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HighpurityRhamnogalacturonan(SoyBean)foruseinresearch,biochemicalenzymeassaysandinvitrodiagnosticanalysis.
Preparedfromsoybeanpectin.Potentialsubstratefortheassayofrhamnogalacturonase.
Arevisedarchitectureofprimarycellwallsbasedonbiomechanicalchangesinducedbysubstrate-specificendoglucanases.
Park,Y.B.&Cosgrove,D.J.(2012).PlantPhysiology,158(4),1933-1943.
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Xyloglucaniswidelybelievedtofunctionasatetherbetweencellulosemicrofibrilsintheprimarycellwall,limitingcellenlargementbyrestrictingtheABIlityofmicrofibrilstoseparatelaterally.Totestthebiomechanicalpredictionsofthis“tetherednetwork”model,weassessedtheabilityofcucumber(Cucumissativus)hypocotylwallstoundergocreep(long-term,irreversIBLeextension)inresponsetothreefamily-12endo-β-1,4-glucanasesthatcanspecificallyhydrolyzexyloglucan,cellulose,orboth.Xyloglucan-specificendoglucanase(XEGfromAspergillusaculeatus)failedtoinducecellwallcreep,whereasanendoglucanasethathydrolyzesbothxyloglucanandcellulose(Cel12AfromHypocreajecorina)inducedahighcreeprate.Acellulose-specificendoglucanase(CEGfromAspergillusniger)didnotcausecellwallcreep,eitherbyitselforincombinationwithXEG.Testswithadditionalenzymes,includingafamily-5endoglucanase,confirmedtheconclusionthattocausecreep,endoglucanasesmustcutbothxyloglucanandcellulose.Similarresultswereobtainedwithmeasurementsofelasticandplasticcompliance.BothXEGandCel12Ahydrolyzedxyloglucaninintactwalls,butCel12AcouldhydrolyzeaminorxyloglucancompartmentrecalcitranttoXEGdigestion.XyloglucaninvolvementintheseenzymeresponseswasconfirmedbyexperimentswithArabidopsis(Arabidopsisthaliana)hypocotyls,whereCel12Ainducedcreepinwild-typebutnotinxyloglucan-deficient(xxt1/xxt2)walls.Ourresultsareincompatiblewiththecommondepictionofxyloglucanasaload-bearingtetherspanningthe20-to40-nmspacingbetweencellulosemicrofibrils,buttheydoimplicateaminorxyloglucancomponentinwallmechanics.Thestructurallyimportantxyloglucanmaybelocatedinlimitedregionsoftightcontactbetweenmicrofibrils.
Real-timeimagingofcellulosereorientationduringcellwallexpansioninArabidopsisroots.
Anderson,C.T.,Carroll,A.,Akhmetova,L.&Somerville,C.(2010).PlantPhysiology,152(2),787-796.
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Celluloseformsthemajorload-bearingnetworkoftheplantcellwall,whichsimultaneouslyprotectsthecellanddirectsitsgrowth.Althoughtheprocessofcellulosesynthesishasbeenobserved,littleisknownaboutthebehaviorofcelluloseinthewallaftersynthesis.UsingPontamineFastScarlet4B,adyethatfluorescespreferentiallyinthepresenceofcelluloseandhasexcitationandemissionwavelengthssuitableforconfocalmicroscopy,weimagedthearchitectureanddynamicsofcelluloseinthecellwallsofexpandingrootcells.WefoundthatcelluloseexistsinArabidopsis(Arabidopsisthaliana)cellwallsinlargefibrillarbundlesthatvaryinorientation.Duringanisotropicwallexpansioninwild-typeplants,weobservedthatthesecellulosebundlesrotateinatransversetolongitudinaldirection.Wealsofoundthatcelluloseorganizationissignificantlyalteredinmutantslackingeitheracellulosesynthasesubunitortwoxyloglucanxylosyltransferaseisoforms.Ourresultssupportamodelinwhichcelluloseisdepositedtransverselytoaccommodatelongitudinalcellexpansionandreorientedduringexpansiontogenerateacellwallthatisfortifiedagainststrainfromanydirection.
