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Promega/SP6 RNA Polymerase/1kit/P4084
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制备和纯化 mRNA 显示蛋白实验的相关实验步骤、实验技巧、实验protocol、实验经验及常见问题。<link rel="stylesheet" type="text/css" href="/ueditor/theme... 查看更多>
Sucrose Density FractionationLEVEL II Figure 14.2 Sucrose gradient distribution of RNA Materials 10% and 40% (w/v) Sucrose 80.02 M sodium acetate, pH 5.1, cont 查看更多>
Quantization of gene expression requires that an accurate measurement of a specific transcript is made. In this paper, a quantitative reverse transcription-pol 查看更多>
虽然 FDD 利用了真核 mRNA 的多聚腺苷酸 [poly(A)+] 位点,但并不推荐使用 poly(A)+RNA,因为在反转录反应中可能污染寡核苷酸,并因此增加假阳性的概率。所以建议使用总 RNA 做 FDD 分析。本实验来源于 PCR 实验指南(第二版),作者:种康,瞿礼嘉。 查看更多>
由 Marligen Biosciences 提供的 Rapid Total RNA System 可从各种样品中提取 RNA,且产量和质量非常稳定。本实验来源于 PCR 实验指南(第二版),作者:种康,瞿礼嘉。 查看更多>
Northern BlotI. Electrophoresisclean gel box with NaOH and/or SDS, 2 hours to overnight, rinse with water prepare Agarose gel solution [1 % Agarose, 1 x MOPS, 查看更多>
Purification of poly(A)+ RNA from total RNA0. (Optional)Before using Oligotex-dT30, I recommend to wash Oligotex-dT30 to remove fine particle of latex. To wash 查看更多>
我先说我有的质粒和菌株:PPIC9K,PPIC9,PPICZahphaA,B,C以及一个改造的PPIC9K载体,EcoRI和BamHI双酶切,C末端引入了一个6histag菌株:GS115,KM71,X33,以及十几个空载体对照菌株我的酵母表达Protocol:>10ug质粒用Sal线性化,加1/10体积的3M 查看更多>
DNA ultrapurificationThe success of DNA purification can have profound consequences on the success or failure of any injection effort. This summary of techniqu 查看更多>
在提取过程的第一阶段细胞的 RNA 酶应尽快灭活。一旦内源的 RNA 酶被破坏,RNA 受损的可能就大大降低,而纯化的过程就可以按合适的速度进行。本实验来源「分子克隆实验指南第三版」黄培堂等译。 查看更多>
We routinely produce dsRNA by in vitro transcription of a PCR generated DNA template containing the T7 promoter sequence on both ends (I. Primer Designed dsRNA 查看更多>
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《rna干扰》ppt课件123
zkk4042021-08-02
我自己看了几十篇文献后做的。应用方面主要是病毒学,有用你就顶一下。

RNAi技术的原理与应用(一).ppt(218.5k)
RNA提取中各种试剂的作用 123
guojing郭晶2021-07-25

Trizol法和试剂盒提取组织中的RNA,哪个方法更可靠和精确呢?谢谢!

我的RNA提出来只有50ng/ul左右.
想用takara的CDNA建库试剂盒,发现总RNA至少要50mg/ul以上.
主要是我做的东西没有人测过序,所以没有引物做RT-PCR.
想问问有没有谁用过能用微量RNA建cDNA的试剂盒的?
要那种自己带个头,不用引物的...
TRIpure 试剂是直接从细胞或组织中提取总RNA的试剂。它在破碎和溶解细胞时能保持RNA的完整性。加入氯仿后离心,样品分成水样层和有机层。RNA存在于水样层中。收集上面的的水样层后,RNA可以通过异丙醇沉淀来还原。在除去水样层后,样品中的DNA和蛋白也能相继以沉淀的方式还原。乙醇沉淀能析出中间层的DNA,在有机层中加入异丙醇能沉淀出蛋白。共纯化DNA对于样品间标准化RNA的产量十分有用。 无论是人、动物、植物还是细菌组织,该方法对少量的组织(50-100mg)和细胞(5×106)以及大量的组织(≥1g)和细胞(>107)均有较好的分离效果。TRIpure 试剂操作上的简单性允许同时处理多个的样品。所有的操作可以在一小时内完成。TRIpure抽提的总RNA能够避免DNA和蛋白的污染。故而能够作RNA印迹分析、斑点杂交、poly(A)+选择、体外翻译、RNA酶保护分析和分子克隆。如果是用于PCR,当两条引物位于单一外显子内时,建议用扩增级的DNase I来处理抽提的总RNA。并用溴化乙啶染色,可见许多介于7 kb和15 kb之间不连续的高分子量条带(mRNA和hnRNA成分),两条优势核糖体~5 kb (28S)和~2 kb(18S),低分子量RNA介于0.1和0.3 kb之间 (tRNA, 5S)。当抽提的RNA用TE稀释时其A260/A280比值≥1.8。 TRIpure 试剂能促进不同种属不同分子量大小的多种RNA的析出。例如,从大鼠肝脏抽提的RNA琼脂糖凝胶电泳A260/A280比值≥1.8。

