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品牌 / 
Paratechs
货号 / 
60010
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The NSET™ Device is manufactured in the USA by an FDA Registered Medical Device Manufacturer and ISO 13485:2003 Registered Company and is EtO (Ethylene Oxide) sterilization processed. Patent Information: Non-Surgical Embryo Transfer Method and Apparatus, United States Patent 9,615,903.[PDF]

A video demonstrating the use of the NSET device for mice can be found below.

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Non-Surgical Embryo Transfer Device for Mice

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Product number: 60010 10 Devices/box1-9 boxes = $250 ea.10-49 boxes = $225 ea.50+ boxes = $200 ea.

The NSET Demonstration VideoThe demonstration video can be downloaded. This video demonstrates how easily mouse uterine embryo transfer can be accomplished using the NSET™ (Non-Surgical Embryo Transfer) Device for Mice.

ParaTechs’ Non-Surgical Embryo Transfer (NSET™) Device revolutionizes mouse uterine embryo transfer by reducing cost and eliminates the need for animal anesthesia and recovery normally required for conventional surgical procedures.

Uses

•Embryo transfer after DNA microinjection•ES cell chimeric blastocyst transfer•Cryopreserved embryo transfer•Embryo transfer after in vitro fertilization•Embryo transfer for rederivation•Pathogen or material transfer to uterine horn•Sperm transfer for artificial insemination (AI)

Advantages

•Eliminates the pain and distress of surgery•No anesthesia required•Eliminates need for post-surgical monitoring of animals•Reduces regulatory burden by eliminating need to justify survival surgery•Eliminates surgical instruments and time-consuming pre- and post-surgical processes•Greatly reduces time required to become proficient in embryo transfer or artificial insemination (AI)•Reduces costs of embryo transfer•Reduces costs of artificial insemination (AI)

Compare this methodology with the time, expense, and training required to accomplish the same task with other methods and you will discover it is humane, quick and cost effective.

• NSET Technical Support Letter [PDF Only]

• NSET Instructions [PDF] REVISED JAN2016

• NSET Helpful Hints [PDF] REVISED JAN2016

• NSET Frequently Asked Questions [PDF] REVISED JAN2016

• NSET Publications

• NSET Presentations

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4 × Protein Native PAGE Loading Buffer 1 ml × 2支 □ 4 × Protein Native PAGE Loading Buffer组成 Tris-HCl pH8.0 (25℃) 40 mM Glycerol 40% Bromophenol Blue 0.032% 查看更多>
北京索宝生物科技有限公司在发布的荧光蛋白上样缓冲液供应信息,浏览与荧光蛋白上样缓冲液相关的产品或在搜索更多与荧光蛋白上样缓冲液相关的内容。 查看更多>
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2021-07-24
DNA是真核生物的遗传物质,由脱氧核苷酸组成。它是双链互补螺旋结构,定向酶切技术就是用限制性内切酶去切割DNA片断,由于酶具有专一性,一种酶只能识别一种特定的脱氧核苷酸序列,所以可以用特定的这种酶去切割相应的DNA片断,进而达到定向切割的目的。... 查看更多>
品牌名称:gibco磷酸缓冲液(PBS) http://www.aatbio.com.cn/goodsid/fenleiyi/3200092_gibco/1.html附加信息:gibco磷酸缓冲液(PBS)上海通善供应,全系列细胞,大量备货,品种齐全,提供专业、权威、快速、高效、放心服务、gibco磷酸缓冲液(PBS)更多详情咨询021-33779006021-61806666 86220963。型号:gibcohttp://www.a 查看更多>
loading buffer 的中文名字叫上样缓冲液,6*的缓冲液中可以显示两条带,前面的紫兰色的条带是溴酚蓝,在0.6%、1%、1.4%和2%琼脂糖凝胶电泳中,溴酚兰的迁移率分别与1Kb、0.6Kb、0.2Kb和0.15Kb的双链线性DNA片段大致相同;后面的兰色条带是二甲苯青,它在1%和1.4%琼脂糖中电泳时,其迁移速率分别与2Kb和1.6Kb的双... 查看更多>
LowCross-Buffer® 能够最大限度的减少以下因素的干扰: 人抗小鼠抗体(HAMA) 类风湿因子(RF) 基质效应(matrix effects) 干扰经常是由人抗小鼠抗体(HAMA),类风湿因子(RF)以及高含量的胆红素,甘油三酯等引起的。这些干扰不可能完全由HAMA阻断剂处理。HAMA阻断剂只对HAMA有效果。相比之下,LowCross-Buffer® 作为一... 查看更多>
上海联硕生物科技有限公司在发布的EZ-Vision™ Two DNA染料EZ-VISION® TWO, DNA DYE AS LOADING BUFFER 6X Amresco代理货号N650-KITcas:供应信息,浏览与EZ-Vision™ Two DNA染料EZ-VISION® TWO, DNA DYE AS LOADING BUFFER 6X Amresco代理货号N650-KITcas:相关的产品或在搜索更多与EZ-Vision™ Two DNA染料EZ-VISION® TWO, DNA DYE 查看更多>
焦作路非凡生物科技有限公司在发布的等电聚焦蛋白电泳(IEF)2倍上样缓冲液供应信息,浏览与等电聚焦蛋白电泳(IEF)2倍上样缓冲液相关的产品或在搜索更多与等电聚焦蛋白电泳(IEF)2倍上样缓冲液相关的内容。 查看更多>
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缓冲液的pH值与该酸的电离平衡常数K及盐和酸的浓度有关.酸和盐浓度相等时,溶液的pH值与PK值相同.酸和盐浓度等比例增减时,溶液的pH值不变.酸和盐浓度相等时,缓冲液的缓冲效率为最高.
不可以通用。
蛋白质上样缓冲液中的SDS和DTT分别可以屏蔽蛋白质电荷以及破坏二硫键,避免形成多聚体。
DNA上样缓冲液主要是起沉降和指示作用,不可用于蛋白,否则会影响蛋白相对分子量定量。
同样蛋白上样缓冲液中的tris-HCl浓度过高也会使溴酚蓝条带扭曲。
不太好操作,里面有小分子的SDS、β巯基乙醇,较难浓缩,不是有4X的买么,还可以自己配啊,网上都有现成的配方,溴酚蓝、SDS、β巯基乙醇。。。
在《分子克隆》上看见检测微量的DNA可以使用先电泳,再用含EB的电泳缓冲液染色30至45分钟。
我使用的是1%琼脂糖凝胶,电泳缓冲液为0.5×TBE。
请问各位大虾,在不影响实验结果的前提下,这样的含EB的电泳缓冲液可以反复使用多少次?