X4modulesrepresentanewfamilyofcarbohydrate-bindingmodulesthatdisplaynovelproperties.
Bolam,D.N.,Xie,H.,Pell,G.,Hogg,D.,Galbraith,G.,Henrissat,B.&Gilbert,H.J.(2004).JournalofBIOLOGicalChemistry,279(22),22953-22963.
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Thehydrolysisoftheplantcellwallbymicrobialglycosidehydrolasesandesterasesistheprimarymechanismbywhichstoredorganiccarbonisutilizedinthebiosphere,andthustheseenzymesareofconsiderablebiologicalandindustrialimportance.Plantcellwall-degrADIngenzymesingeneraldisplayamodulararchitecturecomprisingcatalyticandnon-catalyticmodules.TheX4modulesinglycosidehydrolasesrepresentalargefamilyofnon-catalyticmoduleswhosefunctionisunknown.HereweshowthattheX4modulesfromaCellvibriojaponicusmannanase(Man5C)andarabinofuranosidase(Abf62A)bindtopolysaccharides,andthustheseproteinscompriseanewfamilyofcarbohydrate-bindingmodules(CBMs),designatedCBM35.TheMan5C-CBM35bindstogalactomannan,insolubleamorphousmannan,glucomannan,andmanno-oligosaccharidesbutdoesnotinteractwithcrystallinemannan,cellulose,cello-oligosaccharides,orotherpolysaccharidesderivedfromtheplantcellwall.Man5C-CBM35alsopotentiatesmannanaseactivityagainstinsolubleamorphousmannan.Abf62A-CBM35interactswithunsubstitutedoat-speltxylanbutnotsubstitutedformsofthehemicelluloseorxylo-oligosaccharides,andrequirescalciumforbinding.Thisisinsharpcontrasttootherxylan-bindingCBMs,whichinteractinacalcium-independentmannerwithbothxylo-oligosaccharidesanddecoratedxylans.
Family42carbohydrate-bindingmodulesdisplaymultiplearabinoxylan-bindinginterfacespresentingdifferentligandaffinities.
Ribeiro,T.,Santos-Silva,T.,Alves,V.D.,Dias,F.M.V.,Luís,A.S.,Prates,J.A.M.,Ferraira,L.M.A.,Romao,M.J.&Fontes,C.M.G.A.(2010).BiochimicaetBiophysicaActa(BBA)-ProteinsandProteomics,1804(10),2054-2062.
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Enzymesthatdegradeplantcellwallpolysaccharidesdisplayamodulararchitecturecomprisingacatalyticdomainboundtooneormorenon-catalyticcarbohydrate-bindingmodules(CBMs).CBMsdisplayconsiderablevariationinprimarystructureandaregroupedinto59sequence-basedfamiliesorganizedintheCarbohydrate-ActiveenZYme(CAZy)database.HerewereportthecrystalstructureofCtCBM42Atogetherwiththebiochemicalcharacterizationoftwoothermembersoffamily42CBMsfromClostridiumThermocellum.CtCBM42A,CtCBM42BandCtCBM42Cbindspecificallytothearabinoseside-chainsofarabinoxylansandarabinan,suggestingthatvariouscellulosomalcomponentsaretargetedtotheseregionsoftheplantcellwall.ThestructureofCtCBM42Adisplaysabeta-trefoilfold,whichcomprises3sub-domainsdesignatedasα,βandγ.Eachoneofthethreesub-domainspresentsaputativecarbohydrate-bindingpocketwhereanaspartateresiduelocatedinacentralpositiondominatesligandrecognition.Intriguingly,theγsub-domainofCtCBM42Aispivotalforarabinoxylanbinding,whiletheconcertedactionofβandγsub-domainsofCtCBM42BandCtCBM42Cisapparentlyrequiredforligandsequestration.Thus,thisworkrevealsthatthebindingmechanismofCBM42membersisincontrastwiththatofhomologousCBM13swhererecognitionofcomplexpolysaccharidesresultsfromthecooperativeactionofthreeproteinsub-domainspresentingsimilaraffinities.
