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Diagenode/Chromatin immunoprecipitation/24 rxns/C01011030
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Diagenode/Chromatin immunoprecipitation/24 rxns/C01011030
品牌 / 
Diagenode
货号 / 
C01011030
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠sFas单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的sFas与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠sFas,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与 查看更多>
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠DPP4单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的DPP4与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠DPP4,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠HMGB-1单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的HMGB-1与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠HMGB-1,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavid 查看更多>
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠G-CSF单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的G-CSF与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠G-CSF,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin 查看更多>
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采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠Endostatin单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的Endostatin与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠Endostatin,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记 查看更多>
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原装elisa试剂盒,灵敏度,特异性... 查看更多>
采用双抗体夹心ABC-ELISA法。用抗小鼠HYP单抗包被于酶标板上,标准品和样品中的HYP与单抗结合,加入生物素化的抗小鼠HYP,形成免疫复合物连接在板上,辣根过氧化物酶标记的Streptavidin与生 查看更多>
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Elisa标准曲线绘制方法123
yuxh_19782021-07-23
大家好!
我现在正在应用ELISA试剂盒检测血清TSH
在预实验中,得到如下的结果:
B(450nm)1.575,0.710,0.431,0.225,0.160,0.062
标准品浓度为(ng/ml)0,0.5,1.0,2.5,5,10
根据试剂盒的说明书,以B/B0%为纵坐标,以标准品的浓度为横坐标,在对数坐标纸上绘制标准曲线,在标准曲线上查找对应的浓度范围。
请问最后模拟出的应是一条直线(二元一次方程)还是一条曲线?
请大家指教。
急!!!

竞争法ELISA测出标准曲线已有梯度,但样本OD值偏偏低很多,这导致样本浓度是既往文献报道的的100~1000倍会可能是什么原因?

附:

standerdsample1sample2

blank0.0690.1810.189

totalbinding1.9020.320.28

standerd10.1770.260.203

standerd21.0010.1290.136

standerd31.660.1770.183

standerd41.7060.1680.172

standerd51.6360.1880.127

poscontrol2.250.1410.226


各位大神帮看看是什么原因所致?

GM实验:试剂说明书上要求20分钟显色,10分钟的时候看一下,差不多就可以加终止液,但是我的标曲显色特别快,2分钟最低浓度蓝色就就深了,此时样本颜色还很浅很浅,我只能一块儿加终止液。所以,标曲显色过快,可能是什么原因?

(ps:第一列是标曲,后面是样本)


如题,我是菜鸟,网上看到有文章说用抑制率IC10作为最低检测限。不知是不是通用的做法,请各位战友不吝赐教
这是我最近用Elisa做出来的标准品的浓度(X)和OD值(Y),想请教一下各位老师该如何绘制标准曲线,我的试剂说明书上面没有写如何做,只说是做拟合双对数直线回归方程。论坛查了很久也没有找到具体的方法。希望能得到各位老师的指点,谢谢!(附上录入结果的文件)

