| InputType: | Cells |
| ResearchArea: | DNAMethylation |
| TargetApplication: | Immunoprecipitation |
| VesselFormat: | 96-WellPlate |
| 100%Guarantee: | 6months |
Pleaseseethe MethylampDNACaptureKit ifyouareworkingwithpurifiedDNAasthestartingmaterial.
The EpiQuik™MethylatedDNAImmunoprecipitation(MeDIP)Kitisacompletesetofessentialcomponentswhichusesaproprietaryanduniqueprocedure/compositiontoenrichmethylatedDNAfromcells.Intheassay,anantibodyspecifictomethylcytosineisusedtoimmunoprecipitatemethylatedgenomicDNA.TheimmunoprecipitatedmethylatedfractionscanbethenusedforastandardDNAdetection.ThekitissuitableforcombiningthespecificityofmethylatedDNAimmunoprecipitationwithqualitativeandquantitativePCR,andsouthernblotaswellasDNAmicroarray.Thekithasthefollowingadvantages:
- DirectlyimmunoprecipitatethemethylatedfractionsofDNAfromcelllysates.
- HighlyefficientenrichmentofmethylatedDNA:>95%.
- Stripmicroplateformatallowsmanualorhighthroughput.
- ConvenientlyincludescolumnsforDNApurificationinordertosavetimeandreducelabor.
- CompatIBLewithallDNAamplification-basedapproaches.
- Achievesveryreliableandconsistentassayconditions.
Principle&Procedure
TheEpiQuik™MethylatedDNAImmunoprecipitation(MeDIP)KitcontainsallreagentsrequiredforcarryingoutasuccessfulmethylatedDNAimmunoprecipitationdirectlyfrommammaliancells.Particularly,thiskitincludesaChIP-grade5-methylcytosineantibodyandanegativecontrolnormalmouseIgG.DNAinthecellsisextracted,sheared,andaddedintothemicrowellimmobilizedwiththeantibody.DNAisreleasedfromtheantibody-DNAcomplex,andpurifiedthroughthespecificallydesignedFast-SpinColumn.ElutedDNAcanbeusedforvariousdown-streamapplications.
CP1(WashBuffer)
CP2(AntibodyBuffer)
CP3A(Pre-LysisBuffer)
CP3B(LysisBuffer)
CP4(ChIPDilutionBuffer)
CP5(DNAReleaseBuffer)
CP6(ReverseBuffer)
CP7(BindingBuffer)
CP8(ElutionBuffer)
NormalMouseIgG(1mg/ml)*
Anti-5-Methylcytosine(1mg/ml)*
ProteinaseK(10mg/ml)*
8-WellAssayStrips(withFrame)
8-WellStripCaps
F-SpinColumn
F-CollectionTube
UserGuide
*Formaximumrecoveryoftheproducts,centrifugetheoriginalvialafterthawingpriortoopeningthecap.
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常用流动相加酸碱后PH的总结，希望大家能够提供一点自己测过的结果，谢谢先
1.直接用固体磷酸钠配制成50mM的磷酸钠溶液，再调pH到7.4；（我们试着用这个做了下，发现挂不上柱）
2.配置磷酸钠盐缓冲液：按NaH2PO4：Na2HPO4以19：81的摩尔比配制成pH7.4的缓冲液？（附一张百度出来的配方
）
3.如果是磷酸钠盐缓冲液，可以直接将50mM的NaH2PO4的水溶液用NaOH调成pH7.4吗？
再者，2和3这两个方法配制的磷酸钠盐缓冲液有什么区别？最终效果是一样的吗？如果不一样，有什么理论的知识支撑呢？个人感觉是分析化学中酸碱理论中的缓冲液那里的知识。求帮忙解答这些疑问。
另外，我还想问一下，pH对于Ni柱对His-tagged的蛋白的分离纯化影响大吗？是怎么影响的？谢谢大家了！
有了源数据之后把源数据按照大小排列，
选中源数据区域-->ALT+A1-->选中图标区右键-->更改图表类型-->散点图
因为是考察不同PH对药物的影响，样品又不好改变其PH值，这种情况怎么办？希望有经验的高手指教。
我的流动相是甲醇-水（90：10）
谢谢赐教！
请进子版按格式发贴，自行修改，谢谢。
由弱酸及其盐、弱碱及其盐组成的混合溶液，能在一定程度上抵消、减轻外加强酸或强碱对溶液酸碱度的影响，从而保持溶液的pH值相对稳定。这种溶液称为缓冲溶液。
:)
我在做一细菌不同酸碱度生长状况时,发现这些奇怪现象:pH=3的培养基灭菌(TSB液体培养基)灭菌后pH上升到到9.2!而原来pH=9.0的降到8.7(基本没多少变化),请问各位大侠,这是什么原因?
一般做不同酸碱度生长实验时,该如何才能防止pH在湿热灭菌后基本不变化?
是否可以理解为纯化水得PH范围为6.3-7.6？能否直接用pH计测量？谢谢!
