一、原理醋酸纤维薄膜电泳是用醋酸纤维素薄膜作为支持物的电泳方法。带电颗粒在电场力作用下，向着与其电性相反的电极移动的现象称为电泳。由于各种蛋白质都有特定的等电点，如将蛋白质置于pH值低于其等电点的溶液中，则蛋白质将带正电荷而向负极移动。反之，则向正极移动。因为蛋白质分子在电场中移动的速度与其带电量、分子的形状及大小有关，所以，可用电泳法将不同的蛋白质分离开来。血清中含有多种蛋白质，它们的等电点都在pH 7.5以下。将血清放于pH 8.6的缓冲液电泳时，所有的血清蛋白都带有负电荷，在电场中将向正极移动。由于各种血清蛋白在相同pH时所带电荷数量不等，分子颗粒大小不一，因而泳动速度不同，经电泳被分离开来。本实验以醋酸纤维素薄膜（简称CAM）为支持物分离血清中的不同蛋白质。它是一种良好的呈均一泡沫状疏松薄膜，厚约120μm具有一定的吸水性。二、实验材料、仪器及试剂1．材料：健康人血清或鸡血清2．仪器：电泳仪 电泳槽3．试剂：（1）醋酸纤维素薄膜；（2）pH8.6 巴比妥缓冲液（离子强度0.06～0.07）：取巴比妥0.83克，巴比妥钠6.38克，加蒸馏水加热溶解后，定容至500ml。（3）染色液：取氨基黑10 B 0.5克，溶于50ml甲醇中，再加冰醋酸10ml，蒸馏水40ml混匀。（4）漂洗液：95%乙醇4.5ml，冰醋酸 5ml，蒸馏水50ml混合。（5）透明液：95%乙醇80ml，冰醋酸20ml混合。三、实验方法1．准备薄膜：将切割整齐的 2.5×6cm的薄膜条，浸入巴比妥缓冲液中浸透后，取出，用吸水纸吸去多余缓冲液。2．点样：仔细辩认薄膜的粗糙面与光滑面，在粗糙面距离薄膜一端1.5cm处，用铅笔轻轻划一条直线。用玻棒蘸上血清样品，涂于盖玻片边缘处（边缘长度应比膜条宽度窄），将此边缘按压在直线上。注意：样品应点在薄膜的粗糙面一侧。待血清完全渗入薄膜后，将膜面翻转，点样面（粗糙面）朝下，置电泳槽中，薄膜点样端放于负极一侧。3．电泳：打开电源，调节电压 110～130V，电流0.4～0.6m A/cm宽，电泳时间45～60分钟，电泳完毕后，关闭电源。4．染色漂洗：将薄膜从电泳槽中取出，直接浸入染色液中约5分钟，再转入漂洗液中反复浸洗3～4次，直至背景颜色脱净为止。此时，正常血清蛋白在薄膜上显示出五条区带。从前端至点样处的方向分别为清蛋白、α1-球蛋白、α2-球蛋白、β-球蛋白及γ-球蛋白。5．定量测定：时可将膜条用滤纸压平吸干，按区带分段剪开，分别浸在体积 0.4mol/L氢氧化钠溶液中，并剪取相同大小的无色带膜条作空白对照，进行比色。或者将干燥的电泳图谱膜条放入透明液中浸泡2～3分钟后，取出贴于洁净玻璃板上，干燥后，即为透明薄膜图谱，可用光密度计直接测定。四、注意事项1．点样好坏是电泳图谱是否清晰的关键，点样量要适当。2．漂洗时应多漂洗几次，直至无蛋白区底色脱净为止。

蛋白质用醋酸纤维素薄膜电泳可分为五个区带，γ-球蛋白的等电点约为7.3，在pH8.6的巴比妥缓冲液中，带的负电荷最少，因此在电场中比其它蛋白质移动速度慢。而清蛋白等其它蛋白质的等电点均小于7.3（pl分别为4.9、5.06和5.12），因此在电场中比γ-球蛋白移动速度快，其中清蛋白等电点为4.88带负电荷最多，速度最快，且清蛋白在血清中含量最多。所以最接近点样线的是γ-球蛋白，最远离点样线的最粗的线是清蛋白。【没有查到答案就只能自己整理了，顺便来造福一下人类】

根据它的迁移率，查表就能对比出来。这个的前提是你实验过程没有太大误差