IdentificationofaGH62α-L-arabinofuranosidasespecificforarabinoxylanproducedbyPenicilliumchrysogenum.
Sakamoto,T.,Ogura,A.,Inui,M.,Tokuda,S.,Hosokawa,S.,Ihara,H.&Kasai,N.(2011).AppliedMicrobiologyandBiotechnology,90(1),137-146.
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Anarabinoxylanarabinofuranohydrolase(AXS5)waspurifiedfromtheculturefiltrateofPenicilliumchrysogenum31B.ACDNAencodingAXS5(axs5)wasisolatedbyinvitrocloningusingtheN-terminalaminoacidsequenceofthenativeenzymeasastartingpoint.Thededucedaminoacidsequenceoftheaxs5genehashighsimilaritieswiththoseofarabinoxylanarabinofuranohydrolasesofAspergillusniger,Aspergillustubingensis,andAspergillussojae.Modulesequenceanalysisrevealedthata“Glyco_hydro_62”waspresentatposition28–299ofAXS5.Thisisafamilyofα-L-arabinofuranosidaseswhichareallmembersofglycosidehydrolasefamily62.RecombinantAXS5(rAXS5)expressedinEscherichiacoliwashighlyactiveonarabinoxylanbutnotonbranchedsugarbeetarabinan.1H-NMRanalysisrevealedthattherAXS5cleavedarabinosylside-chainslinkedtoC-2andC-3ofsingle-substitutedxyloseresiduesinarabinoxylan.Semi-quantitativeRT-PCRanalysisindicatedthatexpressionoftheaxs5geneinP.chrysogenum31BwasstronglyinducedbyaddingD-xyloseandarabinoxylantotheculturemedium.Moreover,twobindingsitesofXlnR,atranscriptionalactivatorthatregulatestheexpressionofthegenesencodingxylanolyticenzymes,arepresentintheupstreamregionoftheaxs5gene.TheseresultssuggestthatAXS5isinvolvedinxylandegradation.
Endo-1,5-α-L-arabinanasefromaSubseafloorBacillussubtilis:Purification,CharacterizationandNucleotideSequenceofItsGene.
Fukada,Y.,Koide,O.,Miura,T.,Kobayashi,T.,Inoue,A.,&Horikoshi,K.(2011).Journalofappliedglycoscience,58(2),61-66.
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Fourarabinan-degradingenzymesareproducedbyBacillussubtilisJAMA-3-6,whichwasisolatedfromasubseafloorsedimentcorefrom0.5mbelowseaflooratawaterdepthof1,180mofftheShimokitaPeninsulainJapan.Oneoftheenzymes(AbnAF25)waspurifiedfromaculturebroth.Themolecularmassoftheenzymewasaround28kDaasjudgedbySDS-polyacrylamidegelelectrophoresis.TheoptimalpHandtemperaturewerepH6.3and60°Cinphosphatebuffer.AbnAF25degradedwelldebranchedarabinan,lineararabinan,andarabino-oligosaccharaides,butnotarabinoxylan,arabinogalactanorp-nitrophenyl-α-L-arabinofuranoside,whichclassifiestheenzymeasanendo-1,5-α-L-arabinanase.Theendproductsfromlineararabinanweremainlyarabinose,arabinobioseandarabinotriose.ThegeneforAbnAF25wasclonedandsequenced.ThededucedaminoacidsequenceoftheenzymerevealedthehighestsimilaritytothearabinanaseofB.amyloliquefacienswith83%identity.AsAbnAF25didnotshowthedefinitecharacterizationofasubseafloorenzyme,strainJAMA-3-6seemstobeprobablydroppedorco-sedimentedwithasoilcomponent.
AnovelGH43α-L-arabinofuranosidaseofPenicilliumchrysogenumthatpreferentiallydegradessingle-substitutedarabinosylsidechainsinarabinan.
Shinozaki,A.,Kawakami,T.,Hosokawa,S.&Sakamoto,T.(2014).EnzymeandMicrobialTechnology,58,80-86.
