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Omega Bio-Tek/E.Z.N.A.® Bacterial RNA Kit/50-preps/R6950-01
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Omega Bio-Tek/E.Z.N.A.® Bacterial RNA Kit/50-preps/R6950-01
品牌 / 
Omega Bio-Tek
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R6950-01
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Overview

The E.Z.N.A.® Bacterial RNA Kit is designed for isolation of high quality total RNA from variety of bacterial strains. Up to 1 x 109 log- phase bacterial cells can be processed. This kit uses an improved lysis procedure to ensure the complete lysis of bacterial cells. Purified RNA is suitable for downstream applications such as RT-PCR and hybridization techniques.

Specifications

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.

FeaturesSpecifications
Downstream ApplicationPCR, qPCR, real-time RT-PCR, microarray, Northern blot, poly-A purification
Elution Volume50-100 μL
Starting MaterialBacteria
Starting AmountUp to 3 mL culture, 1 x 109 cells
RNA Yieldup to 100 µg
Processing ModeManual, centrifugation/vacuum
Throughput1 - 24
RNA Binding TechnologySilica Mini spin column
Binding Capacity100 µg

Protocol and Resources

Product Documentation & Literature

PROTOCOL

R6950 E.Z.N.A. Bacterial RNA Kit

SDS

R6950 SDS

Product Data

Total RNA purified using E.Z.N.A.® Bacterial RNA Kit.

Figure 1. Total RNA purified using the E.Z.N.A.® Bacterial RNA Kit. RNA was extracted from 2 mL bacterial samples as follows: sample 1 from Pseudomonas arginosa, sample 2 from Enterococcus faecalis, and sample 3 from Staphylococcus aureus. Total RNA (10% of total purified RNA) was analyzed on a 1% agarose gel to demonstrate yield and quality of the RNA. M: CL5000 DNA Marker.

Total RNA purified using E.Z.N.A.® Bacterial RNA Kit.

Figure 2. Total RNA purified using the E.Z.N.A.® Bacterial RNA Kit. RNA was extracted from lag phase E. coli cultures as follows: sample 1 from 0.5 mL culture, sample 2 from 1.0 mL culture, sample 3 from 2 mL culture, and sample 4 from 3 mL culture. Lanes 1-4 represent the first 100 µL elution. Total RNA (50% of total purified RNA) was analyzed on a denaturing formaldehyde agarose gel to demonstrate yield and quality of the RNA. M: CL5000 DNA Marker.

Publications

View Publications
  • Molecular cloning and characterization of bile salt hydrolase in Lactobacillus casei zhang Wen Yi Zhang, Ri Na Wu, Zhi Hong Sun, Tian Song Sun, He Meng, He Ping Zhang
  • Triclosan resistance in clinical isolates of Acinetobacter baumannii Yagang Chen, Borui Pi, Hua Zhou, Yunsong Yu, Lanjuan Li
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ABIN11130345 mLantibodies-onlineAntibodies-Online,inc.Antibodies-Online/Native Gel Sample Loading Buffer (2x)/ABIN1113034/5 mL 查看更多>
北京绿源伯德生物科技有限公司在发布的RNA LOADING BUFFER,2X RNA上样缓冲液,2X供应信息,浏览与RNA LOADING BUFFER,2X RNA上样缓冲液,2X相关的产品或在搜索更多与RNA LOADING BUFFER,2X RNA上样缓冲液,2X相关的内容。 查看更多>
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蛋白电泳上样缓冲液产品名称:蛋白电泳上样缓冲液产品简介:上海通善生物是蛋白电泳上样缓冲液最权威的供应商,提供报价,咨询,技术服务,欢迎来电021-61806666咨询选购。产品库存:现货。产品价格:询价。供 应 商:通善生物。供应商地址:上海市闵行区金平路788弄166号。蛋白电泳上样缓冲液说明书:蛋白电泳上样缓冲液其它信息:货号产品名称级别K610-1L0.1X SSC BUFFER WITH 0.2% SDS超纯级K611-1L0. 查看更多>
2021-07-24
DNA是真核生物的遗传物质,由脱氧核苷酸组成。它是双链互补螺旋结构,定向酶切技术就是用限制性内切酶去切割DNA片断,由于酶具有专一性,一种酶只能识别一种特定的脱氧核苷酸序列,所以可以用特定的这种酶去切割相应的DNA片断,进而达到定向切割的目的。... 查看更多>
货号:WBR0303A 查看更多>
4 × Protein Native PAGE Loading Buffer 1 ml × 2支 □ 4 × Protein Native PAGE Loading Buffer组成 Tris-HCl pH8.0 (25℃) 40 mM Glycerol 40% Bromophenol Blue 0.032% 查看更多>
2021-07-23
免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation)是以抗体和抗原之间的专一性作用为基础的用于研究蛋白质相互作用的经典方法。是确定两种蛋白质在完整细胞内生理性相互作用的有效方法。当细胞在非变性条件下被裂解时,完整细胞内存在的许多蛋白质-蛋白质间的相互作用被保留了下来。当用预先固化在argarose bea... 查看更多>
5×SDSLoadingBuffer是由上海希匹吉生物技术有限公司代理或销售的CPGBIOTECH品牌的试剂,产品来源于上海。上海希匹吉生物技术有限公司是中国最权威的5×SDSLoadingBuffer试剂销售服务商之一,在上海等地方销售5×SDSLoadingBuffer试剂已经多年。生物在线为您提供众多企业5×SDSLoadingBuffer仪器产品及图片,以便挑选到性价比高,合适的5×SDSLoadingBuffer产品 查看更多>
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蛋白上样缓冲液
蛋白电泳上样缓冲液包括2%SDS , 0.1%溴酚蓝 10%甘油,SDS是保证样品中的所有蛋白带电荷一致,减少电荷对电泳结果的影响。还原剂是让二硫键处于断开状态,保证蛋白分子的线性.
溴酚蓝作用是指示上样蛋白的跑胶时标记的,甘油是增加上样重量的,以免漂浮,煮沸是使蛋白变性的永久保存
不太好操作,里面有小分子的SDS、β巯基乙醇,较难浓缩,不是有4X的买么,还可以自己配啊,网上都有现成的配方,溴酚蓝、SDS、β巯基乙醇。。。

