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제품특징
□ 제품설명
AMV (Avian Myeloblastosis Virus) 유래의 역전사 효소 AMV RTase XL에 의한 RNA로부터 cDNA 합성, 그리고 TaKaRa Ex Taq HS에 의한 cDNA 합성을 한개의 튜브 내에서 실시할 수 있다. 본 제품은 RNA로부터의 cDNA 합성과 cDNA 증폭에 필요한 모든 시약으로 구성한 kit이다. AMV RTase XL는 반응 온도를 높게 설정할 수 있기 때문에 (42~ 60℃) 긴 strand의 cDNA 합성 뿐만아니라 복잡한 2차 구조를 가지기 쉬운 RNA의 역전사 반응에도 유효하다. PCR 증폭에 사용되는 TaKaRa Ex Taq HS는 Hot Start PCR용 효소이기 때문에 반응액 조제시의 misannealing이나 primer dimer에서 유래하는 비특이적 증폭을 막을 수 있어 특이성의 높은 PCR 증폭이 가능하다. Oligo dT-Adaptor Primer는 poly(A)+RNA의 3'말단부터 cDNA를 높은 효율로 합성할 수 있도록 설계되어 있어 3"-RACE법으로 미지의 3" 말단의 증폭을 효과적으로 실시할 수 있다.
□ Kit의 내용(100회분)*1
AMV Reverse Transcriptase XL*2(5 U/ul) | 50 ul |
RNase Inhibitor(40 U/ul) | 25 ul |
Random 9 mers(50 pmol/ul) | 50 ul |
Oligo dT-Adaptor Primer(2.5 pmol/ul) | 50 ul |
RNase Free dH2O | 1 ml |
TaKaRa Ex Taq HS(5 U/ul) | 25 ul |
M13 Primer M4(20 uM) | 50 ul |
10 × RT Buffer*3 | 1 ml |
5 × PCR Buffer | 1 ml |
dNTP Mixture (각 10 mM) | 150 ul |
MgCl2(25 mM) | 1 ml |
Control F-1 Primer(20 pmol/ul)*4 | 25 ul |
Control R-1 Primer(20 pmol/ul)*5 | 25 ul |
Positive Control RNA(2×105 copies/ul) | 25 ul |
*1 [10 ul 역전사반응 → 50 ul PCR 반응]의 100회분*2 Life Sciences사 제품입니다.*3 100 mM Tris-HCl(pH8.3), 500 mM KCl*4 Positive Control RNA용 upstream primer*5 Positive Control RNA 용 downstream primer*6 pSPTet3 Plasmid 전사 poly(A)+ RNA
□ 보존 -20℃
□ 특징
RN Template | Full length |
증폭 사이즈 | 최소 5 kbp 정도 증폭가능 |
역전사효소 | AMV Reverse Transcriptase XL(42 ~ 60℃에서 역전사가능) |
DNA Polymerase | TaKaRa Ex Taq HS |
RNase Inhibitor | 필요(Kit내 포함) |
1st strand cDNA 합성 primer | Random 9 mers, Oligo dT-Adaptor Primer, 특이적 PCR primer 사용가능 |
3"-RACE법 | RT 반응때 Oligo dT-Adaptor Primer, PCR 반응시 M13 M4 Primer를 사용하여 3"-RACE법에 사용가능 |
조작 | 하나의 tube에서 반응가능. 열처리로 역전사 효소의 활성을 실활시킨 후 PCR 반응 |
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1、直接竞争,标记抗原,与检测样品中的抗原竞争抗体。
2、间接竞争,标记抗体,固相抗原与液相抗原(样品)竞争标记抗体。
3、定义
间接竞争法的模型:包被抗原,用HRP-抗体与样本一起加入。样本中的Ag与Solid-Ag竞争HRP-Ab,固相吸附的HRP-Ab与样本中的Ag浓度成反比。
直接竞争法的模型:包被抗体,用HRP-抗原与样本一起加入。样本中的Ag与HRP-Ag竞争Solid-Ab,固相吸附的HRP-Ag与样本中的Ag浓度成反比。
4、竞争法的理论基础:是限量抗体。只有在限量抗体基础上,两种抗原才会形成竞争关系。
5、、间接竞争法具备较高灵敏度原因。
直接竞争法里,标记抗原与待测抗原均是液相,与抗体的结合机会是一样的,例如有1份标记抗原与1份待测抗原竞争1份抗体,那么有50%的标记抗原能与抗体结合,所以标记抗原的相对结合率为50%。间接法里,固相抗原与抗体的接触面积较小,固相抗原与待测抗原的结合抗体机会是不平等的,接近顺序饱和法,即只有与待测抗原结合剩余的抗体才会与固相抗原结合,同样有1份固相抗原与1份待测抗原竞争1份抗体时,基本上抗体会被待测抗原中和掉,与固相抗原结合的抗体非常少。固相抗原的相对结合率为0%。因此,间接法的抑制曲线斜率会大于竞争法。
因为抑制率越大则斜率越大,从而灵敏度越大。(假设零管变异5%,以两倍SD为灵敏度限,则为90%相对结合率,则间接法可以在较低的待测抗原浓度达到这一相对结合率,因此灵敏度要高。)
在进行系统放大时,间接法一般可以使用酶标二抗。因为二抗可以针对抗体的多个部位,所以存在放大效应,从而能提高间接法的灵敏度。直接法一般难以进行放大,常用的有生物 素化抗原与酶标亲和素,但模式上似乎不存在放大效应。
6、间接法的高灵敏度难以实现的原因:
双抗体 夹心的免放(IRMA)模式刚出现时,也被模型证明灵敏度优于竞争法的放免(RIA),原因也是较大的斜率,但是IRMA的高灵敏度一直到单抗发展后才得以实现。
GM实验:试剂说明书上要求20分钟显色,10分钟的时候看一下,差不多就可以加终止液,但是我的标曲显色特别快,2分钟最低浓度蓝色就就深了,此时样本颜色还很浅很浅,我只能一块儿加终止液。所以,标曲显色过快,可能是什么原因?
(ps:第一列是标曲,后面是样本)
采用抗-HBe抗体包被反应板,加入校准品及被测样本,同时加入定量HBeAg中和抗原,经过振荡孵育,洗板后再加入铕标记的抗-HBe,若标本中抗-HBe浓度高,HBeAg将被大量中和,使最后形成的抗-HBe-HBeAg-铕标记抗-HBe复合物减少。增强液(β-NTA)将标记在抗体上的Eu3+解离到溶液中,Eu3+和增强液中的有效成分形成高荧光强度的螯合物,荧光强度和样本中的抗-HBe浓度成反比。

