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Clontech/EpiXplore Methylated DNA Enrichment Kit/10 Rxns/631963
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Clontech/EpiXplore Methylated DNA Enrichment Kit/10 Rxns/631963
品牌 / 
Clontech
货号 / 
631963
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The EpiXplore Methylated DNA Enrichment Kit provides a simple magnetic bead-based method for enriching and fractionating both hypo- and hypermethylated DNA from the whole genome. Enrichment leads to superior results in gene regulation studies by reducing background during sequencing.

The EpiXplore Methylated DNA Enrichment Kit provides a simple magnetic bead-based method for enriching and fractionating both hypo- and hypermethylated DNA from the whole genome. Enrichment leads to superior results in gene regulation studies by reducing background during sequencing.

Why choose the EpiXplore Methylated DNAEnrichment Kit?

  • The EpiXplore protocol is based on affinity binding between methylated DNA and Methylated DNA Binding Domain Protein 2 (MBD2).
  • It does not require any antibodies or follow an immunoprecipitation (IP) protocol.
  • Its flexible protocol allows you to elute your methylated DNA in fractions (by methylation density) or as a single fraction.

By contrast, antibody-based (IP) enrichment methods, including MeDIP, lack flexibility and the necessary pretreatments often result in loss of starting material. More importantly, antibody-based enrichment is “all or none”—that is, it does not allow gradient separation of methylated DNA.

Why fractionate by methylation density?

Recent reports indicate that regions of the genome with medium to low density methylation (including regions far from promoters and CpG islands) can play an important role in differential gene regulation. If you are looking for a comprehensive picture of methylation activity, differentiating these regions is an important first step. Only the EpiXplore Methylated DNA Enrichment Kit includes elution buffers which allow you to split your enriched methylated DNA into three fractions, based on methylation density.

How many methylated sites are required for binding?

The EpiXplore Methylated DNA Enrichment Kit contains a fragment of the MBD2 protein which provides high sensitivity. The kit can enrich DNA fragments containing as few as three methylated CpG pairs (6 total methylation sites).

Can your current enrichment method compete?

Is your enriched methylated DNA…EpiXplore protocol Antibody-based protocols
HTS-ready?YES. Enriched methylated DNA is double-stranded and ready for useNo. Enriched DNA requires further processing
Intact?YES. Uses a gentle (magnetic) separation processNo. Harsh separation conditions often lead to sample loss
Easy to elute?YES. Uses a simple buffer-based protocolNo. Elution requires multiple complex steps
Separated by methylation density?YES. Methylated DNA can be eluted in low, medium, and high density fractions or as a single fractionNo. Elution is “all or none”
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗兔FGF-basic单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的FGF-basic与单抗结合,加入生物素化的抗兔FGF-basic,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Strepta 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠sCD36单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的sCD36与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠sCD36,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗人nAChR单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的nAChR与单抗结合,加入生物素化的抗人nAChR,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生 查看更多>
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠C3单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的C3与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠C3,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物 查看更多>
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗人E3单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的E3与单抗结合,加入生物素化的抗人E3,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生物素结 查看更多>
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可溶性白细胞介素2受体SIL-2R的浓度的高低与许多疾病有密切联系,如成人T淋巴细胞白血病艾滋病、B细胞慢淋、毛细胞白血病,以及肾移植后发生急性排斥反应时或异基因骨髓移植发生移植物抗宿主时,患者血清中SIL-2R水平明显升高。(来源:医学基础免疫学实验指导,主编金伯泉李恩善,第1 版,北京:世界图书出版社,1990) 查看更多>
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有胶乳凝集试验和血液抑制试验,放射免疫试验(RIA)酶联免疫吸附试验(ELISA)单克隆抗体胶体金试验,本实验来源于牡丹江医学院 本科 5 年制临床实验指导 查看更多>
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ELISA方法类型及原理123
你大爷MkRk2021-07-27
该法由种类和变化可分为以下几种:
(一)双抗体夹心法
(二)间接法
(三)竞争法
(四)双位点一步法
(五)捕获法测IgM抗体
(六)应用亲和素和生物素的ELISA
最近在用夹心法测目的抗体的含量,有很多不解的地方,望各位解答了。
1.标准曲线的标准品是否一定要梯度稀释,为什么?我试过非梯度稀释的,也可以达到线性R2=0.99.

2.我用了CurveExpert做标曲,自动搜索后发现有10种提供的方程,各种形式的,其中一个十分适合我的实验结果(LogisticModel),而其他的感觉又不适合,因为结果常常为负值。这又是为啥捏?

3.实验的酶标仪最大OD值可以测到4,如果我的测量结果在1.3,是否像其他人所说的>1了就不准确了。

4.利用夹心法进行定量分析是否一定要使用线性方程?

不好意思啊,一下问了这么多问题,最近做了一个月的ELISA,完全摸不清头脑啊。谢谢各位了
冲洗不净,残留的酶结合物会分解底物显色,引起本底太高而出现错误
http://wenku.baidu.com/view/9b2aea155f0e7cd184253638.html
终止液是2mol/L的H2SO4,将酶破坏,蛋白变性,从而改变颜色:由蓝变黄。
双抗夹心法ELISA测定抗原时,会发生交叉反应吗?
有的原理上说是(1)单抗包被-抗原-酶标二抗-底物显色。但是我看论文上都是(2)单抗包被-抗原-二抗-酶标二抗-底物显色。请问到底是什么?本人对双抗夹心ELISA不太懂。

看论坛里说四参数什么的?左边两列下面六个孔全是放标准品,求大神指教,这个应该用什么曲线?做曲线时要减去空白孔吗?是要把这两列求平均值吗?做出来的样本OD值有一部分小于空白孔,应该怎么办?在论坛里看了好多贴子,说法不一,不知道应该怎么做?**!

