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Crystal Chem/Rat HDL-Cholesterol Assay Kit/79970
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Crystal Chem/Rat HDL-Cholesterol Assay Kit/79970
品牌 / 
Crystal Chem
货号 / 
79970
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数    量:
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Product Specifications
Catalog #79970
Sample Size3 µL
Sample TypesSerum, plasma
Tests96
Assay Range1.5 - 180.0 mg/dL
Storage2 - 8°C
SynonymsRat HDL Kit
RegulatoryResearch Use Only
DistributionWorldwide
Assay SummaryAssay and protocol summary
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗人Angiotensin-2单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的Angiotensin-2与单抗结合,加入生物素化的抗人Angiotensin-2,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗兔cTnI单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的cTnI与单抗结合,加入生物素化的抗兔cTnI,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗兔IL-4单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的IL-4与单抗结合,加入生物素化的抗兔IL-4,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物 查看更多>
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗人蛋白多糖单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的蛋白多糖与单抗结合,加入生物素化的抗人蛋白多糖,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗人LPa单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的LPa与单抗结合,加入生物素化的抗人LPa,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物素 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗兔FGF-basic单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的FGF-basic与单抗结合,加入生物素化的抗兔FGF-basic,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Strepta 查看更多>
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗兔MMP-7单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的MMP-7与单抗结合,加入生物素化的抗兔MMP-7,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生 查看更多>
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ELISA有些什么方法?各有啥优缺点?
http://wenku.baidu.com/view/9b2aea155f0e7cd184253638.html
阴性值一般比较接近空白值,设置阴性对照,主要还是排除所加样品里有没有其他物质对实验干扰引起显色,导致所测值偏高本数据来源于百度地图,最终结果以百度地图最新数据为准。
ELISA双抗体夹心法原理
ELISA双抗体夹心法(enzyme linked immunosorbent assay——sandwich technique)的原理是将特异性抗体结合到固相载体上形成固相抗体,然后和待检血清中的相应抗原结合形成免疫复合物,洗涤后再加酶标记抗体,与免疫复合物中抗原结合形成酶标抗体-抗原-固相抗体复合物,加底物显色,判断抗原含量。
生物帮有相关介绍。编码RNA http://doc.bio1000.com/show-3399.html
终止液是2mol/L的H2SO4,将酶破坏,蛋白变性,从而改变颜色:由蓝变黄。
(1)包被:用包被液将包被抗原稀释到合适浓度,每孔100 μL加入板孔中,包被过夜。
(2)封闭:将已包被的板用洗涤液洗涤2次,每孔加入120 μL封闭液,封闭一段时间,取出,甩干备用。
(3)竞争反应:在制备好的板中每孔加入50 μL系列浓度的标准品溶液和50 μL稀释好的酶标抗体溶液,孵育一段时间。
(4)洗板:用洗涤液洗涤5次。
(5)显色反应:每孔加入显色溶液100 μL,孵育一段时间。
(6)终止:每孔各加入终止液,在酶标仪上测定各孔的吸光值。
双抗体夹心法
1.包被:用0.05MPH9.牰碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃ 过夜。次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。(简称洗涤,下同)。
2. 加样:加一定稀释的待检样品0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃ 孵育1小时。然后洗涤。(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。
