreeoligos,andligatemiRNA-directedpairingofoligostobecomeasingleDNA;and(3)amplifytheligatedDNAwithT7transcription.
Data:
| |
ebiomall.com
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
dsRNA（double-stranded RNA）介导基沉默作用dsRNA基点研究基沉默机制热点dsRNA指于30碱基RNA哺乳物细胞至少2条路径竞争双链RNA(dsRNA)其特异性路径：特殊dsRNA序列用于RNAi起始阶段dsRNA切siRNA（small interfering RNA 或short interfering RNAs）siRNARNA干扰作用赖发重要间效应能提供定信息允许特定mRNA降解siRNA义链与反义链各21碱基其19碱基配再每条链3’端都2配碱基
另条非特异性路径：要dsRNA存降解所RNA抑制所蛋白质合dsRNA激蛋白激酶PKR激PKR通系列磷酸化关闭翻译起始导致翻译抑制通激2’－5’AS 合激RNase L导致非特异RNA降解
关于特异性RNA作用机制模型包括起始阶段效应阶段起始阶段dsRNADicer酶（RNaseIII家族特异识别双链RNA员属内切核酸酶）作用加工裂解21－23核甘酸干扰RNA片断（siRNA）Dicer含解旋酶性及dsRNA结合域PAZ结构
RNAi 效应阶段siRNA双链结构解旋并形性蛋白/RNA复合物（RNA－induced silencing complex or RISC）siRNA 解双链即RISC激程需ATP由RISCsiRNA反义链与mRNA互补区域结合随切割mRNA达RNA水平干扰基表达RISC由种蛋白组包括核酸酶解旋酶同源RNA链搜索性等
将EntransterTM-invivo与AmbioninvivosiRNA(作用于凝血因子VII)和阴性siRNA通过尾静脉注射成年小鼠，2天后，取动物肝脏检测。在mRNA水平和蛋白水平观察干扰效果。见上图，图中最左侧组为对照组注射阴性siRNA为3mg/kg，后边3组为每kg动物注射阳性siRNA量分别为1mg/kg,2mg/kg和3mg/kg情况。
根据推荐用量注射EntransterTM-invivo和siRNA（作用于LaminA/C）和阴性siRNA到成年小鼠。注射后2天收集相应的组织，分离RNA，用qRT-PCR分析LaminA/C基因的表达水平。图4为尾静脉结果，图5为各器官分别局部注射结果。
英格恩生物体内转染试剂，3天可完成动物体内转染实验，让动物干扰，基因敲除实验变得简单、快速有效！
⒉特异性：Elbashir等和Brummel kamp等发现在21～23个碱基对中有1～2个碱基错配会大大降低对靶mRNA的降解效果。
⒊位置效应：Holen等根据人TF(tissue factor）不同的位置各合成了4组双链RNA来检测不同位置的双链RNA对基因沉默效率的影响。在不同浓度和不同类型的细胞中，hTF167i和hTF372i能够抑制85%～90%的基因活性，hTF562i只能抑制部分基因活性，而hTF478i则几乎没有抑制基因的活性。他们还以hTF167为中心依次相差3个碱基对在其左右各合成了几组双链RNA，有趣的是它们所能抑制该基因活性的能力以hTF167为中心依次递减。特别是hTF158i和 hTF161i只与hTF167i相距9个和6个碱基，但它们几乎没有抑制该基因活性的能力。结果还表明双链RNA对mRNA的结合部位有碱基偏好性，相对而言，GC含量较低的mRNA被沉默效果较好。
⒋竞争效应：Hoten等将10 nmol/L和30 nmol/L的hTF167i相比，两者的沉默基因效果无差异，但将20 nmol/L基因抑制效果很差的PSK314i和10 nmol/L的hTF167i相混和后，hTF167i产生的抑制效果明显降低。
⒌可传播性：在线虫中，双链RNA可以从起始位置传播到远的地方，甚至于全身。Feinberg 和Hunter在线虫细胞膜上发现一种跨膜蛋白SID1，它可以将双链RNA转运出细胞，因此系统性的RNAi包括了SID1介导的双链 RNA在细胞间的运输。但在果蝇上并未发现有此基因的同源物，因此在果蝇上通过注射产生的RNAi不能扩散。向左转|向右转
请有经验的战友指点，若可以最好能提供几篇应用动物进行RNA干扰研究的文章．
非常感谢！
本是小菜鸟，目前研究某个比较新的蛋白对内质网应激的影响，需要抑制这个蛋白的表达看下游信号的表达情况，但是无论如何夜找不到抑制剂，做RNA干扰的话经费就超出预算了！急求各位大神，帮忙出个解决方案吧！非常感谢！
近期，北京大学基础医学院鲁凤民教授课题组与许中伟、夏宁邵教授等合作，在《Theranostics》杂志上在线发表了题为“ThegRNA-miRNA-gRNAternarycassettecombiningCRISPR/Cas9withRNAiapproachstronglyinhibitshepatitisBvirusreplication”的研究论文。该研究通过模拟microRNA（miRNA）的生成过程，整合双gRNA导向的CRISPR/Cas9和RNA干扰技术，高效破坏乙型肝炎病毒（HBV）的复制模板-共价闭合环状DNA（ccCDNA），探索病毒清除新路径。北医王杰讲师、陈然和张瑞阳博士研究生为该论文的共同第一作者。
