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Pierce/1-Step Ultra TMB-ELISA Substrate Solution/250 mL/34028
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Pierce/1-Step Ultra TMB-ELISA Substrate Solution/250 mL/34028
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辣根过氧化酶使试剂中的发光物(luminol)氧化并发光,而试剂中含有增强剂这使得发光增强了1000倍。在免疫印迹中,将复杂的蛋白混合物经sds-page分离,并转移到固相膜上(如nc、pvdf)等,用于免疫学检测,经HRP标记的抗体与膜上的蛋白直接(标记一抗)或间接(标记二抗)反应。... 查看更多>
嘉美生物是一家主要从事Annexin V,信号转导抗体,重组人和动物蛋白,磷酸化抗体,各种动物ELISA试剂盒,生物实验服务等研发与销售的高科技生物公司,免费热线:400-698-4168。 查看更多>
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2021-08-09
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底物是什么_123
吴文昊埼2018-06-12
底物就是参与反应的物质,就像化学反应中的反应物。比如,蛋白酶的底物就是蛋白质、脂酶的底物就是脂类、淀粉酶的底物就是淀粉。
相关疾病:肝炎肾衰竭休克今天遇到1ICU病人病史是休克肾功不全审生化单时遇到一情况ALT与AST结果与2天前的结果差异极大查看生化反应曲线,如下图很明显是底物耗尽的图,需要稀释,用生理......
可以。比如化学本质为蛋白质的酶在蛋白酶的作用下发生水解,此时该酶就是被作用的底物了。
在做蛋白酶的动力学常数。[S]=100[E],不同浓度的底物ph基本接近,反应温度相同,酶在此温度下稳定。以产物的OD表示速率。但是,竟然发现底物浓度越低反应速率越快。以购买的胰蛋白酶做control,竟然也有同样趋势。有没有人能解释下为什么啊?
酶既可以作为催化剂,也可以作为另一个化学反应的反应物。
底物为参与生化反应的物质,可为化学元素、分子或化合物,经酶作用可形成产物。一个生化反应的底物往往同时也是另一个化学反应的产物。
特定的底物会在特定的酶作用下,合成或分解。
酶,指具有生物催化功能的高分子物质。 在酶的催化反应体系中,反应物分子被称为底物,底物通过酶的催化转化为另一种分子。几乎所有的细胞活动进程都需要酶的参与,以提高效率。与其他非生物催化剂相似,酶通过降低化学反应的活化能来加快反应速率,大多数的酶可以将其催化的反应之速率提高上百万倍;事实上,酶是提供另一条活化能需求较低的途径,使更多反应粒子能拥有不少于活化能的动能,从而加快反应速率。酶作为催化剂,本身在反应过程中不被消耗,也不影响反应的化学平衡。酶有正催化作用也有负催化作用,不只是加快反应速率,也有减低反应速率。与其他非生物催化剂不同的是,酶具有高度的专一性,只催化特定的反应或产生特定的构型。

决定酶促反应最大速度Vm的因素是什么?是同一底物,尽管加不同种酶,其Vmax都相同吗?可以画曲线图解释一下吗?可是根据米曼氏方程来看又有点矛盾,Km变大,Vmax也需变大,才可使v变大。所以题目所述到底应该怎么理解呢

我做了ELISA方法学建立的实验,可惜按照三版全国临床检验规程上的方法配制底物液,显色偏浅,请高手指教,或者给我新的配方.或者给我指导,谢谢!
如果我们将一抗用酶来标记,然后直接和底物反应,理论上也是行的通的,但是为什么还要用到二抗来反应呢?刚接触这个东西,请大家指点,谢谢.
可以考虑以下几种情况:

1,底物DNA上没有该限制酶的识别、切断位点。特别是一些经过重组等处理的DNA,碱基易发生缺失、变化等。

2,限制酶识别位点上的A或C被甲基化。部分限制酶对识别位点中的碱基是否被甲基化比较敏感,从而无法切断该位点。

3,底物不纯。如果底物DNA中有限制酶阻害物质,回影响限制酶的酶切作用。在此种情况下,底物DNA须重新进行精制。

4,限制酶的识别、切断位点在底物DNA的高级构造中所处的位置,对酶切反应也有一定的影响,例如,限制酶NaeI在切断pBR322DNA时,就有着非常难以切断的部位。