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E.Z.N.A. Total RNA Kit I
步骤
A. 真核细胞和组织
自己需要的材料:
β-巯基乙醇、70%乙醇(DEPC水配置)、除RNase的枪头和EP管。
材料的最佳量
想得到最佳的产量和好的Hibind RNA柱的纯化效果,选用正确的细胞和组织量是最重要的。Hibind RNA柱的最大处理量是可变的,根据细胞和组织的类型。最大的结合能力是100ug的RNA。TRK裂解缓冲液的最大裂解能力是1*107个细胞或30mg的组织。
细胞的步骤
1. 用500ul的TRK裂解缓冲液裂解细胞(≤1*107),使细胞团松散,轻轻弹EP管或者用枪头吹旋,再用漩涡振荡混匀。
a) 使用前每1ml TRK裂解缓冲液加入20ul的β-巯基乙醇。
b) 如果是单层的组织培养细胞(成纤维细胞,内皮细胞等),可以直接在细胞培养器里裂解细胞。完全吸去培养基后直接加TRK裂解缓冲液至细胞中。加700ul的TRK到T35细颈瓶或250px的培养皿中,更小的培养器加500ul的TRK。将液体布满整个器皿表面,确保细胞裂解完全。将裂解产物转移至1.5mlEP管中。
c) 如果细胞是悬液培养,收集细胞(≤1,500rpm or 400*g)*5min,弃上清,加入TRK裂解液,漩涡振荡混匀,转移到1.5ml EP管中,进行步骤2。
2. 匀浆化裂解产物
“裂解和匀浆化样品”-第四页有详细的说明,如果细胞≤1*105,漩涡振荡1min。不完全使样品匀浆化会显著的减少RNA的产量还容易造成柱子堵塞。
a) 用匀浆器30 s,使样品匀浆化。
b) 用钝的针头的注射器(0.9mm直径),至少吹打5次是样品匀浆化。注射器要除RNase。
3. 将匀浆后的裂解产物转移至Homogenization Spin Column中,离心,≥1,4000*g, 3min,室温。将离心收集的流出液转移到新的EP管中。转到总RNA分离中第4步。
组织的步骤:
1. 用500ul的TRK裂解缓冲液裂解细胞(≤30mg),使用前每1ml TRK裂解缓冲液加入20ul的β-巯基乙醇。
500ulTRK裂解液最大裂解能力30mg,难破碎的组织大于20mg就用700ul的TRK裂解液。当组织量超出建议的最大量时,也不要超过40mg。
组织样品匀浆化参照第四页选择一种方法只用,除非是使用液氮,
2. 离心,≥1,5000*g, 5min, 室温。
3. 转移上清至,Homogenization Spin Column中,离心,≥1,3000*g, 3min,室温。将离心收集的流出液转移到新的EP管中。
总RNA分离:
4. 在裂解产物中加入50%体积(250ul-350ul)的无水乙醇(96%-100%)混匀,漩涡振荡20s。
5. 样品转移到Hibind RNA Mini column上,离心管的最大容量为750ul,加完乙醇后可能会形成沉淀。所以要充分振荡将所有的混合液加入到柱子上。室温离心,10,000*g,0.5-1min。弃去流出液(透过柱子流出到离心管里的液体)。
6. 将柱子放在一个新的2ml收集管中,加上300ul RNA wash buffer I。室温离心,10,000*g, 0.5-1min。同样弃掉流出液。
7. DNase I 消化(选择性)
在我的实验中没有做这一步。
8. 将柱子再放到一个新的2ml收集管中,加入400ul RNA wash buffer I, 室温离心,10,000*g, 30s,弃流出液。
9. 将柱子放到2ml收集管中,加入500ul RNA wash buffer II(乙醇稀释过的),室温离心,10,000*g, 30s,弃流出液。注意:使用前RNA wash buffer II 必须要用无水乙醇稀释(48ml),按照标签上的说明。
10. 用500ul RNA wash buffer II洗涤一次柱子,同上一步骤一样。室温离心,10,000*g, 30s,弃流出液。然后在空收集管中,以最大转速离心柱子,≥12,000*g, 2min, 室温,使的HiBind 基质完全干燥。
11. 转移柱子到一个新的1.5ml的Ep管中,(试剂盒中没有提供),加入50-100ul的DEPC水洗脱柱子(试剂盒中提供)。确保水直接加到了柱子的基质上。10,000*, 1min, 室温。如果RNA的总量大于30ug,可以进行二次洗脱。
注意:可以选择性地,用大一点的体积洗脱RNA。如果进行二次洗脱,总RNA的量会增加,但是浓度会降低,因为80%以上的RNA会在第一次时被回收。在加柱子前将水加热到65℃并室温孵育柱子5min会增加产量。