目前，我国仍有慢性HBV感染者约7800万人，慢乙肝患者约2800万人。HBV感染仍是我国病毒性肝炎、肝硬化及肝癌的重要致病因素。作为HBV复制模板的cccDNA，由于其半衰期相对较长，加上cccDNA池的不断补充，使得细胞核内的cccDNA持续存在、感染慢性化。目前，临床上治疗慢乙肝的常用药物为核苷（酸）类似物和长效干扰素，二者均不直接作用于cccDNA，难以有效清除病毒实现临床治愈。因此，研发直接靶向cccDNA的药物，寻找清除cccDNA的新方法和新策略，是当前慢乙肝治疗药物研发的热点。
该研究以miRNA-31为基本骨架，通过模拟其核心序列的二级结构设计HBV特异的miRNA（miR-HBV），miRNA两侧侧翼序列为特异性靶向cccDNA不同位点的引导RNA（gRNA）。如图所示，该gRNA-(miR-HBV)-gRNA三联体表达体系导入细胞后，在细胞核内转录形成gRNA-(miR-HBV)-gRNA长转录本，经内源的Drosha/DGCR8复合体剪切，形成2个gRNA和1个miR-HBV前体（pre-miR-HBV）。进入细胞质后，pre-miR-HBV进一步经Dicer酶剪切，形成成熟的miR-HBV。一方面双gRNA导向的CRISPR/Cas9系统通过切割并去除cccDNA的关键调控和编码序列直接破坏cccDNA，另一方面通过miR-HBV在转录后水平抑制HBV复制，进而抑制cccDNA池的补充，协同促进HBVcccDNA的清除。此外，本研究还发现，当pri-miRNA-31的侧翼序列长度为38bp时与双gRNA组成的三联体对HBV复制的抑制效率最高。
双gRNA导向的CRISPR/Cas9整合RNAi技术高效抑制HBV复制模式图
当然，该技术离临床应用尚有较远的距离。一方面如何高效和靶向性地将三联体递送到HBV感染的肝细胞内是需要攻克的一大障碍；另一方面，CRISPR/Cas9基因编辑技术的脱靶效应也有安全性之虞。然而，近年来随着Cas核酸酶的不断改造，其脱靶效应得到了有效控制，安全性大为提高。而且，随着金黄色葡萄球菌Cas9的发现，使得CRISPR/Cas9系统可以装入腺相关病毒载体中，致使该技术应用于临床的距离逐渐缩短。
总之，本研究通过gRNA-(miR-HBV)-gRNA三联表达框架联合CRISPR/Cas9和RNA干扰技术高效破坏cccDNA，促进HBV清除，为慢乙肝抗病毒治疗提供了新的思路。该项研究得到国家十二五重大科技专项计划“艾滋病和病毒性肝炎等重大传染病防治”项目和国家自然科学基金的支持。
论文链接：https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28839466
这种技术，以前曾被用来研究植物和蠕虫等，但直到现在才发现它对哺乳动物细胞也有效。
如果把这个思路用于医疗，使致病的基因“沉默”下来，不就可以治好许多疾病吗？而哈佛医学院的研究人员首次用ＲＮＡ干扰使活体动物的致病基因“沉默”。美国哈佛医学院的科学家在最新一期英国《自然医学》杂志上报告说，他们已经成功地利用这种核糖核酸干扰技术治愈了实验鼠的肝炎。如果进一步证实这种技术在人体内有效，将为许多疾病和感染提供新疗法。
在研究中，科学家干扰的目标是“凋亡相关蛋白质（ＦＡｓ）基因”。这种蛋白质存在于细胞表面，它能够启动细胞的自杀程序，据认为，许多肝病是由于病毒、免疫系统失常或慢性酒精中毒激活了ＦＡｓ基因所导致的。
研究人员给实验鼠尾部的血管注入旨在“沉默”ＦＡｓ基因的小干扰ＲＮＡ，发现有９０％的肝细胞接收到了这种ＲＮＡ分子，ＦＡｓ蛋白质的产量变成原先的十分之一。随后，科学家给实验鼠注入大量ＦＡｓ抗体，激活细胞自杀程序，模拟实验鼠患有严重肝炎的情形。
结果，未接受ＲＮＡ干扰治疗的实验鼠有４０％在３天内死亡。而４０只接受过治疗的实验鼠有３３只活了下来，１０天后研究人员检查这些实验鼠的肝部，发现完全正常。
对于人来说，身体比老鼠大得多，血液循环系统也庞大。科学家目前正在寻找把小干扰ＲＮＡ送到人体特定部位的方法，以便验证ＲＮＡ干扰技术在人体中的效果。
在此，我只是抛砖引玉，向大家简单介绍一种新的技术，希望对其感兴趣的同仁多多发表，也希望版主给予支持。
简单来说，Off-target效应就是指干扰shRNA序列进入了microRNA途径，通过microRNA途径，其可以不受完全互补的限制而调控大量靶基因的表达。原本需要19~23nt的RNA序列完全互补才能发生干扰作用，而如果进入microRNA途径，只需要11~15nt互补就可以产生干扰效果，这使得siRNA可能与非靶基因结合而导致非靶基因沉默，造成脱靶。 如果脱靶干扰的部分基因，正好与目的基因位于同一信号通路中，或者与目的基因的生物学功能相似，那么，如果因脱靶而干扰了其它基因，亦会造成和目的基因受到干扰后相同的细胞表型改变。而实际上，可能选择的这条shRNA序列并没有对目的基因造成有效干扰，或者虽然干扰了目的基因，但是并不会引起预期的细胞表型改变。
基于以上原因，自从Off-target效应被发现并被研究者们广泛认同后，越来越多的杂志要求研究者们在投稿时需要有相应的对照来说明Off-target效应。即您需要有相关对照或者实验来说明，您所获得的实验结果，不是由于Off-target效应而产生的。向左转|向右转
