实验方法原理 | |
---|---|
实验步骤 | 1.主要试剂的的配制 碘化丙锭(PI)染色液(4℃避光保存):Pl,100μg/ml;TritonX-100,1.0%;NaCl0.9%。 2.操作流程 2.1样本的准备 2.1.1培养细胞收集悬浮细胞于Eppendorf管中。贴壁细胞用胰蛋白酶消化后制成单细胞悬液,1000r/min离心5min。 2.1.2新鲜实体组织取材组织用PBS漂洗干净后,浸泡在含PBS的平皿或青霉素小瓶内,用眼科剪尽可能将组织剪碎,吸去上清液,组织块转入大瓶中加入10~20ml酶(200μg/ml胶原酶),37℃消化30min,在不锈钢网上轻轻研磨,使组织和细胞分离,用200目筛网过滤2次。 2.1.3石蜡切片组织切50μm厚切片4张,置玻璃试管中,加二甲苯5ml,脱蜡3×5min,无水乙醇洗3×5min,蒸馏水洗5min,加2ml0.5%胃蛋白酶(pH1.0),振荡消化30min,PBS洗终止消化,最后用200目筛网过滤2次。 2.2染色方法 制备好的单细胞悬液可用70%乙醇固定,4℃保存备用。染色前用PBS稀释单细胞,离心沉淀,弃上清,加入200μlRNA酶A,37℃水浴30min,再加入800μlPI染色液,混匀,4℃避光孵育30min。 2.3上机检测记录 激发波长488nm处红色荧光。 3.结果观察 细胞凋亡时,G1峰左侧出现亚二倍体细胞群的峰型。在光散射图谱上,前向光散射低于正常,侧向光散射高于正常。细胞坏死时,细胞周期中的细胞均出现不同程度的减少,亚二倍体细胞量多少不等。在光散射图谱上,的向光散射和侧向光散射均高于正常。 |
注意事项 | |
其他 |