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- Assay Principle
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Key Benefits
- Highly effective and stable chemiluminescent assay for SEAP.
- Extremely sensitive, detect alkaline phosphatase at attogram level.
- Simple and fast assay-add the reagent directly to your experimental samples. Plate can be incubated and read in 5 min.
- Works for cell culture media and tissue lysates.
Additional information
| Kit Size | 100 |
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Secreted alkaline phosphatase (SEAP) is widely used as a reporter to study gene expression. SEAP is secreted into the culture supernatant of the transfected cell lines. SEAP activity in the culture medium reflects changes in intracellular concentrations of SEAP mRNA and protein. The changes of gene expression can be easily assayed using the same cultures by repeated sampling. Cell Technology’s aCellaTM – SEAP detection kit utilizes a Chemiluminescent-based assay technique to detect SEAP reporter gene expression. It provides an extremely sensitive tool to quantitate SEAP and analyze transcriptional and promoter activity in transfected cells.
In the assay, a chemiluminescent substrate was used to detect the Secreted Alkaline Phosphatase in cell culture. The stabilized 1, 2-dioxetane substrate provide high signal to noise ratio, wide dynamic range, rapid results and excellent reproducibility. The SEAP enzyme transfers the phosphoryl residue via a phosphoryl-enzyme intermediate. The intermediate is not stable and decomposed and emits light for detection. The assay can detect alkaline phosphatase at attogram level. The kit provides sample material for 100 assays in a 96-well plate format.
Figure 1. Standard curve of Alkaline Phosphatase (AP). 50 µl serial dilutions of AP (Starting dose 100 mU in tubes) were added to the wells of 96-well luminescent plate. 50 µl of Chemiluminescent substrate was added and the plate was read immediately with a luminometer.
Figure 2. Detection of the functional activity of NF-ĸB/SEAP stable reporter cell line. NF-ĸB/SEAP reporter cells (IML-101) were plated in 96-well plates at 50,000 cells/well. After 24 hours of incubation, cells were stimulated with different doses of TNFα for another 24 hours. 50 µl culture supernatant was added to the wells of 96-well white opaque luminescent plate. 50 µl of chemiluminescent substrate was added and the plate was read immediately with a luminometer.
Figure 3. Inhibition of TNFα activity by a quinazoline TNFα inhibitor (EMD Millipore Cat# 545380-34-5) with NF-ĸB/SEAP stable reporter cell line. NF-ĸB/SEAP reporter cells (IML-101) were plated in 96-well plates at 50,000 cells/well. After 24 hours, 10 ng/ml of TNFα and different dose of TNFα inhibitors were added into each wells. Cells were incubated at 37°C for 24 hours. 50 µl culture supernatant was added to the wells of 96-well white opaque luminescent plate. Then 50 µl of Chemiluminescent substrate was added and the plate was read immediately with a luminometer.
| Document Title |
| aCellaSEAPProtocol |
ebiomall.com
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免疫组化，是应用免疫学基本原理——抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质），对其进行定位、定性及定量的研究，称为免疫组织化学技术或免疫细胞化学技术。
1. 免疫荧光细胞化学技术把已知抗体标上荧光素,以此作为探针检查细胞或组织内的相应抗原,在荧光显微镜下观察.当抗原抗体复合物中的荧光素受激发光的照射后会发出一定波长的荧光,从而可以确定组织中的抗原定位或定量。2. 免疫酶细胞化学技术是目前免疫组织化学研究中最常用的技术．基本原理是先以酶标记的抗体与组织或细胞作用，然后加入酶的底物，生成有色的不溶性产物或具有一定电子密度的颗粒，通过光镜或电镜，对细胞或组织内的相应抗原进行定位或定性研究。3.免疫胶体金技术就是用胶体金标记一抗，二抗或其他的能特异性的结合免疫球蛋白的分子（如葡萄球菌A蛋白）等作为探针对组织或细胞内的抗原进行定性，定位或定量研究．由于胶体金的电子密度高，多用于免疫电镜的单标记或多标记的定位研究。
荧光素是具有光致荧光特性的染料，荧光染料种类很多。目前常用于标记抗体的荧光素有以下几种：异硫氰酸荧光素，四乙基罗丹明，四甲基异硫氰酸罗丹明，酶作用后产生荧光的物质。
CD133抗原为5次跨膜( 5_transmembrane, 5_TM )糖蛋白。
CD133抗原可被3种CD133抗体识别：克隆AC133、293C3和AC141。AC133直接与CD133/1糖基化抗原表位结合，可用于从外周血、骨髓、脐带血及其它组织中分析和分选CD133+细胞。
多数情况下CD133/1和CD133/2识别同种细胞，只是有表达强度的差别，但是在骨髓增生异常综合征（myelodysplastic syndrome，MDS）和某些急性髓性白血病中发现CD133/1和CD133/2表达不同，或者正常表达强度紊乱。
2．放射免疫检测放射免疫检测技术是目前灵敏度最高的检测技术,利用放射性同素标记抗原（或抗体）,与相应抗体（或抗原）结合后,通过测定抗原抗体结合物的放射性检测结果.放射性同位素具有pg级的灵敏度,且利用反复曝光的方法可对痕量物质进行定量检测.但放射性同位素对人体的损伤也限制了该方法的使用.