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Wepreviouslydescribedthreeα-L-arabinofuranosidases(ABFs)secretedbyPenicilliumchrysogenum31B.Here,wepurifiedafourthABF,termedPcABF43A,fromtheculturefiltrate.Themolecularmassoftheenzymewasestimatedtobe31kDa.PcABF43Ahadthehighestactivityat35°CandataroundpH5.TheenzymeactivitywasstrongonsugarbeetL-arabinanbutweakondebranchedarabinanandarabinoxylan.Lowmolecular-masssubstratessuchasp-nitrophenylα-L-arabinofuranoside,α-1,5-L-arabinooligosaccharides,andbranchedarabinotriosewerehighlyresistanttotheactionofPcABF43A.1H-NMRanalysisrevealedthatPcABF43AhydrolyzedarabinosylsidechainslinkedtoC-2orC-3ofsingle-substitutedarabinoseresiduesinL-arabinan.ReportsconcerningenzymesspecificforL-arabinanarequitelimited.Pcabf43AcDNAencodingPcABF43Awasisolatedbyinvitrocloning.Thededucedaminoacidsequenceoftheenzymeshowshighsimilaritieswiththesequencesofotherfungaluncharacterizedproteins.Semi-quantitativeRT-PCRanalysisindicatedthatthePcabf43AgenewasconstitutivelyexpressedinP.chrysogenum31Batalowlevel,althoughtheexpressionwasinducedwithpecticcomponentssuchasL-arabinose,L-rhamnose,andD-galacturonicacid.AnalysisofenzymaticcharacteristicsofPcABF43A,GH51ABF(AFQ1),andGH54ABF(AFS1)fromP.chrysogenumsuggestedthatPcABF43AandAFS1functionasdebranchingenzymesandAFQ1playsaroleofsaccharificationinthedegradationofL-arabinanbythisfungus.
NascentpectinformedinGolgiapparatusofpeaepicotylsbyadditionofuronicacidshasdifferentpropertiesfromnascentpectinatthestageofgalactanelongation.
ABDel-Massih,R.M.,Rizkallah,H.D.,Al-Din,R.S.,Baydoun,E.A.H.&Brett,C.T.(2007).JournalofPlantPhysiology,164(1),1-10.
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Microsomalmembraneswerepreparedfrometiolatedpea(PisumsativumL.)epicotylsandusedtoformnascent[Uronicacid-14C]pectin.Theenzymeproductswerecharacterizedbyselectiveenzymicdegradation,gelpermeationchromatographyandanalysisofcellulosebindingproperties.Theproductobtainedhadamolecularweightofaround40kDa,whichwassignificantlylowerthanthatofnascent[Gal-14C]pectinpreparedfromthesametissues.Itiscomposedmainlyofpolygalacturonanandperhapsalsorhamnogalacturonan(RG-I).Evidencewasobtainedforthepresenceofaproteinattachedtothenascent[Uronicacid-14C]pectin,butitwasunaffectedbyendoglucanaseanddidnotbindtocellulose.Hence,noxyloglucanappearedtobeattachedtothenascent[Uronicacid-14C]pectin.Amodelisproposedinwhichxyloglucanisattachedtonascentpectinafterformationofhomogalacturonan,butbeforethepectinleavestheGolgiapparatus.
Enzymaticchangesinpecticpolysaccharidesrelatedtothebeneficialeffectofsoakingonbeancookingtime.
Martínez‐Manrique,E.,Jacinto‐Hernández,C.,Garza‐García,R.,Campos,A.,Moreno,E.&Bernal‐Lugo,I.(2011).JournaloftheScienceofFoodandAgriculture,91(13),2394-2398.