0.2277520.2089240

0.2100740.2161990

0.2185240.2100623.9

0.2139310.2166257.8

0.2190630.22049415.6

0.252340.25620631.25

0.2834560.28338162.5

0.3451680.360872125

OD值OD值标准品浓度

(1)包被:用包被液将包被抗原稀释到合适浓度,每孔100 μL加入板孔中,包被过夜。
(2)封闭:将已包被的板用洗涤液洗涤2次,每孔加入120 μL封闭液,封闭一段时间,取出,甩干备用。
(3)竞争反应:在制备好的板中每孔加入50 μL系列浓度的标准品溶液和50 μL稀释好的酶标抗体溶液,孵育一段时间。
(4)洗板:用洗涤液洗涤5次。
(5)显色反应:每孔加入显色溶液100 μL,孵育一段时间。
(6)终止:每孔各加入终止液,在酶标仪上测定各孔的吸光值。
(1)单抗包被-抗原-酶标二抗-底物显色。本法首先也是用特异性抗体包被于固相载体,经洗涤后加入含有抗原之待测样品,如待检样品中有相应抗原存在,即可与包被于固相载体上的特异性抗体结合,经保温孵育洗涤后,即可加入酶标记特异性抗体,再经孵育洗涤后,加底物显色进行测定,底物降解的量即为欲测抗原的量。(2)单抗包被-抗原-二抗-酶标二抗-底物显色。(改良双抗体夹心法)本法首先是将特异性抗体a包被于固相载体,经洗涤加入含有欲测抗原之待检样品。经孵育洗涤后再加一次未标记的特异性抗体b,而这次加入的抗体b于第一次包被于固相载体上的特异性抗体a对被测抗原来说都是特异性的,但不是用同种动物免疫制备的,否则可出现非特异性反应。经孵育洗涤后,再加酶标记抗b抗体,再经孵育洗涤后加底物显色进行测定。这种方法与双抗体夹心法不同之处是多加了一层抗体。因此,放大的倍数更高,故比双抗体夹心法更加灵敏。同时避免标记特异性抗体,而另一优点是只要标记一种抗抗体,即可达到多种应用。
方法一:用于检测未知抗原的双抗体夹心法:
  1. 包被:用0.05M PH9,碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml,在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。
  2. 加样:加一定稀释的待检样品0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时。然后洗涤。(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。
  3. 加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标抗体(经滴定后的稀释度)0.1ml,37℃孵育0.5~1小时,洗涤。
  4. 加底物液显色:于各反应孔中加入临时配制的TMB底物溶液0.1ml,37℃10~30分钟。
  5. 终止反应:于各反应孔中加入2M硫酸0.05ml。
  6. 结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。也可测OD值:在ELISA检测仪上,于450nm(若以ABTS显色,则410nm)处,以空白对照孔调零后测各孔OD值,若大于规定的阴性对照OD值的2.1倍,即为阳性。
  方法二:用于检测未知抗体的间接法:
  用包被缓冲液将已知抗原稀释至1~10μg/ml,每孔加0.1ml,4℃过夜。次日洗涤3次。加一定稀释的待检样品(未知抗体)0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时,洗涤。(同时做空白、阴性及阳性孔对照)于反应孔中,加入新鲜稀释的酶标第二抗体(抗抗体)0.1ml,37℃孵育30~60分钟,洗涤,最后一遍用DDW洗涤。其余步骤同“双抗体夹心法”的4、5、6。
双抗体夹心法:
(1) 包被:用0.05M PH9.牰碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1~10μg/ml。在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml,4℃过夜。次日,弃去孔内溶液,用洗涤缓冲液洗3次,每次3分钟。(简称洗涤,下同)。
(2) 加样:加一定稀释的待检样品0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时。然后洗涤。(同时做空白孔,阴性对照孔及阳性对照孔)。
(3) 加酶标抗体:于各反应孔中,加入新鲜稀释的酶标抗体(经滴定后的稀释度)0.1ml。37℃孵育0.5~1小时,洗涤。
(4) 加底物液显色:于各反应孔中加入临时配制的TMB底物溶液0.1ml,37℃10~30分钟。
(5) 终止反应:于各反应孔中加入2M硫酸0.05ml。
(6) 结果判定:可于白色背景上,直接用肉眼观察结果:反应孔内颜色越深,阳性程度越强,阴性反应为无色或极浅,依据所呈颜色的深浅,以“+”、“-”号表示。也可测O·D值:在ELISA检测仪上,于450nm(若以ABTS显色,则410nm)处,以空白对照孔调零后测各孔O·D值,若大于规定的阴性对照OD值的2.1倍,即为阳性。
间接法:
用包被缓冲液将已知抗原稀释至1~10μg/ml,每孔加0.1ml,4℃过夜。次日洗涤3次。加一定稀释的待检样品(未知抗体)0.1ml于上述已包被之反应孔中,置37℃孵育1小时,洗涤。(同时做空白、阴性及阳性孔对照)于反应孔中,加入新鲜稀释的酶标第二抗体(抗抗体)0.1ml,37℃孵育30-60分钟,洗涤,最后一遍用DDW洗涤。其余步骤同“双抗体夹心法”的4、5、6。
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