3．酶联免疫吸附试验（ELISA）酶联免疫检测是目前应用最广泛的免疫检测方法.该方法是将二抗标记上酶,抗原抗体反应的特异性与酶催化底物的作用结合起来,根据酶作用底物后的显色颜色变化来判断试验结果,其敏感度可达ng水平.常见用于标记的酶有辣根过氧化物酶(HRP)、碱性磷酸酶（AP）等.由于酶联免疫法无需特殊的仪器,检测简单,因此被广泛应用于疾病检测.常用的方法有间接法、夹心法以及BAS－ELISA.间接法是先将待测的蛋白抱被在孔板内,然后依次加入一抗、标记了酶的二抗和底物显色,通过仪器（例如酶标仪）定量检测抗原.这种方法操作简单但由于高背景而特异性较差.目前已逐渐被夹心法取代.夹心法利用二种一抗对目标抗原进行捕获和固定,在确保灵敏度的同时大大提高了反应的特异性.近年来,抗原的定量检测技术也不断推陈出新.近年来,在夹心法ELISA的基础上,开发了多抗原检测试剂盒,能同时检测微量液相样本中多个抗原含量.这项技术的应用大大缩短了诊断的时间,提高诊断的可靠性和及时性.
4．免疫金胶体技术胶体金技术经过30多年的发展到现在已日趋成熟,该方法是将二抗标记上胶体金颗粒,利用抗原抗体间的特异性反应,最终将胶体金标记的二抗吸附于渗滤膜上,此方法简单,快速,广泛应用于临床筛查.
1、直接法：这是最早的方法。其基本原理是用已知的抗体标记上荧光素后成为特异性荧光抗体，染色时将该抗体直接滴在载玻片上进行孵育，使之直接与载玻片上的抗原结合，在荧光显微镜下直接观察，作出判断。该方法评价：简单易行、特异性高、快速方便，常用于肾活检组织几种免疫球蛋白的检测和病原体的检测。但其不足是只能检测相应的一种物质，敏感性较差，效果有时不理想，目前较少作为更多方面的检测。
2、间接法：该法的基本原理是用特异性的抗体与切片中的抗原结合后，继用间接荧光抗体，与前面的抗原抗体复合物结合，形成抗原抗体荧光复合物。在荧光显微镜下，根据复合物的发光情况来确定所检测的抗原。该方法评价：由于结合在抗原抗体复合物上的荧光素抗体增多，发出的荧光亮度强，因而其敏感性强。目前本法应用较广泛，只需制备一种种属荧光抗体，即可适用于多种第一抗体的标记显示。
3、如果你有针对待查抗原一抗（荧光素标记），而且你的待检抗原表达也比较丰富的话，做直接法也未尝不可。不过如果你不具备上述两个条件的话，还是推荐你做间接法。
4、如果你做的是细胞骨架，那么就是用直接免疫荧光。如果是一般的蛋白表达，这个要看有没有试剂是直接标记的；如果没有，还是只能考虑间接荧光。直接荧光相对间接荧光可以避免非特异姓染色，当然步骤也少了些。我做过细胞骨架的直接染色，效果很好。
CD4细胞是人体免疫系统中的一种重要免疫细胞，CD4 主要表达于辅助T（Th）细胞，是Th细胞TCR识别抗原的供受体，与MHCⅡ类分子的非多肽区结合，参与Th细胞TCR识别抗原的信号转导，CD4也是HIV的受体，由于艾滋病病毒攻击对象是CD4细胞，所以其检测结。
T细胞分化抗原测定
【中文名称】
T细胞分化抗原测定
【概述】
T细胞膜表面有100多种特异性抗原，现已制备了多种单克隆抗体，WHO（1986）统称为白细胞分化抗原（cluster differentiation，CD）。例如CD3代表总T细胞，CD4代表T辅助细胞（TH），CD8代表T细胞毒性细胞（TC）等。应用这些细胞的单克隆抗体与T细胞表面抗原结合后，再与荧光标记二抗（兔或羊抗鼠IgG）反应，在荧光显微镜下或流式细胞仪中计数CD的百分率。
【临床意义】
①CD3降低：见于自身免疫性疾病，如SLE、类风湿关节炎等。
②CD4降低：见于恶性肿瘤、遗传性免疫缺陷症、艾滋病、应用免疫抑制剂者。
③CD8减低：见于自身免疫性疾病或变态反应性疾病。
④CD4/CD8比值增高：见于恶性肿瘤、自身免疫性疾病、病毒性感染、变态反应等；CD4/CD8比值减低：见于艾滋病（常<0.5）。
⑤监测器官移植排斥反应时CD4/CD8比值增高预示可能发生排斥反应。⑥CD3、CD4、CD8较高且有CD1、CD2、CD5、CD7增高则可能为T细胞型急性淋巴细胞白血病。本数据来源于百度地图，最终结果以百度地图最新数据为准。
