Product Description
Recombinant HEK293 cell line expressing human TRPC3 (transient receptor potential cation channel, subfamily C, member 3, accession number NM_003305). Format Each vial contains 1 X 10^6 cells in 1 ml of 10% DMSO. Mycoplasma Testing The cell line has been screened using the PCR-based VenorGeM Mycoplasma Detection kit (Sigma-Aldrich) to confirm the absence of Mycoplasma species. Introduction TRPC3 channel belongs to the transient receptor potential channel (TRP) superfamily which is divided into seven main subfamilies. TRP channels share a similar architecture of six-transmembrane domains and function as tetramers. Most channels are permeable to calcium and monovalent cations (Vassort et al, 2009). Specifically, TRPC3 channel belongs to a canonical TRP (TRPC) subfamily that is involved in calcium entry. TRPC3 is activated through phospholipase C-linked receptors. When expressed in HEK293 cells, TRPC3 behaves as a receptor activated channel with constitutive activity that cannot be further increased by store depletion (Trebak et al, 2002).
References
Albert A.P., Saleh S.N., and Large W.A. (2009) Identification of canonical transient receptor potential (TRPC) channel proteins in native vascular smooth muscle cells. Current medicinal chemistry 16: 1158-1165.
Lievremont J., Bird G.J., and Putney, Jr. J.W. (2004) Canonical transient receptor potential TRPC7 can function as both a receptor- and store-operated channel in HEK-293 cells. Am J Physiol Cell Physiol 287: C1709-C1716.
Trebak M., Bird G.J., McKay R.R., Putney, Jr. J.W. (2002) Comparison of human TRPC3 channels in receptor-activated and store-operated modes. Journal of Biological Chemistry 277: 21617-21623.
Vassort G. and Alvarez J. (2009) Transient receptor potential: a large family of new channels of which several are involved in cardiac arrhythmia. Can. J. Physiol. Pharmacol. 87: 100-107.
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作者：PriCells原生原代
1.原代细胞培养最大优点是：细胞直接来源于机体组织，生物性状尚未发生大的变化，在一定程度上能够反映体内的状态。
2.细胞株和原代细胞不是完全一样。
3.并非每一种组织源性细胞都有相应的细胞株，有些细胞必须养原代，
4.细胞株是来源于原代细胞，原代细胞导入了病毒增殖基因并转变为细胞株，细胞株带有癌变细胞的特点。
5.细胞株的遗传物质已经发生改变，并不再具有接触生长抑制现象。
6.细胞株形态及状态不如原代细胞，相对长时间传代；而原代细胞生长是有限性。
7.细胞株在传代过程中可能发生形态的改变及变异，细胞株没有用原代细胞稳定性。
8.原代细胞的受体能够正确反映体内的生理和病理状态。
9.原代细胞的信号传导信号系统能够正确反映体内的生理和病理状态。
10.原代细胞的蛋白质生物学特征能够正确反映体内的生理和病理状态。
11.原代细胞的RNA生物学特征能够正确反映体内的生理和病理状态。
12.原代细胞的DNA生物学和遗传学特征能够正确反映体内的生理和病理状态。
13.原代细胞对外界反应能够正确反映体内的生理和病理状态。
