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Encapsula/Cationic Liposome (Genesome®) containing DC-Cholesterol (Plain and Fluorescent)/2-ml/gen-7027
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Encapsula/Cationic Liposome (Genesome®) containing DC-Cholesterol (Plain and Fluorescent)/2-ml/gen-7027
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Encapsula
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gen-7027
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Liposome formulations can be broadly divided into cationic, anionic and neutral subtypes. Charged liposomes are used in many different types of studies such as, blood complement studies, gene transfer studies and other biomedical applications to name a few. Cellsome® liposomes made from anionic PEGylated lipids provide certain benefits.

Anionic liposomes offer a number of attributes, relative to the challenges associated with cationic formulations such as, the administration of cationic liposomes results in higher cytotoxicity levels, both in vitro (Zhong et al., 2009) and in vivo (Balazs and Godbey, 2010). Anionic liposomes demonstrate greater stability in solution (Zhigaltsev et al., 2002, Phillips and Heydari, 1996), lead to lower aggregation when compared with neutrally charged liposomes, and have increased endocytosis when compared with cationic (Bajoria et al., 1997) and neutral liposomes.

To improve liposome stability and enhance their circulation times in the blood, a sterically-stabilized, hydrophilic polymer, polyethylene glycol (PEG), has been shown to be the optimal choice for obtaining sterically-stabilized liposomes. Using an Anionic Liposome with PEG will protect the liposomes from circulating proteins, improving their plasma clearance and enhancing their therapeutic effects.

The four products provided that are made from Anionic PEGylated Lipids provided here consist of either DSPC:Chol:DSPG:DSPE-PEG(2000) (60:30:5:5 molar ratio), DOPC:Chol:DOPG:DOPE-PEG(2000) (60:30:5:5 molar ratio), DSPC:Chol:DSPS:DSPE-PEG(2000) (60:30:5:5 molar ratio), or DOPC:Chol:DOPS:DOPE-PEG(2000) (60:30:5:5 molar ratio).

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General Fusion ProtocolMaterials: P3X63Ag8.653 murine myeloma or YB2/0 (maintained at < 1 x 106/ml)50% w/v PEG 1500, warmed to 37° CMedium: IMDM supplemente 查看更多>
Troubleshooting Tips for Western ImmunoblottingThe following tips can be used to overcome the most common problems encountered during Western blotting. Smeared 查看更多>
1、染色过强 原因 解决办法抗体的浓度过高或抗体孵育时间过长 降低抗体滴度(一般指浓缩性抗体)抗体 孵育时间:室温1小时或4℃过夜 孵育温度过高,孵育温度超过37℃ 一般室温20-28℃ DAB 查看更多>
一、免疫荧光的标本制作的基本程序同DAB显色的免疫组化,不同点如下:1、免疫荧光不需要使用双氧水处理,封闭和一抗孵育与其它相同 查看更多>
Author: Nanci DonackiSource: Contributed by Nanci DonackiMaterials 0.1M NaHC03 pH9 DMSO NHS-Biotin (N-Hydroxysuccinimidobiotin, Sigma #H-1759) PBS Procedure Di 查看更多>
确定肿瘤的类型时,检测肿瘤细胞的增殖活性时,在某些肿瘤的组织病理诊断中,借助于检测肿瘤细胞表面或细胞内的一些特定的分子,称为肿瘤免疫组织化学标记物。确定肿瘤的类型,除了依靠其临床表现、影像学和形态学特点,还借助于检测肿瘤细胞表面或细胞内的一些特定的分子,例如通过免疫... 查看更多>
2021-09-14
CO-IMMUNOPRECIPITATION ANALYSIS OF PROTEIN-PROTEIN INTERACTIONSThis protocol uses total cell extracts to analyze putative protein-protein interactions in eukar 查看更多>
Preparation of Nuclear Extracts for Gel Shifts and Westerns BlotsThe following protocol is optimized for about 107 cells (near confluent 10 cm plate). NOTE: AL 查看更多>
基底鳞状细胞癌(BSC)是基底细胞癌(BCC)的一类少见亚型,以鳞状细胞分化为主要表现,且预后较差。当下,关于基底鳞状细胞癌皮肤镜和免疫组化表现的相关文献较为缺乏。在近期 The Journal of Dermatology 杂志上,日本医科大学武藏小杉医院皮肤科 Shin-ichi Ansai 教授报道了 1 例腿部基底鳞状细胞癌,并对其皮肤镜和免疫组化表现进行阐述,现介绍如下。基本病史患者,76 岁男 查看更多>
Author: James TurmoSource: Contributed by James TurmoAbstract: Using Immobilized Protein A or Protein G for Immunoprecipitation.PurposeUsing Immobilized Protei 查看更多>
Aurion品牌R-Gent SE-EM银增强试剂介绍 查看更多>
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本人新手,最近做免疫组化,需要双染确定细胞。预实验做了两个抗体的单染,效果都不错。但是准备做双染的时候发现实验室里的双染试剂盒两个都是抗鼠的。而我之前两个一抗都是兔抗体。现在只能重新订购了。请问前辈们有相关推荐吗?

