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제품특징
□ 특징
● 적은 양의 total RNA 또는 poly A+ RNA로부터 고품질의 cDNA library 제작
● 최소 50 ng의 total RNA에서 cDNA 합성 가능
● 독창적인 SMART cDNA 합성법으로 full-length cDNA를 포함하는 library 제작
● Adaptor ligation 과정 불필요
SMART cDNA Library Construction Kit는 phage λTriplEx2 vector에 full-length cDNA를 cloning하는 제품이다. 이 제품은 cDNA증폭을 위한 SMART 기술과 adaptor 없이 λTriplEx2 vector에 cloning하는 기술을 이용하며 초기 시료 양에 따라 두 가지 실험 과정으로 나눠져 있다. 첫 번째 과정은 새롭게 고안된 long-distance PCR(LD-PCR) 방법으로 50 ng정도의 적은 양의 RNA 시료에 적용할 수 있다 (1). 두 번째 과정은 좀 더 일반적인 과정으로 비교적 많은 양의 초기 시료 (예를 들면, 1 μg 또는 그 이상의 poly A+ RNA)을 사용하는 실험자에게 적합하다. 두 과정 모두 많은 양의 full-length의 double-strand cDNA를 합성하기 위하여 1st strand 합성과정에서 SMART IV Oligonucleotide를 이용한다. 두 실험 과정 모두 UserManual에 표기되어 있으며 각자의 실험에 맞게 선택하도록 한다. 각각의 kit는 cDNA library 7회 제작 분이다.또한, 포유류 발현용 vector인 pEXP-Lib, retroviral expression vector인 pRetro-Lib 등 SMART cDNA Library Construction Kit와 함께 사용할 수 있는 7가지 vector가 별도 판매되고 있다.SMART library는 기존의 전통적인 방법에 비해 매우 높은 효율로 전체길이를 포함하는 clone을 제작할 수 있다. 따라서 SMART cDNA library에서 선별된 clone은 mRNA의 5、-untranslated region을 완전히 포함하게된다 (2).RNA/cDNA Quality Assay를 사용하면 실험을 시작하기 전에 초기 시료로 사용되는 human RNA의 상태를 확인할 수 있다. 본 실험에는 RT-PCR법이 이용되므로 실험에 적용할 full-length cDNA가 증폭되는지 여부를 직접적으로 확인할 수 있다. 기존의 실험실에서 사용하던 장비들을 이용하므로 빠르게 RNA 상태를 확인할 수 있을 뿐만 아니라 불편하고 유해한 formaldehyde gel을 제작할 필요도 없다.
Figure 1. Comparison of SMART cDNA synthesis vs. conventional synthesis for library construction.
제품명 | Cat. No. | 용량 | FirstStrand Synthesis | cDNAAmplification | Vector | 특징 |
SMART cDNA Library ConstructionKit | 634901 | 10 회 | SMART IVOligonucleotide | 5" PCRPrimer | λTriplEx2(lamda phage) | * SMARTcDNA 합성 기술* lamda phage에 library 제작* 제작된 library를 고객이 원하는plasmid로 coversion권장하지 않음 |
CDSIII/3" PCR Primer | ||||||
In-Fusion SMARTer DirectionalcDNA Library Construction Kit | 634933 | 10 회 | SMARTer VOligonucleotide | 5" PCRPrimer II A | pSMART2IFDLinearizedVector | * SMART기술 In-Fusion Cloning 기술* 원하는 vector에 곧바로 library 제작 가능(효율 고려 필요)* Insert의 cloning 방향성 有 |