求助:最近要提取血浆中的RNA,不知道用哪种试剂好,查了好多资料,有用Trizol,TrizolLS,RNAisoBlood和天根。但我从没做过,求各位大神给点意见。提取的RNA用于qPCR。

rn2502试剂盒提取rna还需要哪些试剂
准备RNA用的试剂:70%乙醇(用DEPC处理后的水稀释新开封的无水乙醇),DEPC处理后的水,新开封的三氯甲烷等,
容器:玻璃试剂瓶需要180度,8个小时以上烘烤
Eppendorf管和“枪头”:RNase-free的管子和“枪头”(可以直接买到);或者普通的ep管和“枪头”,但是需要DEPC水浸泡后,高温灭菌(121度,20-40分钟)。
如果需要使用研钵和药品匙,研钵和药品匙也是需要180度,8小时以上的烘烤。
还需要没开封的手套,提取RNA时,尽量勤换手套,少说话,尽量不要对着样品吹气。
试剂盒提取RNA123
妞YN4w2021-08-01
看是什么试剂盒,有一些试剂盒是有专门针对性提取的,比如是提取小RNA类的,或者是提取转录组RNA类的,都有,如果是一般的没有说明的那么是总RNA的
想请问各位大神~哪个厂家的真菌RNA提取的试剂盒性价比高点呀~~本人毕业论文,想做基因表达的~~查了一下天根RNAprepPure植物总RNA提取试剂盒,跟生工的酵母总RNA快速抽提试剂盒与真菌总RNA快速抽提试剂盒,就想在这三个里面选~~但天根的比较贵呀~~生工的效果有不知道如何~?想问一下各位有木有用过这几个试剂盒的?那样好一点呀~~求回复~~~~谢谢各位了~
我在提一种植物的RNA用的是上海华舜生物公司的TRIZOL按照他上面的说明书,我应该用System4那种方法,可是里面要用到RNA沉淀试剂,不知道是什么东西,试剂盒只有一瓶,是RNAexReagent。其它的就没有了。不知道那东西是什么,要自己配吗?RNA沉淀试剂是什么东西?
天根RNA试剂盒DP419提取的蛋白可以做WB吗:分三层后,上层是RNA,那个中间层的蛋白怎么提出来纯化一下做WB?请高手解答,非常感谢!
前段时间做了一批大鼠模型,提了大鼠血液和淋巴细胞还有肺组织的RNA。量太大了只能选择试剂盒,方便,速度快。Qiagen的效果的确好可是太太贵了,要是像我这样提上百分样品的RNA估计老板不大破产,也得小破产了。比较一下后选择了OMEGA公司得RNA提取试剂盒。
下面是我自己翻译得中文说明书,大家批判着看吧,起码起个借鉴作用。有需要的就看看吧。版主也给加点分哦!:D:I
还有一些具体实验操作中自己总结的经验,不要着急整理好了就会发上来和大家一起分享。:D:D

OMEGArna提取试剂盒中文说明.doc(34.0k)
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