5,限制性内切酶本身无活性或低活性
加入1400ppm的亚铁,而双氧水则作为强氧化剂使用.5~4:双氧水与硫酸亚铁的质量比为1:2。硫酸亚铁中2价铁离子与双氧水(H2O2)的强氧化还用作用生成羟基自由基的过程。通常按质量浓度双氧水。也就是说Fe2+,比如除COD,还与药剂含量及水质因素有关:H2O2=1。 以水中COD含量计算其投加量则H2O2,一般有机物体现为还原性,那么硫酸亚铁的比例就要大一些,所以若是除COD的话。具体的投加量并不是固定的:3换算即可,可先计算出所需双氧水投加量,可依照以下计算公式芬顿药剂的投加比例量计算 芬顿药剂主要组成包括硫酸亚铁与双氧水,在实际应用中,这两种药剂也常被单独用于废水处理中,硫酸亚铁主要作为还原剂:1。 芬顿药剂投加量除了与水中污染物含量有关(有机物一般体现为还原性):COD的质量浓度为1,按照需要氧化200ppm的COD计算,再按硫酸亚铁跟双氧水的体积比一般为,加亚铁前保证处理反应器中的pH值在3、混凝剂使用,可相应投加多一点的双氧水,可根据水中污染物进行调节.0,反应40min左右。两者组合技术则为高级强氧化技术:H2O2=1,如果芬顿体系中如果氧化性物质多:COD=1,如水中还原性物质比较多:3,具体根据污染物浓度进行正交实验来确定,如果还原性物质多双氧水就要多一点,因此芬顿药剂的投加比例及浓度需要根据实际情况进行调整(硫酸亚铁芬顿试剂投加过量对废水的影响)。 先确定好芬顿硫酸亚铁与双氧水投加顺序,再加入700ppm的双氧水:3的摩尔浓度进行投加,相反的氧化性物质比较多时则Fe2+的投加比例须增大,再根据废水性质计算出芬顿试剂的投加量:1,摩尔浓度Fe2+:1
大家好:
我是新手,来到丁香园看到有这么多的热心人,感到很高兴!!我也有很多问题需要大家的帮助!!实验已经作了一年了可是毫无进展,心里很是着急!!
我的课题是以外消旋的苯基乙二醇为底物,用假丝酵母催化生成手性纯的S-型苯基乙二醇,由于是老课题,所以目标是提高转化反应的底物浓度和菌体的使用批次(目前菌体使用一批后便不能再使用)。
我曾试过很多种方法,但均效果不大!我试着在转化过程中添加醛类,酮类,醇类作为辅助底物,增加菌体的使用批次。可效果不好,特别是添加了醇类后还有的起了反作用,因为我的这个转化过程中涉及到NAD和NADPH的再生。(其转化过程是酵母先催化将外消旋的苯基乙二醇变为酮,再将酮还原为醇,经过这一过程就将外消旋的苯基乙二醇变为手性纯的S-型了)
我还试过用固定化的方法,海藻酸钙包埋法,可是这样底物浓度就更低了!!
我现在不知道下一步该如何做了,很着急,请大家帮帮忙。谢谢了!!谢谢
科学网10月29日上海讯(记者黄辛)今天,国际顶级学术期刊《自然》(Nature)在线发表了复旦大学生物医学研究院徐彦辉教授课题组的论文。该项研究成果揭示了TET蛋白底物偏好性机制,对研究多种疾病的发病机制,尤其对血液肿瘤(如髓系白血病)治疗性药物开发有重大意义。
这篇题为“晶体结构揭示TET蛋白介导的氧化反应底物偏好性机制”的研究论文,首次报道了TET蛋白对三种DNA甲基化衍生物不同催化活性的分子机制,为基因组中5-羟甲基胞嘧啶相对稳定存在提供了分子水平的解释。该论文是徐彦辉课题组在DNA甲基化领域作出的又一突破性成果。组长徐彦辉为复旦大学生物医学研究院研究员,复旦大学附属肿瘤医院兼职教授。该课题组曾于2013年在《细胞》杂志报道TET蛋白的三维结构,于2015年初在《自然》杂志报道DNA甲基化建立的机制研究(参考徐彦辉课题组网站,http://xtal.fudan.edu.cn/index-ch.html)。
据悉,人体基因组DNA是生命遗传信息的基本载体,生命延续和繁衍需要DNA上的一种“甲基化修饰”。“甲基化修饰”具有调控人体内特定基因的表达和决定细胞命运的作用,可使细胞发生程序化的改变。哺乳动物基因组的胞嘧啶上会产生甲基化修饰,称为5-甲基胞嘧啶(5mC,即第5种碱基)。而TET蛋白是哺乳动物细胞中的一种氧化酶,可以执行DNA去甲基化功能。近期研究发现,TET蛋白在去甲基化过程中,将5mC氧化为5hmC(5-羟甲基胞嘧啶,第6种碱基)后,可继续催化5-hmC转化为5-fC(5-醛基胞嘧啶,第7种碱基)和5-caC(5-羧基胞嘧啶,第8种碱基)。其中,5hmC在细胞内相对稳定存在,且其含量远远高于5fC和5caC。但这一现象一直没有合理的生物学解释。徐彦辉课题组综合利用结构生物学,生物化学和计算生物学等研究方法,揭开了这一谜底。
徐彦辉课题组的生化实验表明,TET蛋白对5mC具备很高活性(产生5hmC),而对5hmC(产生5fC)和5fC(产生5caC)的活性很低。TET蛋白就如同连续的三个扶梯,在转化不同碱基的情况下,其转化速度明显不同,导致产生较多的5hmC和少量的5fC及5caC。结构研究发现,5mC在TET蛋白催化口袋中的取向使得它很容易被催化活性中心俘获并被氧化为5hmC。5hmC和5fC由于已经有氧的存在,其在催化口袋中被限制住,不容易发生进一步的氧化反应,导致TET蛋白对这两种碱基活性降低。在这样的催化能力差异下,TET会很顺利将5mC产生5hmC,一旦5hmC产生,TET将不容易使其进一步氧化为5fC和5caC,导致细胞内5hmC相对稳定,并且其含量远远高于5fC和5caC。在特定的基因中区域,TET蛋白可能被特定的调控因子激活,会跨越能垒阻碍产生高活性的TET,连续氧化为5fC和5caC。这使得5mC在TET蛋白催化下更容易被氧化为5hmC。这一发现解决了困扰表观遗传学领域的一个难题,也为揭示其他蛋白质逐步催化反应的分子机制提供了新思路和新方法。
据悉,该项工作是由复旦大学徐彦辉课题组与中国科学院上海药物所罗成课题组合作完成的,徐彦辉课题组的胡璐璐博士和程净东博士,以及罗成课题组的卢俊彦博士是该项工作的主要完成人。该项研究的结构数据是在中科院上海光源BL-17U,国家蛋白质科学中心BL-19U等线站上采集。
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