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Background:Cookingtimedecreaseswhenbeansaresoakedfirst.However,themolecularbasisofthisdecreaseremainsunclear.Todeterminethemechanismsinvolved,changesinbothpecticpolysaccharidesandcellwallenzymesweremonitoredduringsoaking.Twocultivarsandonebreedinglinewerestudied.Results:Soakingincreasedtheactivityofthecellwallenzymesrhamnogalacturonase,galactanaseandpolygalacturonase.Theiractivityinthecellwallwasdetectedaschangesinchemicalcompositionofpecticpolysaccharides.Rhamnosecontentdecreasedbutgalactoseanduronicacidcontentsincreasedinthepolysaccharidesofsoakedbeans.Adecreaseintheaveragemolecularweightofthepectinfractionwasinducedduringsoaking.Thedecreaseinrhamnoseandthepolygalacturonaseactivitywereassociated(r=0.933,P=0.01,andr=0.725,P=0.01,respectively)withshortercookingtimeaftersoaking.Conclusion:PecticcellwallenzymesareresponsibleforthechangesinrhamnogalacturonanIandpolygalacturonaninducedduringsoakingandconstitutethebiochemicalfactorsthatgivebeancellwallsnewpolysaccharidearrangements.RhamnogalacturonanIisdispersedthroughouttheentirecellwallandinteractswithcelluloseandhemicellulosefibres,resultinginahigherrateofpecticpolysaccharidethermosolubilityand,therefore,ashortercookingtime.
Quantificationoffoodpolysaccharidemixturesby1HNMR.
Merkx,D.W.,Westphal,Y.,vanVelzen,E.J.,Thakoer,K.V.,deRoo,N.&vanDuynhoven,J.P.(2017).CarbohydratePolymers,179,379-385.
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Polysaccharidesarefoodingredientsthatcriticallydeterminerheologicalpropertiesandshelflife.Aqualitativeandquantitativeassessmentonfood-specificpolysaccharidemixturesby1HNMRispresented.Themethodisbasedontheidentificationofintactpolysaccharides,combinedwithaquantitativeanalysisoftheirmonosaccharideconstituents.Identificationofthepolysaccharidesisachievedby1HNMRlineshapefittingwithpurecompoundspectra.ThemonomericcompositionwasdeterminedusingtheSaemanhydrolysisprocedure,followedbydirectmonosaccharidequantificationby1HNMR.Inthequantification,boththemonosaccharidedegradationduringhydrolysis,aswellasacorrectionforthenon-instantaneouspolysaccharidedissolutionweretakenintoaccount.Thesefactorswereparticularlyimportantforthequantificationofpectins.Themethodshowedoverallgoodrepeatability(RSDr=4.1±0.9%)andwithin-laboratoryreproducibility(RSDR=6.1±1.4%)forvariousfoodpolysaccharides.Polysaccharidemixtureswerequantitativelyresolvedbyanon-negativeleastsquaresestimation,usingidentifiedpolysaccharidesandtheirmolarmonosaccharidestoichiometryaspriorknowledge.Theaccuracyandprecisionofthepresentedmethodmakeitapplicabletoawiderangeoffoodpolysaccharidemixtureswithcomplexandoverlapping1HNMRspectra.
