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Cytoskeleton/NEW Signal-Seeker™ SUMOylation 1 Detection Kit (30 assay)/30 assays/BK165
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Cytoskeleton/NEW Signal-Seeker™ SUMOylation 1 Detection Kit (30 assay)/30 assays/BK165
品牌 / 
Cytoskeleton
货号 / 
BK165
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Details

The Signal-Seeker™ line of produts have been developed to allow simple analysis of key regulatory protein modifications by specialists and non-specialists alike. The comprehensive Signal-Seeker™ kits provide an affinity bead system to isolate and enrich modified proteins from any given cell or tissue lysate. The enriched protein population is then analyzed by standard western blot procedures using a primary antibody to the target protein. 

Product Uses Include

  • Investigate transient regulatory mechanisms
  • Measure signalling events of multiple pathway member proteins 
  • Discover new modifications of your protein of interest
  • Gain insight into regulatory mechanisms
  • Measure endogenous or transiently expressed protein signalling events

Validation Data: see datasheet

Kit contents

The SUMOylation 1 kit contains the following components:

Lysis and protein quantitation stepIP and pre-clear stepWash stepElution stepWestern step

 BlastR™ Lysis Buffer 

 BlastR™ Dilution Buffer

 BlastR™ Filters

 Protease Inhibitor Cocktail

 De-SUMOylation inhibitor  Cocktail

 Precision Red™ Protein  Assay Reagent

 SUMOylation 1  Affinity Beads

 IP Control  Beads

 

 

 

 

 BlastR™ Wash  Buffer

 

 

 

 

 

 Spin Columns

 Bead Elution  Buffer

 

 

 

 

 Chemiluminescent  Reagent A

 Chemiluminescent  Reagent B

 Anti-SUMO1  antibody

 

 

 

 

Example results

There are many applications for these kits, here we describe an interesting example:

Application 1: Investigate significant SUMOylation 1 events

Immunoprecipitating total SUMO1 profiles using the Signal-Seeker™ SUMOylation 1 Detection Kit compared to older SUMO1 tools

(A) HAP1 wildtype (WT) or SUMO1 knockout (KO) lysate, was obtained using BlastR lysis and filter system. 1 mg of each lysate were incubated with 40 µg of each SUMO1 affinity reagent: ASM11-beads (Cytoskeleton), 21C7 (Invitrogen—purified), 21C7 (DSHB—supernatant), D11-beads (Santa Cruz) and conjugated SUMO1 IgG control beads (CIG03).  21C7 antibodies were captured with protein G agarose beads to enrich for SUMO-1 modified proteins. Samples were separated by SDS-PAGE and transferred to PVDF.  Enriched SUMO1 samples were analyzed by western blot using ASM01 (Cytoskeleton) antibody at 1:5000, and mouse Trubelot Ultra-HRP secondary at 1:1000 in 5% milk. Trueblot secondary was used to minimize heavy and light chain detection from 21C7 samples. 

(B): IP was performed using ASM11 as in Fig 1A.  SUMO1 modified proteins were visualized with ASM01 1:5000, and anti-mouse secondary at 1:20,000 to highlight the profile of SUMOylated proteins in the region between 64-30 kDa that may be masked by heavy and light chain interference when using unconjugated antibodies for IP.

Figure_1_Total_v2_for_webpage
Immunoprecipitating SUMO1 modified target proteins using the Signal-Seeker™ SUMOylation 1 Detection Kit  compared to older SUMO1 tools

HAP1 wildtype (WT) or SUMO1 knockout (KO) lysate, was obtained using BlastR lysis and filter system. 1 mg of each lysate were incubated with 40 ug of each SUMO1 affinity reagent: ASM11-beads (Cytoskeleton), 21C7 (DSHB—supernatant), and conjugated SUMO1 IgG control beads (CIG03). 21C7 antibodies were captured with protein G agarose beads to enrich for SUMO-1 modified proteins. Samples were separated by SDS-PAGE and transferred to PVDF. Target proteins: (A) TFII-I, RanGAP1, and (B) schmd1 were analyzed for their SUMO1 modified forms by western blot. Anti-rabbitHRP labeled secondary antibody was used at 1:10,000. All three primary antibodies are rabbit polyclonal antibodies, and should not bind heavy and light chain fragments from the IP antibody.

