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The PromoCell DetachKit 2 was developed for very gentle detachment of primary human cells in culture. It contains less trypsin and EDTA than the standard DetachKit and is suited for applications, which require very gentle cell handling.
The DetachKit 2 is optimized for primary human cells but can also be used for primary animal cells and cell lines.
PromoCell DetachKit 2 was designed for the safe and efficient detachment of primary human cells in routine subculturing. DetachKit 2 is especially valuable for more sensitive cell types. Each DetachKit consists of three components: HEPES BSS (HEPES buffered Balanced Salt Solution), Trypsin/EDTA Solution and TNS (Trypsin Neutralization Solution). The DetachKit 2 comes with a Trypsin/EDTA ratio of 0.025%/0.01%.
HEPES BSS contains 30 mM HEPES, D-Glucose, NaCl, KCl, Na-Phosphate and Phenol Red. TNS contains 0.05% Trypsin Inhibitor from soybean and 0.1% Bovine Serum Albumin.
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各位大神们，我的课题实验需要提取临床患者抗凝外周血的血浆进行冻存和后续研究，由于血样珍贵，老板让我把离心提取血浆之后所剩的沉淀也加以利用，从剩下的沉淀（血细胞）当中提取出白细胞并冻存，用于之后做western。我用自己的外周血标本试做了一下，5mlEDTA抗凝外周血，3000rpm4℃离心10min后，取上层血浆分装-80冻存用于相关ELAISA实验，然后在下层沉淀（血细胞）中加入3倍体积的溶血剂，静置10min使红细胞裂解之后离心，结果并没有明显的分层，我重复了加溶血剂裂解红细胞并离心的步骤，到最后的结果还是只能达到如图所示。可以看到一层灰白色物质，但无法完全分离提取白细胞，所以想请教各位大神：①我的操作中有哪些错误烦请大家指出；②我用的溶血剂是OptilyseC的溶血剂，是否是试剂的问题？是否需要购买专门的红细胞裂解液，或者自行配制？③为什么裂解红细胞之后分层并不明显，多次离心之后还是分不清楚？④如果可以提取出白细胞，是否可以直接加入冻存液将白细胞-80℃冻存用于之后的研究（主要是Western，不影响细胞内蛋白即可）？因为是第一次做实验，血样珍贵，这种处理方法做过的人也很少，烦请有经验的各位批评指正，向大家虚心请教学习，不胜感激！
一、试验原理
细胞培育可分为原代培育和传代培育。直接从体内获取的安排细胞进行初次培育为原代培育；当原代培育的细胞增殖到达必定密度后，则需求做再培育，即将培育的细胞涣散后，从一个容器以1：2或其他比率转移到另一个或几个容器中扩大培育，为传代培育，传代培育的累积次数即是细胞的代数。
细胞冻存及复苏的基本原则是慢冻快融，试验证实这么能够最大极限的保留细胞生机。现在细胞冻存多选用甘油或DMSO作保护剂，这两种物质能进步细胞膜对水的通透性，加上缓慢冷冻可使细胞内的水分渗出细胞外，削减细胞内冰晶的构成，然后削减因为冰晶构成形成的细胞损害。复苏细胞应选用敏捷消融的方法，这么能够确保细胞外结晶在很短的时间内即消融，防止因为缓慢消融使水分渗入细胞内构成胞内再结晶对细胞形成损害。
二、试验办法
资料：
小鼠，生理盐水，100ml灭菌烧杯，15ml离心管，培育皿，滴管，无菌镊子、剪刀，筛网，泡沫板，大头针，酒精灯，培育瓶，培育液，PBS，0.25%胰酶，超净工作台、二氧化碳培育箱、倒置显微镜，显微镜，计数板，离心机，恒温水浴箱，冰箱（4℃、-20℃、-70℃），液氮罐，冻存管，冻存液，废液缸等。
办法：
