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所谓基因表达，就是从DNA到mRNA再到蛋白的一个过程，基因表达水平一般是通过该基因转录的mRNA的多少来衡量的。每个基因转录产生的mRNA的量，是受到时空等多种因素调控的，个体在不同的生长发育阶段，或者不同的组织水平，基因转录出mRNA的量都是不一样的。例如，当某种植物长期生长在高盐的环境里，该植物体内与抗盐相关的基因的表达量就会增加，以适应这种高盐环境，是植物能够生存下来，这时植物抗盐相关的基因表达水平就相对高，希望我的回答能够帮你弄清这个问题，呵呵！

我正在准备制备细胞样品用于检测凋亡的DNAladder，不知道DNAladder的DNA提取与普通的DNA提取有无不同之处，可否用tripure或者一般的DNA提取试剂盒提取细胞的DNA用于凋亡的DNAladder检测吗？也就是可不可以不用专用的用于凋亡检测的DNAladder提取试剂盒？

目前abi的是比较好的

请教DOP-PCR和ALU-PCR在扩增BAC/PACDNA制备探针文库时的优劣，或者说都可以。

装试剂的盒子按方法可以分为普通PCR试剂盒（定性）,荧光定量PCR试剂盒（定量）.荧光定量PCR试剂盒根据染料又分为SYBEGREEN法,探针法,等.
根据模板的类型分为DNA类PCR试剂盒和RNA类PCR试剂盒
PCR mix厂家：普洛麦格公司,QIAGEN公司,罗氏公司,TAKARA公司.
成品PCR试剂盒厂家：深圳匹基,上海之江,中山达安,上海科华,上海复星.

构建部分基因文库为什么要用CDNa而不用dna
基因组文库用dna还是rna

DNA提取试剂盒是根据氯化芐法构建的，能够从样本中提取基因组DNA的试剂盒。氯化苄具有能将含有纤维素等的细胞壁中的羟基苄基化，从而破坏细胞壁的特性。本制品利用了氯化苄的这一特性，将植物样品冻结融解后，再使用Pipet Tip的尖端将植物样品在Microtube壁上数次按压即可破坏细胞壁。本法与传统方法相比，省去了液氮研磨等烦琐步骤，有利于一次性处理大量样品。而且，本制品经过了改良，热处理时间只需15分钟，使用本制品从实验开始至水相回收只需30分钟时间。得到的基因组DNA可以进行PCR扩增及限制酶处理等。

各位战友：

样本：从沸水煮过的中药上清
目的：提取DNA并进行PCR检测

问题：
（1）这样的样本中DNA应该会大部分降解，仅有痕量保留，能否推荐一些痕量DNA提取或检测的试剂盒？
（2）Qiagen的法医级别试剂盒有人用过吗？效果如何？
（3）这样的实验战友们有成功的案例吗？

非常感谢！

求助大神：有人提过柔嫩**尔球虫的DNA吗？要求是能构建出文库的，一般文献记载的都是跑PCR就可以了，质量不够。我需要能构建文库的。
不要RNA，不要CDNA文库，就要DNA文库！
好人一生平安，大神帮帮忙！

规格50T售价300，规格100T售价560。以下为试剂盒使用方法及介绍。保存：室温(15℃-25℃) 干燥保存，复检期12个月，2℃-8℃保存时间更长。试剂盒内容： 向左转|向右转产品简介：本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统，提取细菌基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料，能够高效专一吸附DNA，可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。操作步骤：使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶体上的标签。 所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。1、取细菌培养液1ml，12000rpm离心1min.，尽量吸除上清。2、向菌体中加入200ul溶液A，振荡或用移液器吹打使菌体充分悬浮（如果是革兰氏阳性菌，可在此步骤加入终浓度为20mg/ml的溶菌酶），向悬浮液中加入20ul的RNase A (10mg/ml)，充分颠倒混匀，室温放置15-30min。3、向管中加入20ul的蛋白酶K(10mg/ml)，充分混匀，55℃消化30-60min，消化期间可颠倒离心管混匀数次，直至样品消化完全为止，此时可见菌液呈清亮粘稠状。4、向管中加入200ul溶液B，充分颠倒混匀，如出现白色沉淀，可于75℃放置15-30min，沉淀即会消失，不影响后续实验。如果溶液未变清亮，说明样品消化不彻底，可能会导致DNA的提取量以及纯度降低，还可能堵塞吸附柱。5、向管中加入200ul无水乙醇，充分混匀，此时还可能会出现絮状沉淀，不影响DNA的提取，可将溶液和絮状沉淀都加入到吸附柱中，静置2min。6、12000rpm离心2min.弃废液，将吸附柱放入收集管中。7、向吸附柱中加入600ul漂洗液(使用前请先检查是否己加入无水乙醇)。12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。8、向吸附柱中加入600ul漂洗液，12000rpm离心l min， 弃废液，将吸附柱放入收集管中。9、12000rpm离心2min，将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续实验如酶切、PCR等。10、将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加50-200ul经65℃水浴预热的洗脱液，室温放置5min，12000rpm离心1min。11、离心所得洗脱液再加入吸附柱中，室温放置2min，12000rpm离心2 min，即可得到高质量的细菌基因组DNA。注意事项:1、样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。2、若试剂盒中的溶液出现沉淀，可在65℃水浴中重新溶解后再使用，不影响提取效果。3、如果实验中的离心步骤出现柱子堵塞的情况，可适当延长离心时间。4、洗脱缓冲液的体积最好不少于50ul，体积过小会影响回收效率；洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响，若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围)，pH值低于7. 0会降低洗脱效率。DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。5、DNA浓度及纯度检测：得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。 回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1.0相当于大约50μg/ml双链DNA、40μg/ml单链DNA。OD260/0D280比值应为1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用去离子水，比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

我以前溶解DNA、PCR产物用的一直是fermentas的PCR酶带的一些nuclear-free的水。
现在..用完了..因为接下来的PCR产物会做酶切，测序，而且保存时间也可能比较长（1个月左右吧）。
Qiagen的DNA提取试剂盒中提到过溶解DNA不可以用酸性的水，会发生水解。但是超纯水机出来的水确实是酸性的...再高压过估计也不会改变。该怎么制备呢?

效果好的话当然是promega或者omega的，不过会贵很多 都是美国佬的东西
便宜点的就是国产的tiangen，效果会差一点点 如果是大样本的全血 用这个也凑合