3. 加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标抗体(经滴定后的稀释度)0.1ml。37℃ 孵育0.5~1小时,洗涤。
4. 加底物液显色:于各反应孔中加入临时配制的TMB底物溶液0.1ml,37℃ 10~30分钟。
5. 终止反应:于各反应孔中加入2M硫酸0.05ml。
6. 结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。也可测OD值:在ELISA检测仪上,于450nm(若以ABTS显色,则410nm)处,以空白对照孔调零后测各孔OD值,若大于规定的阴性对照OD值的2.1倍,即为阳性。
间接法
1.用包被缓冲液将已知抗原稀释至1~10μg/ml,每孔加0.1ml,4℃过夜;
2.次日洗涤3次;
3.加一定稀释的待检样品(未知抗体)0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时,洗涤;
4.(同时做空白、阴性及阳性孔对照)于反应孔中,加入新鲜稀释的酶标第二抗体(抗抗体)0.1ml;
5.37℃孵育35-60分钟,洗涤;
6.’最后一遍用DDW洗涤。
其余步骤同“双抗体夹心法”的4、5、6。
ELISA的种类及原理123
然然丿hqRQ2021-08-01
夹心法夹心法常用于检测大分子抗原,一般之操作步骤为:将具有专一性之抗体固著(coating)于塑胶孔盘上,完成后洗去多余抗体加入待测检体,检体中若含有待测之抗原,则其会与塑胶孔盘上的抗体进行专一性键结洗去多余待测检体,加入另一种对抗原专一之一次抗体,与待测抗原进行键结洗去多余未键结一次抗体,加入带有酵素之二次抗体,与一次抗体键结洗去多余未键结二次抗体,加入酵素受质使酵素呈色,以肉眼或仪器读取呈色结果间接法间接法常用于检测抗体,一般之操作步骤为:将已知之抗原固著于塑胶孔盘上,完成后洗去多余之抗原。加入待测检体,检体中若含有待测之一次抗体,则其会与塑胶孔盘上的抗原进行专一性键结。洗去多余待测检体,加入带有酵素之二次抗体,与待测之一次抗体键结。洗去多余未键结二次抗体,加入酵素受质使酵素呈色,藉仪器(ELISA reader)测定塑胶盘中的吸光值(OD值),以评估有色终产物的含量即可测量待测抗体的含量。竞争法竞争法是一种较少用到的ELISA检测机制,一般用于检测小分子抗原,其操作步骤为:将具有专一性之抗体固著于塑胶孔盘上,完成后洗去多余抗体加入待测检体,使检体中的待测抗原与塑胶孔盘上的抗体进行专一性键结加入带有酵素之抗原,此抗原也可与塑胶孔盘上的抗体进行专一性键结,由于塑胶孔盘上固著的抗体数量有限,因此当检体中抗原的量越多,则带有酵素之抗原可键结的固著抗体就越少,亦即,两种抗原皆竞相与塑胶孔盘上抗体键结,即所谓竞争法之由来。洗去检体与带有酵素之抗原,加入酵素受质使酵素呈色,当检体中抗原量越多,代表塑胶孔盘内留下之带有酵素的抗原越少,显色也就越浅。当需要侦测无法获得两种以上单一性抗体的抗原,或是不易得到足够的纯化抗体以固著于孔盘上时,一般会考虑使用竞争法ELISA。
各位大侠,我做了两次棋盘滴定:
第一次:包被抗体浓度为:8ug/ml,4,2,1,0.5,0.25,0为A,B,C,D,E,F,G
血清稀释度为1:100
酶标抗体稀释度为:1:1000,1:5000,1:10000,1:25000为1,2,3,4
结果为:1234
A3.3440.7120.4900.238
B2.7570.5230.3450.176
C2.4280.4550.3100.172
D>4.51.7771.2150.439
E>4.51.3570.7890.424
F1.1090.2540.1720.110
G1.3660.3310.1970.069(空白)从结果可以判断包被抗体浓度1ug/ml最合适

第二次:包被抗体1ug/ml
血清稀释度为1:25,1:50,1:100,1:150,1:200,1:250,1:300,空白为A,B,C,D,E,F,G,H
酶标抗体稀释度为:1:1000,1:5000,1:10000,1:25000为1,2,3,4
结果为:1234
A2.9930.6390.3380.236
B3.0210.7220.3070.191
C2.3360.4960.3080.176
D2.2560.4640.3040.176
E2.0310.4160.2470.139
F1.8300.3360.2310.153
G1.5980.3320.2270.132
空白H0.1580.0780.0720.074
这样的话应该是血清稀释度1:50最合适,酶标抗体稀释度1:1000最合适,但是这样的话OD值为3.021,是不是太大了?OD值是不是在1左右比较好呢?应该选择哪个浓度,哪个稀释度来做正式试验呢?
抗原夹心法步骤:
请大家帮帮忙,第一步加完抗原后必须封闭吗
ELISA实验所有方法的缺点很明显:
1、重复性不好;
2、收自身抗体、嗜异性抗体等干扰,易出现假阳性;
3、不论仪器和手工操作,干扰因素较多。影响最大的是温度和时间。1、直接法(direct ELISA)将抗原直接固定在固相载体上,参加酶符号的一级抗体,即可测定抗原总量,此一级抗体的特异性非常重要。优势:操作手续简略,因无须运用二抗可防止交互反响。缺陷:实验中的一抗都得用酶符号,但不是每种抗体都适合做符号,费用相对进步。2.间接法(indirect ELISA)此测定办法与直接法相似,不一样在于一级抗体没有酶符号,改用酶符号的二级抗体去辨识一级抗体来测定抗原量。优势:二抗能够加强信号,并且有多种挑选能做不一样的测定剖析。不加酶符号的一级抗体则能保存它最多的免疫反响性。缺陷:交互反响发作的机率较高。3.双抗体夹心法(sandwich ELISA)被检测的抗原包被在两个抗体之间,其间一个抗体将抗原固定于固相载体上,即捕捉抗体。另一个则是检测抗体,此抗体可用酶符号后直接测定抗原的量;或不符号,再透过酶符号的二级抗体来测定抗原的量。这两种抗体有必要当心选择,才可防止交互反响或竞争一样的抗原联系部位。优势:高活络、高专一性,抗原无须事前纯化。缺陷:抗原必定得具有两个以上的抗体联系部位。4.竞争法(competitive ELISA)样本里的抗原(自在抗原)和纯化并固定在固相载体上的抗原(固定抗原)一同竞争一样的抗体,当样品里的自在抗原越多,就能够联系越多的抗体,而固定抗原就只能联系到较少的抗体,反之亦然。经清洁过程,洗去自在抗原和抗体的复合物,只留下固定抗原和抗体的复合物,拿来与只要固定抗原的对照组成果相比拟,依据呈色区别就可计算出样品里的抗原含量。优势:可适用比拟不纯的样本,并且数据再现性很高。缺陷:全体的敏感性和专一性都较差。本数据来源于百度地图,最终结果以百度地图最新数据为准。
说实在 我没听说过三步法,不知道你在说什么建议楼主查询文献吧