（1）原代培育：
1.取出小鼠后沥干酒精，放入超净台内，固定在泡沫板上。
2.用镊子提起肌肤，用解剖剪剪开肌肤一个横切断，将肌肤向上扯开，然后剪开肌肉等，暴露出腹腔，在左边找到脾脏，用弯头眼科镊取出脾脏，置于无菌培育皿中。
3.用生理盐水将取出的脾脏清洁屡次，并除掉剩余无用的安排。
4.将筛网置于平皿中，脾脏置于筛网上，用弯头镊镊住，悄悄在筛网上进行碾磨，一起不断滴加不含血清的培育液冲刷。
5.将碾磨好的细胞悬液吸入至离心管中，离心(1000rpm,5min)，吸去上清（去掉血液等）。
6.参加10ml培育液，吹打混匀，取样计数。
7.将稀释好的细胞悬液分装于培育瓶中，悄悄摇晃混匀，在培育瓶上。
面做好象征，注明细胞、组别及日期。然后将培育瓶置于二氧化碳培育箱中培育。
（2）传代培育：
1.倒置显微镜下调查细胞形状，确定细胞是不是需求传代。
2.培育液瓶打开后，过酒精灯火焰，置酒精灯火焰周围。
3.拿出直头滴管，套上橡皮吸头，过火，放入培育液瓶中。
4.打开培育瓶，瓶口过火，将培育瓶内的培育液悄悄倒入废液缸，用2-3mLPBS洗去残留的旧培育基。
5.培育瓶参加0.25%胰酶，用量以薄薄盖满一层为宜，37℃消化，倒置显微镜下调查到细胞收回突起变圆时当即翻转培育瓶，使细胞脱离胰酶，然后将胰酶倒掉，参加少数的含血清的新鲜培育基。
6.取弯头滴管重复吹打细胞使其脱壁并涣散，再依据分传瓶数补加必定量的含血清的新鲜培育基，制成细胞悬液，然后分装到新培育瓶中。盖上瓶盖，适度拧紧后再稍反转，以利于CO2气体的进入，将培育瓶放回CO2培育箱。
7.对半贴壁培育细胞，不需胰酶，直接吹打，参加新鲜培育基，然后分装到各瓶中。
（3）冻存：
1.汲取传代后的细胞悬液，离心，去掉培育液，参加冻存液，分装冻存管（冻存管内细胞数目通常为（5～10）×106个/ml，2ml冻存管中通常放1～1.5ml细胞）。
2.按步冻存
o冷冻保留办法一：规范的冻存程序为降温速率-1～-2℃/min；当温度达-25℃以下时，可增至-5～-10℃/min；到-100℃时，则可敏捷浸入液氮中。
o冷冻保留办法二：冷冻管置于已设定程序之程序降温机中每分钟降1～3℃至-80℃以下，再放入液氮长时间保留。
（4）复苏：
1.取出冷冻管，当即放入37℃水浴箱中敏捷冻结，轻摇冷冻管使其在1分钟内悉数消融，移入无菌操作台内。
2.打开冻存管，将细胞悬液吸到离心管中。
3.1000rpm离心10分钟，弃去上清液。
4.加恰当培育液后将细胞转移至培育瓶中，37℃培育，第二天调查成长状况。
三、试验成果核算
1.一只小鼠可获得（1～2.5）×108个脾细胞。
2.细胞接种后通常几小时内就能贴壁，并开端成长，如接种的细胞密度适合，5天到一星期即可构成单层。
3.通常状况，传代后的细胞在2小时左右就能附着在培育瓶壁上，2～4天就可在瓶内构成单层，需求再次进行传代。
四、留意事项
1.选材要求新鲜，无菌，解剖小鼠时，留意不要损害脾脏及其周围的脏器，尤其是肠道等，防止污染脾脏。
2.冲刷脾脏时要尽量洗净血污，去掉无用安排，并要防止安排枯燥。
3.碾磨后及时用清水冲刷筛网，防止安排、细胞堵塞网孔。
4.计数前，留意吸尽平皿里的细胞，充沛混匀，使细胞分散成单个细胞。
5.试验操作应在操作台中心无菌区域内进行，勿在边缘非无菌区域操作。
6.金属器械不能在火焰中烧的时间过长，烧过的金属镊要待冷却后才干挟取安排，防止构成安排损害。
7.另外胶塞过火焰时也不能时间长，防止烧焦发生有毒气体，损害培育细胞。
8.汲取过营养液后的吸管不能再用火焰炙烤，因残留在吸管头中营养液能烧焦构成炭膜，再用时会把有害物带入营养液中。
9.不能用手触及已消毒器皿瓶口、瓶塞内部，吸管前部等一切可能与细胞触摸的有些，如已触摸，要用火焰炙烤消毒或取备品更换。
10.敞开、封闭长有细胞的培育瓶时，火焰灭菌时间要短。防止因温度过高烧死细胞。
11.换液时倾倒废液，瓶口不能触摸废液缸，速度不能过快，防止废液四溅。
12.吹打细胞时，要留意边角的细胞是不是吹打下来。
13.手或相对较脏的物品不能通过敞开的瓶口上，即不可以在敞开容器上方操作。
14.每次操作只处理一株细胞，防止构成细胞穿插污染。
15.留意本身的安全，关于来自人源性或病毒感染的细胞株应格外当心。操作过程中，应防止引起气溶胶的发生，当心有毒性试剂例如DMSO，并防止尖利物品伤人等。
16.从增殖期到构成细密的单层细胞曾经的培育细胞都可以用于冻存，但最佳为对数成长期细胞。在冻存前一天最佳换一次培育液。
17.将冻存管放入液氮容器或从中取出时，要做好防护作业，防止冻伤。
18.冻存和复苏最佳用新配制的培育液。
但在干冰或-70℃冰箱中保存的细胞，活力下降很快，当然细胞与细胞之间敏感性不同。有实验验证保存在-70℃冰箱中的细胞6个月后活力损失超过50%。ATCC证明在干冰中人类细胞4个月活力损失殆尽，小鼠的细胞可到6个月。