谢谢^_^
缓冲物质更重要。
由弱酸及其盐、弱碱及其盐组成的混合溶液,能在一定程度上抵消、减轻外加强酸或强碱对溶液酸碱度的影响,从而保持溶液的pH值相对稳定。这种溶液称为缓冲溶液。
① 电泳分离4种核苷酸时应取pH3.5 的缓冲液,在该pH时,这4种单核苷酸之间所带负电荷差异较大,它们都向正极移动,但移动的速度不同,依次为:UMP>GMP>AMP>CMP;
  ② 应取pH8.0,这样可使核苷酸带较多负电荷,利于吸附于阴离子交换树脂柱。虽然pH 11.4时核苷酸带有更多的负电荷,但pH过高对分离不利。
  ③ 当不考虑树脂的非极性吸附时,根据核苷酸负电荷的多少来决定洗脱速度,则洗脱顺序为CMP>AMP> GMP > UMP,但实际上核苷酸和聚苯乙烯阴离子交换树脂之间存在着非极性吸附,嘌呤碱基的非极性吸附是嘧啶碱基的3倍。静电吸附与非极性吸附共同作用的结果使洗脱顺序为:CMP> AMP > UMP >GMP。
配制缓冲溶液常用方法有:
1、根据所需求的酸碱性选择合适的缓冲对,若是配制酸性缓冲液就选择弱酸与弱酸盐缓冲对;若是配制碱性缓冲液就选择弱碱与弱碱盐缓冲对。
2、根据所需要控制的PH范围以及弱酸和弱碱的解离常数(pKa/pKb)选择具体的共轭酸碱对,公式为PH=pKa±1=(14-pKb)±1。
3、根据公式计算缓冲溶液的组分比,酸性缓冲液PH=pKa-lgc酸/c盐,碱性缓冲液PH=14-pKb+lgc碱/c盐。
4、根据共轭酸碱对以及其组分比配制缓冲液,方法同普通溶液。
举例:试配制一种缓冲液,体积为1L,PH能维持在10.25左右。
a、依题意选择弱碱与弱碱盐的共轭对;
b、由PH=(14-pKb)±1,算出pKb在3.75与4.75之间,查弱碱的解离常数表可知氨水(pKb=4.75)符合要求,故可选择NH3-NH4Cl体系;
c、由PH=14-pKb+lgc碱/c盐,算出c(氨水)/c(氯化铵)=10;
d、设氨水的浓度为10mol/L,则氯化铵的浓度为1mol/L,所以在浓度为10mol/L体积为1L的氨水中加入1mol的氯化铵即可。

实验小白刚刚起步,一般采用等质量上样的方法,但我算的上样量是没加缓冲液之前的,加完缓冲液蛋白样品浓度会变么?师姐说不会变,就按照算好的上样量加就行。

前几天提的样按50ug算每个样本的上样量也只有上5ul左右,按师姐说的就那么上了,结果发完光只有内参有条带,目标蛋白一点也没有,但以前做过一次是出过一点趋势的,而且这次整个过程感觉做的很仔细,发完光结果也很干净整齐,所以我在想是不是跟上样量有关系?上样缓冲液加入之后会使样本浓度稀释五倍么,这样的话上样量就得乘5。

变性前后加上样缓冲液的区别是什么呢?哪一种会改变蛋白浓度从而改变上样量呢?


同仁好,我想请教一下大家,6Xloddingbuffer1%琼脂糖凝胶电泳TBE缓冲液,5ul
DNA样品和1ul上样缓冲液怎么就是跑不出主带啊?都是弥散带,给点建议我哪里有问题啊?
如何选择缓冲溶液?_123
sweetwater2021-07-21
做试验的时候用到很多种缓冲液,Tris,triethanolamine,HEPES,还有磷酸缓冲液,不知道这些缓冲液之间有没有大的区别,选择缓冲液的依据是什么?

如果只是为了缓冲酸碱度,是不是可以用一种缓冲液来代替所有其他的?这样做试验就方便多了。谢谢指教
缓冲溶液的配置方法 123
xiaoliu062018-01-24
20mmol/L的巴比妥钠(Barbital-Na2,pH8.3,0~4℃)缓冲液,这是要求,谢谢
最近刚开始跑SDS-PAGE,很奇怪,加样后,Marker和样本停在加样孔不往下面跑!且跑电泳时,电压(80V)一直上不去,后测电泳液PH值,不到8.0,这是主要原因吗?

如需调PH,是用NaOH吗?