Figure_2_targets
Other experiments that could be attempted in this area of research include:

• Pharmacological investigation of SUMOylating  and de-SUMOylating enzymes involved in regulation of target proteins.

• Investigate SUMOylation under a variety of different growth factors or drug treatments.

• Examine the interaction of SUMOylated target proteins with its downstream effectors.

• Examine crosstalk between SUMOylation 1 and other PTMs for target proteins.

 

For more information contact:  signalseeker@cytoskeleton.com

Associated Products:

Signal-Seeker™ SUMOylation 2/3 Detection Kit (Cat. # BK162)

Signal-Seeker™ Ubiquitination Detection Kit (Cat. # BK161)

Signal-Seeker™: BlastR™ Rapid Lysate Prep Kit (Cat. # BLR01)

Signal-Seeker™ SUMOylation 2/3 Affinity Beads (Cat.# ASM11-beads)

Signal-Seeker™: PTMtrue™ SUMOylation 2/3 Antibody (Cat.# ASM01)

About

 

Click on the pdf icon below to download the manual

 

     

      Citations

      New product released in 2018!   For the most recent publications citing this and other Signal-Seeker™ products, see our Signal-Seeker™ Validation Data Page click here

      Faqs

      Visit our Signal-Seeker™ Tech Tips and FAQs page for technical tips and frequently asked questions regarding this and other Signal-Seeker™ products click here

       

      If you have any questions concerning this product, please contact our Technical Service department at tservice@cytoskeleton.com

