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细胞自噬过程的观察和检测方法 实验方法
来自 : 蚂蚁淘
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤
正常培养的细胞自噬活性很低,不适于观察,因此,必须对自噬进行人工干预和调节,经报道的工具药有:
 
一、自噬诱导剂
(1)BredeldinA/Thapsigargin/Tunicamycin:模拟内质网应激
(2)Carbamazepine/L-690,330/LithiumChloride(氯化锂):IMPase抑制剂(即Inositolmonophosphatase,肌醇单磷酸酶)
(3)Earle"s平衡盐溶液:制造饥饿
(4)N-Acetyl-D-sphingosine(C2-ceramide):ClassIPI3KPathway抑制剂
(5)Rapamycin:mTOR抑制剂
(6)XestosponginB/C:IP3R阻滞剂
 
二、自噬抑制剂
(1)3-Methyladenine(3-MA):(ClassIIIPI3K)hVps34抑制剂
(2)BafilomycinA1:质子泵抑制剂
(3)Hydroxychloroquine(羟氯喹):Lysosomallumenalkalizer(溶酶体腔碱化剂)
 
除了选用上述工具药外,一般还需结合遗传学技术对自噬相关基因进行干预:包括反义RNA干扰技术(Knockdown)、突变株筛选、外源基因导入等。
 
细胞经诱导或抑制后,需对自噬过程进行观察和检测,常用的策略和技术有:
 
1、观察自噬体的形成;
2、在荧光显微镜下采用GFP-LC3融合蛋白来示踪自噬形成;
3、利用WesternBlot检测LC3-II/I比值的变化以评价自噬形成;
4、检测长寿蛋白的批量降解;
5、MDC(Monodansylcadaverine,单丹磺酰尸胺)染色;
6、CellTrackerTMGreen染色:主要用于双染色,但其能染所有的液泡,故也属于非特异性的;
 
在研究自噬相关蛋白时,需对其进行定位。由于自噬体与溶酶体、线粒体、内质网、高尔基体关系密切,为了区别,常用到一些示踪蛋白在荧光显微镜下来共定位:
 
Lamp-2:溶酶体膜蛋白,可用于监测自噬体与溶酶体融合。
LysoTrackerTM探针:有红或蓝色可选,显示所有酸性液泡。
pDsRed2-mito:载体转染后表达一个融合蛋白(红色荧光蛋白+线粒体基质定位信号),可用来检测线粒体被自噬掉的程度(Mitophagy)。
MitoTraker探针:特异性显示活的线粒体,荧光在经过固定后还能保留。
Hsp60:定位与线粒体基质,细胞死亡时不会被释放。
Calreticulin(钙网织蛋白):内质网腔
 
(注意:这些蛋白均为胞浆蛋白,爬片或胰酶消化的细胞在做免疫荧光前需先透膜(permeablize),可采用0.1%SDS处理。)
 
 
 
 
 
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