Monoclonal Antibodies
All antibodies are purified on a Protein A column (Ey et al., 1978)1 using the low-salt method.
The antibodies are supplied at a concentration requiring ~1:1000 dilution for Western blotting. All antibodies are stored in Phosphate Buffered Saline (PBS) pH 7.2. Store at -20°C. (stable for at least 12 months undiluted).
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7F11 Gyr A
This is an IgG2b monoclonal antibody raised against the N-terminal domain of E. coli Gyr A produced from tissue culture supernatant derived from mouse hybridoma cells.
Technical Documents
4D3 Gyr A
This is an IgG2b monoclonal antibody raised against the C-terminal domain of E. coli Gyr A produced from tissue culture supernatant derived from mouse hybridoma cells.
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9G8 Gyr B
This is an IgG2a monoclonal antibody raised against the C-terminal domain of E. coli Gyr B produced from tissue culture supernatant derived from mouse hybridoma cells.
Technical Documents
7D3 Gyr B
This is an IgG2a monoclonal antibody raised against the N-terminal domain of E. coli Gyr B produced from tissue culture supernatant derived from mouse hybridoma cells.
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References
- Ey, P.L., S.J., & Jenkin, C.R. (1978). Isolation of pure IgG1, IgG2a, and IgG2b immunoglobulins from mouse serum using Protein A sepharose. Immunochemistry. 15: 429-436
- Harlow, E. & Lane, D (1988). Antibodies: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory press. Cold Spring Harbor
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科学家发现，细菌在遭遇噬菌体等病毒侵染之后，可以获得其部分DNA（脱氧核糖核酸）片段并整合进基因组形成记忆，当再次遭到入侵时，转录出相应的RNA（核糖核酸），利用其中的“定位信息”引导Cas蛋白复合物定位和切割、彻底地摧毁入侵病毒的DNA。CRISPR／Cas9技术就是利用这一原理，用一种定制的RNA引导Cas，对预设DNA位点进行切割，造成DNA断裂，启动细胞内基因组修复机制，实现基因敲除、特异突变的修复或引入和定点转基因等。
2013 年 1 月份，美国两个实验室在《Science》杂志发表了基于 CRISPR-Cas9 技术在细胞系中进行基因敲除的新方法，该技术与以往的技术不同，是利用靶点特异性的 RNA 将 Cas9 核酸酶带到基因组上的具体靶点，从而对特定基因位点进行切割导致突变。该技术迅速被运用到基因敲除小鼠和大鼠动物模型的构建之中。通过一系列研究，首先证明了通过 RNA 注射的方式将 CRISPR-Cas 系统导入小鼠受精卵比 DNA 注射能更有效的在胚胎中产生定点突变。在此基础上，又发现了该方法没有小鼠遗传品系的限制，能够对大片段的基因组 DNA 进行删除，也可以通过同时注射针对不同基因的 RNA 序列达到在同一只小鼠或大鼠中产生多个基因突变的效果。此外，还证明了利用 CRISPR-Cas 技术构建的基因敲除大鼠模型与传统方法构建的同一基因（肥胖相关 G 蛋白偶联受体 Mc4R）突变大鼠相比具有一致的表型。该方法构建的基因突变动物具有显著高于传统方法的生殖系转移能力，是一种可靠、高效、快速的构建敲除动物模型的新方法。
CRISPR-Cas 技术是继锌指核酸酶（ZFN）、ES 细胞打靶和 TALEN 等技术后可用于定点构建基因敲除大、小鼠动物的第四种方法，且有效率高、速度快、生殖系转移能力强及简单经济的特点，在动物模型构建的应用前景将非常广阔。向左转|向右转
1、过表达目的蛋白，用以检测基因表型；
2、荧光标签标记目的蛋白，用以跟踪其细胞 定位；
3、引入野生型等位基因。
想用RNAiMAX或者lipo2000转染siRNA，但是看了下转染试剂的说明书和锐博的siRNA说明书，觉得分别对siRNA的用量描述差别挺大的呀，不知道到底该参考哪个呢。
以24孔板为例在siRNA说明书中写到，siRNA终浓度是50nM的话，加入浓度为20μM的siRNA1.25ul，每孔体积是500ul，那这样的话，每孔最终siRNA的量是25pmol。
但是在RNAiMAX或者是lipo2000说明书中，一个写的每孔siRNA用量是5pmol，一个是500ng，这与siRNA厂家所提供的量相差也太多了吧。
到底该看哪一个呢。
ps.一旦siRNA的量和体积确定下来之后，转染试剂的量和siRNA1:1的加就可以了吗？
请各位大神解答。
1.siRNA说明书中的用量，红线圈出
2.RNAIMAX说明书中siRNA的用量。
3.lipo2000说明书中siRNA用量
对重复性要求不高的试验，一般没有问题的，只不过可能需要增加一些转染试剂用量了。
为了避免这个问题，推荐收到货之后，进行适当分装，用多少，拿出来多少最好。
将EntransterTM-invivo与AmbioninvivosiRNA(作用于凝血因子VII)和阴性siRNA通过尾静脉注射成年小鼠，2天后，取动物肝脏检测。在mRNA水平和蛋白水平观察干扰效果。见上图，图中最左侧组为对照组注射阴性siRNA为3mg/kg，后边3组为每kg动物注射阳性siRNA量分别为1mg/kg,2mg/kg和3mg/kg情况。
根据推荐用量注射EntransterTM-invivo和siRNA（作用于LaminA/C）和阴性siRNA到成年小鼠。注射后2天收集相应的组织，分离RNA，用qRT-PCR分析LaminA/C基因的表达水平。图4为尾静脉结果，图5为各器官分别局部注射结果。
英格恩生物体内转染试剂，3天可完成动物体内转染实验，让动物干扰，基因敲除实验变得简单、快速有效！
http://www.nature.com/nature/journal/v520/n7546/full/nature14299.html