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      放射免疫测定/放射免疫分析(Radio immunoassay,RIA)
      基本原理:
      在放射免疫分析的实验中,加入超量的标记抗原*Ag与未标记抗原Ag(即:待测抗原)与较少量的抗体(Ab)竞争性结合。
      如果实验结果所计量到的结合物(*Ag-Ab)放射活性较高,表示待测物的浓度较低。
      如果所计量到的结合物放射活性较低,则表示待测物的浓度较高。 藉由标准 曲线图的分析,可以推算出待测物的浓度。
      1960年,美国学者Yalow 和Berson 创立了放射免疫分析(Radioimmunoassay,RIA),并首先用于糖尿病人血浆中胰岛素含量的测定。这是医学和生物学领域中方法学的一项重大突破,开辟了医学检测史上的一个新纪元。它使得那些原先认为是无法测定的极微量而又具有重要生物学意义的物质得以精确定量,从而为进一步揭开生命奥秘打开了一条新的道路,使人们有可能在分子水平上重新认识某些生命现象的生化生理基础。其后30年中,内分泌科学的飞速进展,充分证明了这一超微量分析技术的巨大推动力。1977年,这项技术的发明者荣获诺贝尔生物医学奖。随后这一崭新的技术迅速渗透到医学科学的其它领域,如病毒学、药理学、血液学、免疫学、法医学、肿瘤学等,以及与医学生物学相关的学科,如农业科学、生态学及环境科学等。放射免疫分析的物质,由激素扩大到几乎一切生物活性物质。我们放射免疫分析研究起步于1962年,并迅速发展与普及,对我国生物医学的进展起着很大的促进作用。 (一)RIA的优点
      放射免疫分析具有许多其它分析方法无可比拟的优点。它既具有免疫反应的高特异性,又具有放射性测量的高灵敏度,因此能精确测定各种具有免疫活性的极微量的物质。
      1.灵敏度高一般化学分析法的检出极限为10~10g,而RIA通常为10(毫微克,ng)、10g(微微克,pg),甚至10g(毫微微克,fg)、10g(微微微克,ag)。
      2.特异性强由于抗原—抗体免疫反应专一性强,所被测物一定是相应的抗原。良好的特异性抗体,能识别化学结构上非常相似的物质,甚至能识别立体异构体。
      3.应用范围广据不完全统计,目前至少已有300多种生物活性物质已建立了RIA。它几乎能应用于所有激素的分析(包括多肽类和固醇类激素),还能用于各种蛋白质、肿瘤抗原、病毒抗原、细菌抗原、寄生虫抗原以及一些小分子物质(如环型核苷酸等)和药物(如地高辛、毛地黄甙等)的分析,应用范围还在不断扩展。近年来由于小分子半抗原制备抗体的技术有很大的发展,有人预测几乎所有的生物活性物质,只要其含量不低于RIA的探测极限,都可建立适当的RIA法。
      4.操作简便RIA所需试剂品种不多,可制成配套试剂盒;加样程序简单一次能分析大量标本,标本用量也少;反应时间不长;测量和数据处理易于实现自动化;RIA属体外分析技术,对患者无任何辐射危害。
      (二)RIA的缺点
      1.只能以免疫反应测得具有免疫活性的物质,对具有生物活性百失去免疫活性的物质是测不出的。因此RIA结果与生物测定结果可能不一致。
      2.由于使用了生物试剂,其稳定性受多种因素影响,需要有一整套质量控制措施来确保结果的可靠性。
      3.灵敏度受方法本身工作原理的限制,对体内某些含量特别低的物质尚不能测定。
      4.由于放射免疫分析是竞争性的反应,被测物和标准物都不能全部参与反应,测得的值是相对量而非绝对量。
      5.存在放射线辐射和污染等问题。
      尽管RIA存在以上缺点,但它毕竟是定量分析方法的先进技术。随着科学技术的进步,放射免疫分析技术将会得到更加广泛、更加深入的发展。向左转|向右转
      有什么情况只能用RIA不能用ELISA吗想定量测血清和睾丸组织里的瘦素,不求定位定性只求定量,看往年文献多是零几年的,都用的RIA,为什么不用ELISA?是当时技术问题,还是另有原因?感谢解答
      有没有具体要求 规格之类的了
      血清抗体定量试剂盒被放在了常温下6天,还能不能用?
      1.检测原理: 该试剂盒是一种时间分辨的荧光共振能量转移免疫分析,该反应是一个竞争免疫反应,即铕标的cAMP示踪复合物与体系中的cAMP竞争结合标有Alexa Fluor 647染料的cAMP抗体。铕标cAMP示踪复合物是通过Biotin标记的cAMP与铕标的抗生物素蛋
      请问各位师兄师姐,做阿片肽的ria试剂盒怎么选择,谢谢!
      放免试剂盒123
      lgl大山2021-07-24
      本人打算使用放射免疫方法(RIA)检查人血清中胰岛素样生长银子1,不知哪个公司的试剂盒物美价廉,呵呵。烦劳指教,不胜感激!
      芬兰OrionDiagnostica公司的放免试剂盒:I型前胶原羧基端前肽、I型胶原交联羧基末端肽RIA试剂盒。
      希望知道如何购买的朋友告诉一下,谢谢。
      各位战友好。我在使用RIA(放射免疫)双抗体法测定血液中的性类固醇激素时,产生了一个问题:比如说我测睾酮,我们都知道RIA的原理是样品中的孕酮和加入的以放射性碘标记的睾酮共同与一定量的特异性抗体产生竞争性免疫反应,用免疫分离试剂将结合部分与游离部分分离后,测定结合部分的放射性强度,即可从标准曲线中查知待测样品中睾酮的含量。
      我使用的是北京北方生物技术研究所提供的KIT.盒子里面有睾酮标准品,兔抗睾酮抗体,带碘标记的睾酮,和驴抗兔免疫分离剂。实验过后我查了一下生物化学书,发现睾酮这种激素的化学本质非蛋白质,而是缁醇。这样问题就出来了:据我所知,产生免疫反应的是蛋白质,然而性类固醇激素的化学本质是缁醇。请问各位,缁醇也能产生免疫反应吗?
      大师们:我现在想测定大鼠的血清雌激素水平,但是没有找到哪里有卖大鼠的放免试剂盒的,只有人的,请问能用人的放免试剂盒测定大鼠的血清雌激素水平么?有人说可以,但只能是相对指标,是么?(顺便问一下,谁有大鼠放免试剂盒的来源,谢谢)
      我想用放免测大鼠皮质酮、ACTH、胰岛素和脑CRH。本想用解放军总医院的,但他们的皮质酮和CRH都是进口的,太贵了,经费有限。联系了这个公司,这几种都有自产的,而且还可以给代做,一个药盒收100。

      现在急用,但犹豫中,不知道他们的药盒效果怎样。有没有哪位同学用过啊?大家做放免的话是不是都是用解放军总医院的,还有别的好的研究所推荐吗?谢谢了
      我的实验需检测大鼠尿EGF,想用RIA法,便宜些。不知哪里有?