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1．观察味蕾的结构。2．比较观察浆液腺泡、粘液腺泡和混合腺泡的结构特点。3．通过观察食管、胃及小肠切片来了解消化管管壁的分层和一般组织结构。联系机能重点比较观察食管、胃、小肠及结肠的粘膜结构特点。4．了解胰的一般组织结构，区分外分泌部的腺泡和内分泌部的胰岛的结构。5．联系肝的机能和血循环特点来了解肝小叶和肝门管的结构。 查看更多
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2021-09-11
来源：《植物学实验》 查看更多
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2019-02-15
肌动蛋白聚合分析生化试剂盒基于在聚合过程中pyrene(芘)结合Actin时荧光增强的原理,是一种非常快速和经济的研究肌动蛋白聚合/解聚的方案。 查看更多
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2021-07-21
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2018-08-08
搽剂（《中国药典》2010年版二部附录I T）系指药物用乙醇、油或适宜的溶剂制成的溶 液、乳状液或混悬液，供无破损皮肤揉擦用的液体制剂。涂剂（《中国药典》2010年版二部附录I T）系指含药物的水性或油性溶液、乳状液、混悬液，供临用前用消毒纱布或棉球等蘸取或涂于皮肤或口腔与喉部黏膜的液体制剂。涂膜剂（《中国药典》2010年版二部附录I T）系指药物溶解或分散于含成膜材料溶剂中， 涂搽患处后形成薄膜的外用液体制剂。对搽剂、涂剂、涂膜剂的质量要求，除应无毒、无局部刺激性，无酸败、变色现象，以及药典品种项下规定 查看更多
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2019-05-20
美国NovaTeinBio品牌产品列表【代理商整理】 查看更多
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2019-10-01
我们长期与Thermo Bio-rad Axygen qiagen Corning BD Promega Biotium BV targetmol merckmillipore Sigma AAT-Biolite biorbyt ENZO GE Greiner Immonoway Jackson le... 查看更多
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2018-09-26
生化试剂分为很多，主要有电泳试剂、色谱试剂、离心分离试剂、免疫试剂、标记试剂、组织化学试剂、透变剂和致癌物质、杀虫剂、培养基、缓冲剂、电 查看更多
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2021-06-03
标签: 试剂 达泰本公司即将参加2008中国国际分析仪器、生化试剂及实验室设备展，欢迎新老用户届时光临参观指导。时间：2008年11月25日-27日 地点：北京·中国国际展览中心我们的展位号为：206... 查看更多
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2021-07-26
主要有电泳试剂、色谱试剂、离心分离试剂、免疫试剂、标记试剂、组织化学试剂、透变剂和致癌物质、杀虫剂、培养基、缓冲剂、电镜试剂、蛋白质和核酸沉淀剂、缩合剂、超滤膜、临床诊断试剂、染色剂、抗氧化剂、防霉剂、去垢剂和表面活性剂、生化标准品试剂、生化质控品试剂、分离材料等等。
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2021-08-12
生化试剂的种类与等级说明（1）免疫试剂包括抗体及抗血清、正常血清及补体、抗原、免疫组织化学研究用试剂、细胞培养用试剂、细胞分离试剂、凝胶内扩散法及电泳试剂等。（2）基因工程用试剂包括基因表达与基因重组、人工合成蛋白、激素、核酸合成试剂、核酸制剂、内切酶等。（3）诱变剂和致癌物质主要供测定工作场所与生活环境中的毒物质的致癌性与化学毒物的致突变性。（4）临床诊断试剂主要供医疗系统中的临床病理诊断、生化诊断、液晶诊断、同位素诊断与一般化学诊断 查看更多
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2018-08-10
苯丙酮酸与三价铁离子产生蓝色反应，干扰显色导致假阴性反应的磷酸盐被变成磷酸铵镁而除去，本实验来源于牡丹江医学院 本科 5 年制临床实验指导 查看更多
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请问哪个公司有检测组织中钙离子浓度的试剂盒 实验动物与组织学...123
简爱刚2021-08-03
我想检测血管组织中的钙离子浓度，不知道哪个公司有试剂盒
下列各组溶液,不加其他试剂就能鉴别的是 初中化学 菁优网123
陌幻念2018-01-30
A,Na2CO3H2SO4HCLNaNO3B,NaOHNaCLMgCL2FeCL3C,HCLAgNO3HNO3MgCL2
D,K2SO4Na2CO3BaCL2NaNO3
D,K2SO4Na2CO3BaCL2NaNO3
CNASCL36:2012《医学实验室质量和能力认可准则在基因扩增检验领域的...123
答案依旧2021-07-22
相关疾病：癫痫请各位老师分享一下，对于红框中的验证要求，你们实验室是怎么验证的呢？对于试剂的批间差异验证，我们是通过留样再测来比对的，想问一下，可不可以使用核酸提取液提取后的DNA冰冻保存好，然后需要比对的时候再拿......