3’ In-Fusion SMARTer CDS Primer | 3’ In-Fusion SMARTer PCR Primer |
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基因表达(gene expression)是指细胞在生命过程中，把储存在DNA顺序中遗传信息经过转录和翻译，转变成具有生物活性的蛋白质分子。即表达=转录+翻译
转录量和拷贝数是相等的（产生的RNA），但和表达量（蛋白质，最终产物）不同意思，只是表达的第一步，只有转录的也都同样顺利翻译成蛋白质才有同时满足的可能。
转录增加 不等于 表达增加表达增加 也不等于 转录增加成功转录 不代表 成功表达成功表达 说明 成功转录
遗传物质的表达的产物是：蛋白质
DNA转录的产物是：mRNA
希望对你有帮助~
生命活动丰富多彩、千变万化。但是万变不离其宗，不管如何变化都围绕着中心法则展开。核酸作为遗传物质指导蛋白质的表达，表达产生的一些特殊蛋白（如转录因子、调控蛋白）反过来又对DNA指导合成蛋白质的过程进行调控。对基因表达调控的研究一直是生物学研究热点，涉及到生命活动的各个过程，也是各类信号通路研究无法绕过的部分。
当面对某个基因表达调控研究时，第一个想到的研究对象是什么？没错，就是基因的启动子。通过启动子区域对基因表达进行调控是最直接有效的手段，所以也是研究基因表达调控的重点。现在的基因数据库信息丰富，拿到基因及其启动子序列非常简单。那么问题又来了，拿到启动子序列以后，下一步怎么找相关的调控蛋白/转录因子呢？生物信息学方法预测？你会得到很多可能的目标调控蛋白/转录因子，还要做实验一个一个验证。凝胶迁移（EMSA），染色质免疫共沉淀（ChIP）？只能针对已知能与启动子结合的调控蛋白/转录因子，而且还需要相应探针/抗体，对于大量筛选无能为力。
美国Signosis的转录因子(结合启动子)微孔板芯片检测试剂可以方便、高效地解决这一问题。该方法专门用于筛查与特定DNA序列（通常是含有转录因子结合位点的启动子序列）相互作用的调控蛋白/转录因子，获得目的基因的启动子序列后，使用该方法可以筛查48/96种常见的调控蛋白/转录因子与启动子序列结合情况。该方法利用转录因子与特定DNA序列结合的特点，针对每一种转录因子设计相应的生物素标记探针；当混合探针与核蛋白样本共同孵育时，探针与相应的转录因子结合形成转录因子/探针复合物；除去游离的探针，收集转录因子/探针复合物；分离复合物中的DNA探针，探针的量与转录因子含量呈正相关。在探针混合物中同时加入启动子片段，如果DNA序列中含有转录因子结合位点，就会与生物素标记的探针竞争性结合转录因子，转录因子与相应探针形成的复合物减少。通过比较有无目的基因启动子片段中转录因子探针检测差异，可以分析出与无目的基因启动子片段相互作用的转录因子种类。
这种方法可以简单、快速地在48/96种常见转录因子筛选出与目的启动子片段相互作用的调控蛋白/转录因子，从而进一步探索目的基因的表达调控。待筛选的调控蛋白/转录因子都是在生命活动中起重要通的调控蛋白/转录因子，大大方便了后续的基因表调控、信号通路及其它方面的研究。
但严格来说，还是有区别的。因为基因的表达产物包括蛋白质和RNA（rRNA和tRNA）。如果产物是蛋白质，就是转录翻译；如果产物是RNA，就只是转录过程，没有翻译过程。
这个词表示“将思想文字化”或是“用本国语言将外语抄写、誊录”
基因表达谱测序是直接对某一物种或特定细胞在某一功能状态下产生的mRNA进行高通量测序，可以用来研究基因的表达差异情况。该技术结合了转录组测序建库的实验方法，与转录组测序相比，基因表达谱测序要求的读长更短，测序通量更小，但仅可用于基因表达差异的研究。
转录组测序是RNA水平测序，相当于DNA水平的基因组测序，是一个框架。表达谱主要研究的是基因表达量的变化，上调或下降。先要有转录组或是基因组才可以做表达谱，否则没有Ref做参考。
转录组测序和表达谱测序其实都是通过高通量测序技术进行的，转录组测序主要是针对没有参考基因组（即基因组未完成测序）的物种，侧重于获得你材料的全部转录组信息；而表达谱则侧重于检测各个基因的表达量。
如题，我现在做出了一个蛋白相对于正常组织，在肿瘤里表达升高。想做某转录因子调控它的表达。查了转录因子预测的网站，每个预测的都很不一样，而且参与其调控的转录因子有几十个。我该怎么办呢？用什么实验技术或者方法能找到一个能做的呢？
转录是遗传信息由DNA转换到RNA的过程。作为蛋白质生物合成的第一步，转录是mRNA以及非编码RNA（tRNA、rRNA等）的合成步骤。是遗传信息从DNA流向RNA的过程。即以双链DNA中的确定的一条链（模板链用于转录，编码链不用于转录）为模板，以ATP、CTP、GTP、UTP四种核苷三磷酸为原料，在RNA聚合酶催化下合成RNA的过程。
