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MCLAB/HoTaq Taqman probe One-step Real-time RT-PCR Kit/HTRT-200/1 Ea
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MCLAB/HoTaq Taqman probe One-step Real-time RT-PCR Kit/HTRT-200/1 Ea
品牌 / 
MCLab
货号 / 
HTRT-200
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TheMCLAB'sHoTaqTaqmanprobeOne-stepReal-timeRT-PCRKitoffersauniquesystemforperformingprobebasedrealtimeRT-PCRinasinglestepwithinasingletubewithanoptimizedreactioncondition,whichutilizesourownproprietaryengineeredQuantumScriptHDreversetranscriptase andhot-startTaqDNAPolymerasewithhighpurity .Noadditionalreagentsorstepsarerequiredoncethereactionisinitialized.ThisnovelkitenablestoquantitativelydetectspecificRNAtargetswithhighsensitivity,unparalleledconvenience,andawidedynamicrange.

Description:
RT-PCRiswidelyusedformeasuringgeneexpressionintissuesamplesorcellculturesystems.TrADItionally,itisperformedintwoseparatereactionsteps.First-strandCDNAisreverse-transcribedfromtotalRNAorpoly(A)+RNAusingareversetranscriptase.Next,thecDNAisamplifiedbyPCRusingaDNApolymeraseinanotherreaction.


TheMCLAB'sHoTaqTaqmanprobeOne-stepReal-timeRT-PCRKitoffersauniquesystemforperformingprobebasedrealtimeRT-PCRinasinglestepwithinasingletubewithanoptimizedreactioncondition,whichutilizesourownproprietaryengineeredQuantumScriptHDreversetranscriptase andhot-start Taq DNAPolymerasewithhighpurity .Noadditionalreagentsorstepsarerequiredoncethereactionisinitialized.ThisnovelkitenablestoquantitativelydetectspecificRNAtargetswithhighsensitivity,unparalleledconvenience,andawidedynamicrange.


Thetechniquereducestheriskofcross-contaminationandminimizestheuseofreagents.ThismethodisparticularlyusefulforapplicationsinwhichtheexpressionofasmallnumberofgenesthatmustbeanalyzedinmanydifferenttotalRNAsamples,androbustlyamplifinghigh-abundancetranscriptsfromcrudetotalRNApreparations.

Application:
-GeneExpressionAnalysis
-Genotyping
-Real-TimePCR

Primerandprobedesign:
Toachievethebestperformance,appropriatesoftware,suchasABIPrimerExpressTM,shouldbeused.

RecommendedReactionConditions:
Onecycleat50°Cfor10to30minutes*;
Onecycleat95°Cfor10minutes;
Followedby40cyclesof:95°Cfor15seconds,60°Cfor1minute#;
4°Chold(optional)
*ReactiontimecouldbeadjustedaccordingtoRNAinput.
#Cyclenumberandannealingtemperatureareexperimentdependent.

RecommendedStorageCondition: -20°C

Notes:
Toachieveaccuratequantification,itishighlyrecommendedto(1)avoidanyRNasecontamination;(2)designprobeonsensestrand;(3)useprimerconcentrationfrom100nMto300nM;(4)shortentimebetweensettingupreactionandloadingplateontoPCRmachine.

Advantages:
One-stepRT-PCRproductsarefaster.
mclab_pcr_image003.gif

Reference:
1.Holland,P.M.,Abramson,R.D.,Watson,R.,andGelfand,D.H.1991.ProceedingsoftheNationalAcademyofSciencesUSA88:7276-7280.
2.Livak,K.J.,Flood,S.J.A.,Marmaro,J.,Giusti,W.,andDeetz,K.1995.PCRMethodsandApplications4:357-362.
3.Lee,L.G.,Connell,C.R.,andBloch,W.1993NucleicAcidsResearch21:3761-3766.


 