提了蛋白,加上样缓冲液煮过,但发现还是有很多胶状的沉淀,比较黏稠,堵枪头。于是自作主张又超声了一次,结果跑了一次,内参都没有。煮过之后的蛋白不能超声么?

作为指示剂,因为溴酚蓝呈蓝色,而蛋白质是白色,在SDS-凝胶中不明显,且溴酚蓝的相对分子量比蛋白质(绝大部分)小,电泳时速度比蛋白质稍快,因此当溴酚蓝到达电泳槽底部(可看蓝色调带),则电泳结束。
4×蛋白上样缓冲液使用说明123
songjunlai19922016-03-22

请问有人知道蛋白上样缓冲液应该怎么配制吗?请赐教

提取蛋白,western上样前,加上样缓冲液煮,煮之前是澄清透明的,煮完就有挺多的沉淀生成,不知道什么原因,怎么解决,求帮忙!
50×TAE Buffer 配制方法:
1。称量氨基丁三醇 242g,Na2EDTA.2H2O 37.2g 于1L烧杯中;
2。向烧杯中加入约600ml去离子水,充分搅拌均匀;
3。加入57.1ml的冰乙酸,充分溶解;
4。用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存。
使用时稀释50倍 即1×TAE Buffer
10×TBE Buffer配制方法:
1。称量氨基丁三醇 108g,Na2EDTA.2H2O 7.44g,硼酸55g 于1L烧杯中;
2。加入约700ml去离子水,搅拌均匀;
3。用NaOH调pH至8.3,加去离子水定容至1L后,室温保存。
使用时稀释10倍 即1×TBE Buffer
(以下内容仅供参考)
2乘SDS-PAGE上样缓冲液(20ml体系)
1.0mol/L Tris-HCL (pH 6.8) 2ml
1.0mol/L DTT 4ml
SDS 0.8g
溴芬蓝 0.04g
甘油 4ml
dd水 定容至20ml
4℃冰箱保存,可以不分装,我们实验室一般用三个月以上
先配1.0mol/L的DTT,双蒸无菌水溶解4℃冰箱保存,配上样缓冲液的时候加入就可以了,都混匀保存也没问题的
急求20mmol/L,pH5的柠檬酸磷酸盐缓冲液如何配制???需要详细的配置过程,分别需要柠檬酸和磷酸氢二钠多少克???谢谢!!!!缓冲液是做为上样缓冲液用的,谢谢大神们给予一些指点
蛋白质(经硫酸铵和等电点沉淀后用1MKCL复溶)一加2x或6X上样缓冲液就产生沉淀,试问何故?怎样解决?
经搜索发现类似的问题,但人家的裂解液中含盐酸胍,而我的溶液中是不含含盐酸胍啊。
请做蛋白质的行家帮忙解答,谢谢。

实验小白刚刚起步,一般采用等质量上样的方法,但我算的上样量是没加缓冲液之前的,加完缓冲液蛋白样品浓度会变么?师姐说不会变,就按照算好的上样量加就行。

前几天提的样按50ug算每个样本的上样量也只有上5ul左右,按师姐说的就那么上了,结果发完光只有内参有条带,目标蛋白一点也没有,但以前做过一次是出过一点趋势的,而且这次整个过程感觉做的很仔细,发完光结果也很干净整齐,所以我在想是不是跟上样量有关系?上样缓冲液加入之后会使样本浓度稀释五倍么,这样的话上样量就得乘5。

变性前后加上样缓冲液的区别是什么呢?哪一种会改变蛋白浓度从而改变上样量呢?


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