两个作用。一是保湿。在BSA封闭之后,加一抗,一般是37°C一小时,或者室温2小时,或者4°C过夜。无论怎样,时间都比较长,抗体容易干掉,干掉之后染色或者荧光就标不出了。所以,加入一抗之后,放入一个可以密封的盒子里,再放一些湿的滤纸或者海绵,可以有效的防止片子干掉。二抗同理。二是避光。有些二抗上面的发光剂需要避光,否则荧光容易淬灭。湿盒一般是用不透明的材料做的,盖上盖子之后可以保证一个暗室环境。湿盒可以自己做的。一般的小的铝饭盒都可以,放点海绵滤纸棉花什么的进去,用的时候加点水就行=)
浓度进行测试,使每一抗体个体化,找到适合自己实验室的理想工作浓度,既使是即用型的抗体也应如此,不能只简单的按说明书进行染色。(2)抗体孵育时间过长或温度较高:解决办法是,严格执行操作规程,最好随身佩带报时表或报时钟,及时提醒,避免因遗忘而造成时间延长。现在流行的二步法(Polymer)敏感性很高,要求一抗孵育的时间不是传统的1小时,而是30分钟,因此,要根据染色结果进行调整。(3)DAB变质和显色时间太长:DAB最好现用现配,如有沉渣应进行过滤后再用。配制好的DAB不应存放时间太长,因为在没有酶的情况下,过氧化氢也会游离出氧原子与DAB产生反应而降低DAB的效力,未用完的DAB存放在冰箱里几天后再用这种似乎节约的办法是不可取的。DAB的显色最好在显微镜下监控,达到理想的染色程度时立即终止反应。不过当染色片太多时或用染色机时,这样做似乎不现实,但至少应对一些新的或少用的抗体显色时进行监控,避免显色时间过长。(4)组织变干:修复液溢出后未及时补充液体、染色切片太多、动作太慢、忘记滴液、滴液流失等都是造成组织变干的原因。解决的办法是操作要认真仔细,采用DAKO笔或PAP Pen在组织周围画圈,可以有效的避免液体流失,也能提高操作速度。(5)切片在缓冲液或修复液中浸泡时间太长(大于24小时):原因上不清楚,但现象存在。有的实验室喜欢前一天将切片脱蜡至修复,第二天加抗体进行免疫组化染色,如果将装有切片和修复液的容器放在4?C冰箱过夜,对结果无明显影响,如果放在室温,特别是炎热的夏天,会出现背景着色,因此,不可存放时间太长。(6)一抗变质、质量差的多克隆抗体:注意抗体的有效期,过期的抗体要麽不显色要麽背景着色。用新买的抗体时最好设立阳性对照和用使用过的抗体作比较。
我是第一次做免疫组化,之前从未接触过,求各位老师推荐一下能用于小鼠的nestin抗体和β-tubli...
(1)一方面,防止切片从4度直接放入PBS易脱片
(2)另一方面,使抗原抗体结合更稳定。一般不需要,但对表达较弱的抗原可能有用,4度和37度时分子运动方式不同,前者分子碰撞机率和运动速度小于后者,后者结合更快,但敏感性也提高了并易造成非特异染色。
(3)其实,我更赞同后一种说法,因为我尝试把肝脏或睾丸片子从4度过夜拿出后,直接用PBS洗没发生过脱片现象。事实胜于雄辩!
酶免疫组化实验 123
你大爷KdOa2017-10-02
这个具体不是很清楚,建议参考elisa试剂盒实验说明书 参考具体操作步骤再进行操作本数据来源于百度地图,最终结果以百度地图最新数据为准。
ALP试剂盒和ALP染色试剂盒是一样的吗?ALP染色和茜素红染色用什么拍照?
简单来说,就是用不同的试剂来染色标记组织,根据反应和显色情况,判断组织细胞的表面抗原、细胞内物质的成分,以明确病理改变、病理类型,协助诊断和治疗。这个东西会用到很多的试剂盒,所以相对来说会比较贵。
免疫组化和免疫荧光的区别 123
╭⌒°1285____2017-10-02
免疫组化和免疫荧光都是蛋白定位的检测(也就是确定蛋白是表达在细胞核/浆/膜)。
免疫组织化学又称免疫细胞化学,是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,对相应抗原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来,借助显微镜的现像和放大作用,在细胞,亚细胞水平检测各种抗原物质,并可在原位显示相应的基因和基因表达产物。免疫组织化学技术现已有:免疫荧光组织(细胞)化学技术、免疫酶组织(细胞)化学技术、亲和组织化学技术、免疫金银及铁标记免疫组织化学技术等。免疫荧光组织(细胞)化学技术是采用荧光素标记的已知抗体(或抗原)作为探针,检测待测组织、细胞标本中的靶抗原(或抗体),形成的抗原抗体复合物上带有荧光素,在荧光显微镜下,由于受高压汞灯光源的紫外光照射,荧光素发出明亮的荧光,这样就可以分辨出抗原(或抗体)的所在位置及其性质,并可利用荧光定量技术计算抗原的含量。以达到对抗原物质定位、定性、定量测定的目的。