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定量PCR(即时聚合酶链锁反应,Real-time Polymerase Chain Reaction,简称 Real-time PCR、即时PCR),又称定量即时聚合酶链锁反应(Quantitative real time polymerase chain reaction,简称 Q-PCR/qPCR/rt-qPCR、定量即时PCR、即时定量PCR),是一种在DNA扩增反应中,以萤光染剂侦测每次聚合酶链锁反应(PCR)循环后产物总量的方法... 查看更多>
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实时荧光定量PCR(RealTime PCR) 实时荧光定量PCR(RealTime PCR)【相关服务:DNA测序】,DNA测序 8月2日,绿叶制药(02186.HK)母公司绿叶集团宣布收购新加坡基因测序公司Vela Diagnostics。这标志着绿叶集团正式进军精准医疗市场,而该公司的基因测序技术将与绿叶集团现有业务产生协同效应,形成从诊断到治疗的精准医疗全产业服务。绿叶集团人士告诉21世纪经济报道记者:“这家公司生产的设备、试剂 查看更多>
  自1987年秋以来,PCR技术的应用开创性地推动了产前单基因缺陷者及携带者的 诊断。目前PCR还不能用于诊断所有已知缺陷疾病,但极大地扩大了实验诊断学家对 诊断方法的选择。JohnHopkins大学的研究人员表明,在诊断基因缺陷疾病方面PCR技 术具有快速、准确、操作灵活等特点。每项进展的实例在以后 查看更多>
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MiRNA定量PCR MiRNA定量PCR【相关服务:DNA测序】,DNA测序 8月2日,绿叶制药(02186.HK)母公司绿叶集团宣布收购新加坡基因测序公司Vela Diagnostics。这标志着绿叶集团正式进军精准医疗市场,而该公司的基因测序技术将与绿叶集团现有业务产生协同效应,形成从诊断到治疗的精准医疗全产业服务。绿叶集团人士告诉21世纪经济报道记者:“这家公司生产的设备、试剂已经拿到批文,接下来在国内注册就可以销售了。目前该公 查看更多>
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第一部分:竞争子的设计;第二部分:竞争子RNA的合成、纯化和定量。本实验来源于 PCR 实验指南(第二版),作者:种康,瞿礼嘉。 查看更多>
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我明年就毕业了,可是论文还没投,快急的不行了,做的实时荧光绝对定量PCR,跑标曲带样用的Bio-RadIQ5机子,可是结果出来不知道分析的是哪个指标(ct,ctmean,sq,sqmean,logsq),不会处理数据,求高人指点啊,拜托了拜托了,好人好报啊
如果你想做荧光定量PCR的根据实验思路来说应该需要一下试剂和仪器
1.模板提取(一般为RNA):Trizol、氯仿、异丙醇、无水乙醇、DEPC处理水

2.模板浓度测定:分光光度计或NanoDrop

3.逆转录:逆转录试剂盒(或者一步法试剂盒),这一步可以用普通PCR做,也可以用水域做。

4.荧光定量PCR试剂:通常有用SYBR Green Mix做的,但是这里建议你用EvaGreen做,灵敏度和平行性都要好于SYBR Green,并且如果你那是ABI或者Stratagene的PCR如果用SYBR Green还需要加一步Rox很麻烦。

5.其他:除了以上的那些还需要离心管、PCR管或板(Axygen反应比较好)、移液枪等,暂时就想到这么多。

组织用Trizol法提取总RNA浓度、纯度都很好,但逆转录后跑PCR,CT值偏高,内参的在22-27之间,目的基因在30-36之间,不知道是怎么回事,如何来解决,求高手赐教。我用的Takara的试剂盒

跑到还有半小时的时候,跳出一个对话框:“analysiscannotproceed:notenoughsamplesdefined”,最后做出来的结果有扩增曲线但是没有熔解曲线,请各位大神帮忙解释一下。

定量pcr主要测的是基因的表达水平,比如不同时期 基因的表达有所差异,具体差异了多少倍,就可以使用了。
你这个结论并不对。两步法,三步法并没有本质区别,信号的读取都是在每一个延长结束后读取。定量PCR一开始的时候也是三步法的。

两步法,是因为设计引物的时候把退火温度设为酶的工作温度,而且定量PCR的产物都很短,需要的时候都短,所以两步法更方便。三步法的话,花的时间长,不利于快速实验。
Taq DNA聚合酶使用说明书123
姆姆EH172017-10-03
1单位(U)Taq DNA 聚合酶力定义74°C、30钟内性化马哈鱼精DNA作模板/引物10nmol脱氧核苷酸掺入酸容物质所需酶量图" class="ikqb_img_alink">
荧光定量PCR是400什么意思
实时荧光定量PCR溶解曲线杂乱是什么原因?调退火温度有用吗?怎么能改善啊