14.原代细胞对体外检测能够正确反映体内的生理和病理状态。
15.原代细胞对毒理和致畸反应能够正确反映体内的生理和病理状态。
16.原代细胞对药物筛选能够正确反映体内的生理和病理状态。
17.原代细胞对个体化药物治疗能够正确反映体内的生理和病理状态。
18.原代细胞培养与体内原组织在形态结构和功能活动上一样，绝对是检测判断、药物治疗最好的实验对象。
19.如在中国进行体外检测和药物研发进行细胞培养，请要用中国人组织源性原代细胞。
操作步骤
（一）胰酶消化法
1、器材：将孕鼠或新生小鼠拉颈椎致死，置75%酒精泡2—3秒钟（时间不能过长、以免酒精从口和肛门浸入体内）再用碘酒消毒腹部，取胎鼠带 入超净台内（或将新生小鼠在超净台内）解剖取肝脏，置平皿中。
2、用Hank’s液洗涤三次，并剔除脂肪，结缔组织，血液等杂物。
3、用手术剪将肝脏剪成小块（1mm2），再用Hank’s液洗三次，转移至小青霉素瓶中。
4、视组织块量加入5—6倍的0.25%胰酶液，37℃中消化20—40分钟，每隔5分钟振荡一次，或用吸管吹打一次，使细胞分离。
5、加入3—5ml培养液以终止胰酶消化作用（或加入胰酶抑制剂）。
6、静置5—10分钟，使未分散的组织块下沉，取悬液加入到离心管中。
7、1000rpm，离心10分钟，弃上清液。
8、加入Hank’s液5ml，冲散细胞，再离心一次，弃上清液。
9、加入培养液l—2 ml（视细胞量），血球计数板计数。
10、将细胞调整到5×105/ml左右，转移至25ml细胞培养瓶中，37℃下培养。 上述消化分离的方法是最基本的方法，在该方法的基础上，可进一步分离不同细胞。细胞分离的方法各实验室不同，所采用的消化酶也不相同（如 胶原酶，透明质酶等）。
（二）组织块直接培养法 自上方法第3步后，将组织块转移到培养瓶，贴附与瓶底面。翻转瓶底朝上，将培养液加至瓶中，培养液勿接触组织块。入37℃静置3—5小时，轻 轻翻转培养瓶，使组织浸入培养液中（勿使组织漂起），37℃继续培养。
原代细胞产品专家齐氏生物提醒，原代细胞培养注意事项，供参考：
1、实验材料要新鲜，从活体分离材料后要低温保存，并尽快进行细胞分离实验。
2、无菌操作。操作时用的培养液，可加平时细胞培养液5倍含量的青链霉素。
3、用酶法分离细胞时，注意酶液的浓度和控制消化时间。
贴块法分离细胞时，注意动作要轻柔，不要伤到细胞组织，组织块边缘尽量平整有利于细胞游离。
4、培养液的选择。不同的细胞有对培养液中营养的要求不同，根据所分离细胞的特性选择。
细胞株(cell strain) 是通过选择法或克隆形成法从原代培养细胞中获得具有特殊性质或标志物的细胞称为细胞株。一般认为，细胞株是用单细胞分离培养或通过筛选的方法，由单细胞增殖形成的细胞群。细胞株的特殊性质或标志必须在整个培养期间始终存在。
细胞系(cell line) 是原代细胞经首次传代成功后即为细胞系。泛指一般可能传代的细胞。其中能够连续传代的细胞叫做连续细胞系或无限细胞系，不能连续培养的称为有限细胞系。大多数二倍体细胞为有限细胞系。由原先存在于原代培养物中的细胞世系所组成。如果不能继续传代，或传代次数有限， 可称为有限细胞系(finite cell line)， 如可以连续培养， 则称为连续细胞系(continuous cell line)， 培养50代以上并无限培养下去。人类肿瘤细胞，在体外培养半年以上，生长稳定，并连续传代的即可称为连续性株或系。
大家好，
最近开始练习做原代细胞培养，但是在取材的时候，用胰酶消化时发现有小团片状的絮状聚集在一起，吹打散了马上又聚集在一起，这是怎么回事呢？有人遇到过吗？求指教下
2.关键还是生长因子等的浓度；
3.如果需要的话,需要明胶包被.
1新生大鼠鼠龄的选择新生大鼠心肌细胞在出生后3 d内具有部分的增殖能力，成年大鼠心肌细胞则为终末分化细胞，不再具有分裂增殖能力.因此，大鼠出生时间越短，其心肌细胞分离后成活率越高，越容易贴壁生长.大量观测表明，选择1~3 d龄大鼠分离其心肌细胞进行原代培养较为理想.其中尤以半日龄大鼠心肌细胞培养效果最佳.
2消化酶的选择及使用
新生大鼠心肌细胞的分离可采用组织块法和消化法，前者因不易获得密度均一的细胞且难控制成纤维细胞的生长而较少采用.消化法中常使用的酶有3种：胰蛋白酶、胶原酶I或Ⅱ以及透明质酸酶.透明质酸酶多与胰蛋白酶或胶原酶联合应用.胰蛋白酶作用较强，容易造成心肌细胞损坏.胶原酶作用较缓和，能消化细胞间质中的胶原纤维以释放细胞，对细胞损伤小，且在新生大鼠心肌组织，以胶原I为主,故我们选用胶原酶I.文献报道胶原酶的工作浓度一般在0.6~1 g・L1,我们使用的为0.8 g・L1.胶原酶最好现用现配.
3消化程度的把握
新生大鼠心肌细胞对酶消化极为敏感.消化过度可使肌原纤维出现萎缩，细胞死亡率增加或丧失贴壁能力及搏动能力;消化不足，细胞聚集成团，无法分清细胞边界，难以形态学观测.消化过程中使用磁力搅拌器时应注意1)转速一般控制在60~80 r・min1左右.(2)每次消化的时间须结合消化酶浓度确定.(3)将粘附在搅拌子上的心肌组织吹散，使酶液充分接触组织.(4)适宜温度为35~37℃.(5)当组织由红转白呈半透明状态时，应停止消化.
4接种的细胞密度
心肌细胞接种密度不仅影响细胞间的相互接触，进而影响细胞对肥大刺激的反应，而且影响长期培养细胞的成活率.接种细胞的绝对数量应经精确计算.一般而言，应根据实验的观测目的决定单位面积上的细胞数量.例如，如作形态学观测,六孔板中每孔的接种细胞数量应控制在1×105~2×105个;若需收获心肌细胞作mRNA或蛋白表达水平的观测，则每孔的接种密度可增加到5×105~6×105个.
就好像撒一撮芝麻在培养基那么大的地方上，我们不能知道它会怎么落。
