
Plainliposomesareextensivelyusedasartificialcellmodelsandforstudyingtheinteractionofvarioustypesofmoleculessuchaspeptidesandproteinswiththesurfaceofthelipidmembranes.Plainliposomesarealsousedascontrolformulationsformanydifferenttypesofdrugencapsulatedliposomeformulations.Chargedliposomesarealsousedinmanydifferenttypesofbloodcomplementstudies.Plainliposomesareavailableinvariousanionic,cationicandneutralsurfacecharges.Plainliposomescanbeunilamellaror multilamellar.
DOTAPisapositivelychargedmoleculeandtheproductsinCellsome®-DOTAP-basedcataloguseDOPCasamatrixlipidandvariousamountsofcationicDOTAPlipidfrom0.5%to50%withvariouszetapotentials.IfyouarelookingforDOTAPbasedliposomesforgenedelivery,thenyouneedtoseetheGenesomeliposomecatalog.
IfyouarelookingforthecationicDOTAP-basedliposomesforDNA/RNAdelivery,pleasesee Genesome®liposomecatalog.

ebiomall.com






>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
但是有在转染前,将细胞进行重新传代的情况,这样做的目的在于保持细胞的活性状态。
“转染前将细胞以1.5-4.5X104 cells/well 的量(具体接细胞数请参考表1)接种在孔板中,于37℃, 5%CO2 的条件下进行培养,18-24小时( sf9细胞为3-4小时)后转染。”
DXY721认为:
悬浮细胞和贴壁细胞在转染过程中差别不大,主要差别在于转染后的筛选,当然如果你做的是瞬时转染就不存在筛选的问题了。
其实转染的过程很简单,问题是能不能转的进去的,转染率能有多少,转进去是否可以稳定表达目的蛋白等等。
我们也是用脂质体做悬浮细胞的转染,说明书上都有具体的操作过程,将脂质体和目的基因按比例混合,然后加到细胞悬液里就OK了,说的简单,实际上还是有一些细节要注意的,比如脂质体和目的基因混合的比例,转染的细胞数,细胞的代数,细胞的状态,有的还要求在转染的前一天传代一次,不过不要怕,这些在脂质体说明书上都有明确的说明,按照说明书做就可以了。
jinghuanlv认为:
悬浮细胞和贴壁细胞转染还是有很大不同的。
脂质体转染的原理基于电荷吸引原理,先形成脂质体-DNA复合物,散布在细胞周围,然后通过细胞的内吞作用,将目的基因导入细胞内,而脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会比悬浮细胞高出很多倍,所以,脂质体转染时悬浮细胞的转染效率要明显低于贴壁细胞。
我们实验室转染悬浮细胞是用的电穿孔法,目前为止,悬浮细胞转染的最好方法还是电转,我们实验室用的电转仪是Bio-Rad的,使用条件是电压250V,电容975uF,效果不错,不妨一用。
可以用移液器将细胞吸出来并高速离心,沉淀重悬于PBS中洗涤,接着就可以裂解提取蛋白了。可以用超声,酶解等等,裂解后离心收集上清。
做的比较好的,一般都是上海地区的,你可以看下基尔顿生物。
GFP发出绿色荧光的原理是Ca离子进入GFP的beta-barrel结构中引起的特定能级,因此只要这个结构仍然保持着,就可以发出荧光。
由于GFP的beta-barrel结构非常稳定,一些版本的GFP蛋白(如EGFP)甚至能抵抗94C的高温几分钟而不完全变性,因此想在溶液状态下去掉GFP的荧光是很难的,一般需要用光漂白法。
基于其非常稳定的结构,即便细胞被固定了,仍然会有一部分的GFP蛋白保持其构象而发出荧光。此时荧光可能较弱。在荧光显微镜下是有可能看得到的。