荧光定量PCR是通过荧光染料或荧光标记的特异性的探针,对PCR产物进行标记跟踪,实时在线监控反应过程,结合相应的软件可以对产物进行分析,计算待测样品模板的初始浓度。|||原理不同:荧光定量pcr实时监测与dna结合的荧光染料激发的荧光;普通pcr通过检测插入dna中核算染料的量来测定pcr最终产物量,一般是紫外光。反应要求:荧光定量对扩增片段有较高的要求,一般为100-300bp;普通定量可以扩增长点的片段。如果不需要检测产物分子量大小,荧光定量可以不进行电泳就对产物进行定量分析,普通pcr必须电泳。结果:荧光定量可以实现精确定量,普通pcr则不行。荧光定量体现可以看到整个扩增过程,可以看到扩增效率,溶解温度,直接得到的标准曲线等,这些是普通pcr无法实现的。|||这个还真不大清楚|||貌似前者是定量,后者属于半定量。|||简单的讲PCR技术最早是用于扩增一段特异的PCR片段,用于克隆、测序等实验,后来也将其用于样本中特异的PCR片段有无或非很粗的相对定量,而荧光定量PCR技术则是为了测定样本中特异的PCR片段相对及绝对量,是一种测定特异的PCR片段含量的方式。如测定病人样本中病原体的含量、实验样本中某一特定的mRNA的含量等。前些年有人讲过普通PCR后,通过电泳也可以进行定量,其实是将PCR产物的定量与PCR样本中模板定量相混了。近两年没有人再讲这类的话了。|||引物设计是sybr定量PCR法的最大难点,机会好的话,设计一对引物就能得到很好的结果,机会不好的话7、8对引物也出不来,我就遇到过这样的问题,我在prime5.0上设计了8对引物,符合实验要求的一对也没有,我把退火温度提高到了68度也没能把引物二聚体搞定,后来我想通了,可能我这对引物把其它序列扩增出来了,而且扩增效率很高(我一个同学设计了十几对才找到一对好用的)。记住primer5.0设计出来的100%好的引物,到了定量PCR上不一定好使,这是我最大的经验。定量pCR的引物对匹配度要求不高,我现在使用的引物就有几个碱基不匹配,但实验结果很好。有一个办法可以帮助我们绕过引物设计这道坎,直接到罗氏网站上专区上找引物。罗氏网站在线有一个引物设计软件,你只要找好你目的基因的种属,输入你的片段序列就可以得到你要的引物。这个软件有很大的好处,他会自动地把你的种属序列背景扣除,最大限度地去除引物二聚体产生的可以。
RNA 定量的程序很多, 比较用了Ribogree,Agilent BioAnalyser,spectrophotometer,Nanodrop and the BioRad Experion 来定量同样的样品。结果显示没有哪两种方法得到同样的分析数据。所以用不同的方法进行定量是不明智的。因此,我们需要用统一套定量分析方法来完成所有RNA样品的评价。
RNA 质量
RNA 质量主要包括RNA的纯度(没有蛋白质和DNA的污染)以及完整性。传统的RNA质量的评价通过分析A260/A280的比值或者对琼脂糖凝胶电泳rRNA的条带的分析。Agilent Bioanalyser/BioRad Experion 微流体毛细电泳系统也是一种较新的分析方法。Agilent的2100也是一种十分好的分析RNA质量的方法,它通过分析18S以及28S rRNA的分析图谱,通过图谱来反应RNA的量和完整性,其完整性通过完整性系数(RIN)来反应。样品的RINs在10-4之间。10代表完整的RNA,4代表没有完整的rRNA带。
由于以上的方法并非100%准确定反应mRNA的完整性,因为他们只是反应rRNA的量来间接测定mRNA的完整性。这里推荐一种方法:采用GAPDH的3’:5’分析法。
我们使用oligo dT进行逆转录,然后对逆转录的cDNA用multiplex荧光定量评价。设计三个taqman探针来定量三种相同大小的扩增产物。探针设计的位点分别位于3’;5’以及中部。扩增产物的之间的比值反应RNA的完整性。如果3’;5’的比值在1,反应较高度完整性,如果高于5说明降解。
QRT-PCR抑制物的组成
QRT-PCR抑制物严重减少了PCR的灵敏度以及热动力学反应,高度的抑制还导致假阴性的结果。
抑制物的来源:生物样品的核酸抽提以及共沉淀中的混合物,盐离子,尿素,血红素,heparin以及IgG.
是否有抑制物的评价体系:
1.通过对目的样品进行梯度稀释进行PCR扩增效率的检测
2.通过内部扩增对照来反应样品处理过程中样本的情况
3.用细菌检测临床样品的抑制
4.通过标准人工合成的扩增进行RT-PCR来反应目标检测物的抑制情况
反转录反应系统
1.RT和PCR单一酶系统
2.RT和PCR分离的酶系统
3.RNA逆转录引物的选择
引物主要有三种:
1.随机引物:随机引物,特别是6nt引物对所有的靶位点不产生十分稳定一致的结果,建议使用15nt的随机引物.
2.oligo-dT:只能用于mRNA完整的样品,特别有polyA .而且对于一些特殊的变异体以及较长的3’UTR的区域比较困难
3.特异引物:最特异最灵敏的方法。特别RNA量足够情况下建议使用此法。
PCR 测受体太不靠谱,mRNA的量和蛋白量不是线性关系,尤其是受体。

如果要测量细胞表面2个受体的比率,最好用流式细胞仪来测量