根据调亡形态学特征的检测方法 1)苏木素-伊红染色(HE染色法) 石蜡组织切片的HE染色 1.取材组织块,经固定后,常规石蜡包埋,4μm切片。 2.切片常规用二甲苯脱蜡,经各级乙醇至水洗:二甲苯(I)5min→二甲苯(Ⅱ)5min→100%乙醇2min→95%的乙醇1min→80%乙醇1min→75%乙醇1min→蒸馏水洗2min。 3.苏木素染色5min,自来水冲洗。 4.盐酸乙醇分化30s(提插数下)。 5.自来水浸泡15min或温水(约50℃)5min。 6.置伊红液2min。 7.常规脱水,透明,封片:95%乙醇(I)min→95%乙醇(Ⅱ)1min→100%乙醇(I)1min→100%乙醇(Ⅱ)1min→二甲苯石碳酸(3:1)1min→二甲苯(I)1min→二甲苯(Ⅱ)1min→中性树脂封固。 2)甲基绿-派诺宁染色法 1.新鲜取材组织固定液中4℃固定3~6小时。 2.直接转入95%乙醇脱水和无水乙醇脱水,二甲苯透明,石蜡包埋。 3.切片经二甲苯脱蜡,梯度乙醇水化至蒸馏水。 4.置染色液中室温下染片约1h。 5.取出切片,不经水洗,用滤纸吸干多余染液。 6.插入丙酮中迅速分化。 7.转入丙酮二甲苯(1:1)稍洗。 8.二甲苯透明2~3次。 9.中性树胶封固。 3)Giemsa染色 1.收集细胞(1×106),PBS洗1次。 3.甲醇固定3~5min。 4.入Giemsa稀释染色液15~30min,冬天在37℃温箱中染色。 6.涂片晾干后用中性树胶封片。 4)瑞氏(Wright)染色 1.收集细胞(1×106),PBS洗1次。 2.用细胞涂片离心机制成细胞涂片。 3.甲醇固定3~5min。 4.用Wright液染色2min。 5.入Wright磷酸缓冲液稀释液4~10min,然后用蒸馏水冲洗。此时如果颜色较深,可0.08%醋酸分化数秒钟。 6.直立晾干后,用中性树胶封固。 二、透射电子显微镜观察方法 1)透射电镜样本的取材和固定 培养细胞的取材和固定 1.常规收集帖壁和悬浮细胞,置离心管中离心,800~1000r/min,10min。 2.用0.01mol/LPBS5ml重悬细胞。 3.将细胞悬液吸入有琼脂空槽的离心管中。 4.离心,2000r/min,15~20min,使细胞成团。 5.小心吸去上清,加入2.5%戊二醛固定液固定细胞团,以免细胞团散开。 6.取出离心管内的琼脂,仔细切下尖槽内含有细胞团的琼脂块。 7.将含细胞的团琼脂块投入含戊二醛固定液的小瓶中,4℃(可长期)保存。 8.用0.1mol/LPBS缓冲液洗1次。 9.1%锇酸后固定30~60min。 三、荧光显微镜观察方法 1)吖啶橙染色法 1.制备活细胞悬液,浓度约为107/ml。 2.取95μl的细胞悬液,加5μl的吖啶橙贮存液混匀。 3.吸一滴混合液点洁净玻片上,直接用盖玻片封片。 4.荧光显微镜选用激发滤片BG12或BV等,阻断滤片用515nm或SP3。 2)Hoechst33258染色法 2.细胞固定液4℃固定5min。 3.蒸馏水稍洗后,点加Hoechst33258染色液,10min。 4.蒸馏水洗片后,用滤纸沾去多余液体。 5.封片剂封片后荧光显微镜观察。 3)Hoechst33342染色法 1.将Hoechst33342加入培养的细胞中,终浓度为10μg/ml37℃孵育30min。 2.4%的多聚甲醛和培养液以1:3混合,使多聚甲醛的浓度为1%,固定细胞5~10min。 3.固定好后,将细胞悬液涂在载玻片加盖玻片。 4.荧光显微镜激发滤片选用UV激发滤片,阻断滤片为400~500nm。 以上是先将细胞染色后再行固定观察的方法,也可先固定后染色: 1.收集(0.5~3.0)×106个细胞,500~1000r/min,离心5min去上清。 2.PBS洗1次,500~1000r/min,离心5min去PBS。 3.用3%多聚甲醛50μl重悬细胞,室温下固定10min。 4.PBS洗1次,500~1000r/min离心5min去PBS。 5.用15μl的Hoechst33258或33342重悬细胞,终浓度为16μg/ml,孵育15min。 6.取10μl放在玻片上,荧光显微镜下观察,可数500个细胞,计算调亡率。