我是做肝细胞肝癌和胆管细胞癌的免疫组化

这是之前的抗体做出来的效果,EDTA修复,1:400的浓度(抗体100微升,0.1mg/ml,价格3000多),效果很好。




后来过期了,就又买了一支(抗体100微升,0.2mg/ml,价格7000多,贵很多),过程一样,EDTA、高压、酶修复,浓度1:200300350400500都试过,4度过夜、封闭等,都试过,就是做不粗来。

现在就是淋巴细胞强阳,肿瘤不阳,谁能帮我看看什么原因。我已经找不到什么理由了




免疫组化在临床工作的意义近年来,随着免疫组织化学技术的发展和各种特异性抗体的出现,使许多疑难肿瘤得到了明确诊断。在常规肿瘤病理诊断中,5%-10%的病例单靠H.E.染色难以作出明确的形态学诊断。尤其是免疫组化在肿瘤诊断和鉴别诊断中的实用价值受到了普遍的认可,其在低分化或未分化肿瘤的鉴别诊断时,准确率可达50%-75%。免疫组织化学的临床应用主要包括以下几方面:(1)恶性肿瘤的诊断与鉴别诊断;(2)确定转移性恶性肿瘤的原发部位;(3)对某类肿瘤进行进一步的病理分型;(4)软组织肿瘤的治疗一般需根据正确的组织学分类,因其种类多、组织形态相像,有时难以区分其组织来源,应用多种标志进行免疫组化研究对软组织肿瘤的诊断是不可缺少的;(5)发现微小转移灶,有助于临床治疗方案的确定,包括手术范围的确定。(6)为临床提供治疗方案的选择。
免疫组化是利用抗原与抗体间的特异结合原理和特殊的标记技术,对组织和细胞内的特定抗原、抗体进行定位、定性、定量的一们技术。我们都是先进行免疫组化,在DAB染色后进行HE染色。既能看到免疫组化的结果,又能看到细胞的形态,CD34+免疫组化染色后是棕色的颗粒,效果很好。
1)做免疫组化的片子最好不要同时做HE染色,因为那样会掩盖阳性着色的结果;而且用苏木素复染细胞核也是淡染,若要在免疫组化的片子上观察形态学的改变,除非有非常典型的表现,一般是有很大的难度的。
2)你是培养的细胞做免疫组化吗?如果是的话,那就每个样本只有一张片子吧?唯一的办法是进行免疫双染,同时做CD34和AFP(甲胎蛋白)。我觉得后者阳性便可以或多或少的获得向肝细胞分化的证据。
3)用HE染色来识别造血干细胞向肝细胞分化,也就是说要看到肝细胞的典型形态学改变后才可以下结论。问题是:早期的肝细胞仅凭形细胞态学观察并不能很容易的被识别。病理大夫看组织切片,重要的是看其组织学结构,对肝细胞也是这样。如果单拿出来一个细胞,还是培养的细胞,染色后真的不容易区分。所以我觉得你设计的用HE染色来确定早期细胞向哪个方向分化不是很有说服力。
4)如果是切片,也就是说每个样本可以有多张切片,那可以在连续切片上分别染CD34和AFP,拍照时选择相同视野,也有一定说服力。但是还是不如双染法更可靠。
5)用双染最大的问题在于:这两者都表达在胞浆中,染色容易相互覆盖。所以在双染的方法选择上你还要再考虑一下,可不可以用免疫荧光双染?这样也很有说服力的