X     Y
02.532
501.272
1000.688
2500.31
5000.176
10000.116

chymase.dat(0.06k)
大多数国产试剂盒生产厂家会提供对数坐标纸,可直接手工绘制曲线;如果酶标仪带有分析软件,可由软件直接拟合曲线,并自动计算出样本的浓度值;老式的酶标仪只能打印出OD值,需要实验员自己绘制曲线并计算,下面介绍2种绘制竞争法曲线的方法,希望对大家有帮助:一、在对数坐标纸上手工绘制曲线(Log-logit双对数标准曲线)1.实验做双孔,实验结果如下表所示。标准点浓度OD1OD2OD均结合率S002.2262.1922.209S10.11.7251.6791.70277.0%S20.41.3131.3381.325560.0%S31.60.9070.8340.870539.4%S46.40.5170.5170.51723.4%S525.60.2300.2440.23710.7%2)各标准点吸光值取均值。在表中OD均一列。3)将S1~S5的OD均值与S0的OD均相除,为标准点的百分结合率。4)在log-logit坐标纸上绘图。5)坐标纸上横轴从左至右第一个1-9表示为第一个10进位,第二个1-9表示为第二个10进位。第三个1-9表示为第三个10进位。也就是说,如果第一个1代表1ng/ml,则第二个1代表10ng/ml,第三个1代表100ng/ml。因为本次实验标准曲线范围是从0.1ng/ml到25.6ng/ml,则可以用第一个1代表0.1ng/ml,第二个1代表1ng/ml,第三个1代表10ng/ml。6)坐标纸纵轴为百分比。即各标准吸光值的百分结合率。7)曲线第一个数值点是(0.1,77.0%)。则在横轴左起点的1处向上至70~80之间,由70向上7个小格处。8)曲线第二个数值点是(0.4,60.0%)。则在横轴左起第一个4,向上至60的位置。9)曲线第三个数值点是(1.6,39.4%)。则在横轴左起第二个1至2之间,由第二个1向右6个小格。再向上至30~40之间,由30向上9个半小格处。10)曲线第四个数值点是(6.4,23.4%)。则在横轴左起第二个6至7之间,这里6与7之间分为5小格,则每个小格是0.2。所以由第二个6向右2个小格。再向上至20~30之间,由20向上约3个半小格处。11)曲线第四个数值点是(25.6,10.7%)。则在横轴左起第三个2至3之间,这里2与3之间分为10小格,则每个小格是1。所以由第三个2向右5个半小格。再向上至10~20之间,由10向上约半小格处。12)画一条通过各点的直线。要求尽可能多的点在线上,同时剩余的点均匀分布在直线的两边。13)样品也同样由吸光值计算百分结合率,再从纵轴上的相应结合率找到直线上的点,此点对应的横坐标浓度即为样品的浓度。无须换算。本数据来源于百度地图,最终结果以百度地图最新数据为准。
:(我第一次用ELISA竞争法来测试样品中抗原含量,发现做出的标准曲线上限,也就是试剂盒中浓度为0的标准品所限定的范围比样品的还低,想不通是哪里出了问题(确保都是按照试剂盒说明书操作)?请哪位高人为我指点迷津。多谢了!!
为什么HBeAbHBcAb的ELISA要用竞争法呢?加样快慢差异很大,不能用其他方法吗?谢谢
:(本人初次用竞争法测抗原,所得出的标准曲线竟然不能涵盖所有样品数值,致使无法分析数据:(确定都是按照试剂盒说明书操作的,且空白值(除标准品和样品外其他酶试剂都照加)也没有达到所期望的最大。所得数据如下,请哪位高人帮忙分析一下问题所在,另附说明书照片。热切盼望答复
浓度ng/ml标曲1标曲2
01.1941.109
180.8250.8
450.6090.561
900.4490.384
1800.2580.242
3600.1680.159
7200.1150.104
空白孔0.9460.92
我做的是竞争法ELISA,说明书上给的标准曲线是在半对数坐标纸上画的图,用五参数logistic曲线回归做出的R2最高0.9998,但是我看帖子上写的竞争法多用logit-log直线回归,请问各位前辈我应该选用那种方法?非常感谢!
针对于HBeAb的中和抑制法

采用抗-HBe抗体包被反应板,加入校准品及被测样本,同时加入定量HBeAg中和抗原,经过振荡孵育,洗板后再加入铕标记的抗-HBe,若标本中抗-HBe浓度高,HBeAg将被大量中和,使最后形成的抗-HBe-HBeAg-铕标记抗-HBe复合物减少。增强液(β-NTA)将标记在抗体上的Eu3+解离到溶液中,Eu3+和增强液中的有效成分形成高荧光强度的螯合物,荧光强度和样本中的抗-HBe浓度成反比。
RT。本人在做一个竞争法测定某单表位抗原ELISAkit开发项目。

抗体没有问题,包被在微孔板上的抗原也没有问题,且用纯度较高的抗体与梯度稀释的高纯度的抗原在37℃孵育竞争时,抗体能结合到微孔板上,显色后能得到非常好的标准曲线。

但是一旦用该抗体来检测血清中的该抗原时,抗体就不再和包被的微孔板上的抗原结合,无显色。血清中的成分非常复杂,但是不至于完全阻碍了抗原和抗体的结合啊?百思不得其解,希望版上的有经验者能不吝赐教。
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