用1mg/mL的铁储备液配制10μg/mL的工作液,用此工作液配制一组标准...123
jinbowen3252018-01-29
例：1。硝酸钡2。硝酸银3。氯化钠4。氯化铜四种溶液检验出的顺序。
通过解答，教会我，谢谢
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检验科试剂更换记录登记表AU680123
xingfudejueze2021-07-20
最近发现一个问题一般生化仪至少能检测二三十个项目！那么问题是这么多项目要加的试剂R1,R2，算下来也得六七十个瓶瓶罐罐，每天加试剂，倒过来倒过去的，很容易把试剂加错吧？所以就想问一下各位平时工作中有......
Alexa Fluor 488标记亲和纯化山羊抗兔IgG(H+L)二抗 昊鑫生物123
緲酱2018-01-24
不用其他试剂，可以鉴别石蕊、盐酸、氢氧化钙、氢氧化钠、碳酸钠五种溶液，第四个被鉴别出来的物质是（ ）A．盐酸B．氢氧化钙C．氢氧化钠D．碳酸钠
化学试剂有什么级别以及试剂级别划分的标准是什么 123
fochezhing8672018-03-16
化学试剂的纯度较高，根据纯度及杂质含量的多少，可将其分为以下几个等级。
（1）优级纯试剂 亦称保证试剂，为一级品，纯度高，杂质极少，主要用于精密分析和科学研究，常以GR表示。
（2）分析纯试剂 亦称分析试剂，为二级品，纯度略低于优级纯，杂质含量略高于优级纯，适用于重要分析和一般性研究工作，常以AR表示。
（3）化学纯试剂 为三级品，纯度较分析纯差，但高于实验试剂，适用于工厂、学校一般性的分析工作，常以CP表示。
（4）实验试剂 为四级品，纯度比化学纯差，但比工业品纯度高，主要用于一般化学实验，不能用于分析工作，常以 LR表示。
以上按试剂纯度的分类法已在我国通用。根据化学工业部颁布的“化学试剂包装及标志”的规定，化学试剂的不同等级分别用各种不同的颜色来标志，见表1。
表1 我国化学试剂的等级及标志
（1）优级纯试剂 亦称保证试剂，为一级品，纯度高，杂质极少，主要用于精密分析和科学研究，常以GR表示。
（2）分析纯试剂 亦称分析试剂，为二级品，纯度略低于优级纯，杂质含量略高于优级纯，适用于重要分析和一般性研究工作，常以AR表示。
（3）化学纯试剂 为三级品，纯度较分析纯差，但高于实验试剂，适用于工厂、学校一般性的分析工作，常以CP表示。
（4）实验试剂 为四级品，纯度比化学纯差，但比工业品纯度高，主要用于一般化学实验，不能用于分析工作，常以 LR表示。
以上按试剂纯度的分类法已在我国通用。根据化学工业部颁布的“化学试剂包装及标志”的规定，化学试剂的不同等级分别用各种不同的颜色来标志，见表1。
表1 我国化学试剂的等级及标志
不用任何试剂鉴别物质的方法123
youlovexusong2018-03-26
FeCI3、NaOH、NaCI、HNO3。
不用任何试剂进行物质鉴别的突破口 123
杰少～2018-01-25
1.NaHCO3NaHSO4Ba(NO3)2
2.NaNO3FeCl3AgNO3
分别有什么现象？谢谢回答！
2.NaNO3FeCl3AgNO3
分别有什么现象？谢谢回答！
求化学试剂的其他购买途径!!123
2018-01-28
我家在武汉市远城区，去市区买化学试剂耗时耗力，而且机会也不多。但是我们城区没有试剂店，我又不能网购，求大神给我一些购买方式！尽量方便一些！谢谢！
只用试管和胶头滴管而不用其它试剂无法区分的一组试剂是A.KOH溶液...123
对对对272018-01-30
A.KOH溶液和AlCl3溶液B.Na2CO3溶液和盐酸
C.MgCl2溶液和氨水D.盐酸和NaAlO2溶液
为什么
C.MgCl2溶液和氨水D.盐酸和NaAlO2溶液
为什么
免费发布其他化学试剂求购信息,提供大量求购其他化学试剂产品信...123
sliveryang2021-08-02
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