The Wheaton Erlenmeyer Flask is made of Lexan Polycarbonate Resin that has outstanding mechanical, optical, electrical and thermal properties. This resin conforms to flame retardant standards and is scratch resistant. This resin also meets the requirements of United States Pharmacopeia (USP) XXII Class VI. The Flasks are manufactured in a class 10K clean room. The flasks are certified pyrogen-, DNase- and RNase-free and are packaged particulate free and wrapped in an easy tear, sterile bag
Wheaton offers both flat bottom and baffled Erlenmeyer Flasks. Both Erlenmeyer Shake Flasks are supplied standard with a patented vented DuoCap. The DuoCap, made of medical grade polypropylene, has a 0.22
| SKU | WPFPC0125S |
|---|---|
| Color | CLEAR |
| Capacity(mL) | 125 |
| Pyrogen Free? | Yes |
| DNAse, RNAse Free | Yes |
| Cap Color | Blue |
| Plastic Material | Polycarbonate |
| Cap Material | Polypropylene |
| Sterile | Yes |
| Cap/ Closure Size | 38-430 |
| Bottle Style | Erlenmeyer |
| Bottle Material | Plastic |
| Diameter (mm) | 71 |
| Height (mm) | 114 |
| Closure Style | Vented DuoCap |
Product Literature
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我做的临床试验，就想简单检测PBMC细胞的凋亡，上流式检测，有啥检测效果好的步骤推荐一下，谢谢
各位师兄师姐：
我近期负责的课题，需要进行人类血液淋巴细胞和DC细胞的分离和培养，但我在方面懂的不多，想求助这方面的大神们。后续我需要做RT-qPCR，western-blot、免疫荧光等实验，我应该去多少ml全血比较好？全血怎么保存？怎么进行分离？后续怎么培养和保存？
谢谢！
我的步骤：
1、16－22天小鼠颈椎脱臼法处死后，75%酒精浸泡30秒消毒，睾丸取出后置预冷PBS，40分钟（路上所需时间）后开始处理。
2、剔除白膜，剪碎睾丸。0.25%胰酶（含edta）1.5ml/个睾丸37°C消化30-50分钟，等体积DMEM/F12含10%FBS终止消化，1000r/MIN离心5分钟，弃上液。
3、加0.1%胶原酶消化30分钟，过200目网筛，1000r/MIN离心5分钟，弃上液。
4、DMEM/F12含10%FBS5ml重悬后转如培养瓶，入孵育箱37°C5%CO2培养。
请教各位，我到底是哪里有问题，是胰酶消化的时间长了吗？
想用二步酶消法来分离毛乳头细胞，一个毛囊大概有多少个毛乳头细胞？处于生长期的毛囊在显微镜下有什么特点？先谢谢大神们指点
经过无数次的大鼠肝脏插针灌注，忍受过实验结果不理想的打击和折磨，今天终于成功了，特分享些相关图片以鼓励还在奋战中的网友们。
近期根据经验总结了原代肿瘤细胞分离培养的2个关键因素。
1、组织的活性：如果我们取的都是坏死的组织或者结缔组织，我相信任何方法都不可能分离出来活的细胞的。另外，取完的组织要冷藏存放，并且越早分离越好，最好在24h内，最久不要超过48h。
2、组织的消化：在组织消化前，组织剪的越碎越好（1mm3左右为宜），组织的大小决定了组织的消化时间，不同组织消化时间差别较大：例如肺癌在2h-2.5h；食管癌在1个多小时。
希望可以帮到各位研友，另外如果大家有更好的经验可以一起来讨论！
前辈们好，近期老板布置任务需要分离小鼠肝脏细胞，查了好多文献，都没有写胶原酶的cat#,只写sigma订购，想请教下，是否有人做过，可以提供下货号和使用方法吗？十分感谢。另外，文中还提到digitonin，如果有一起用到的话麻烦帮我查看下，谢谢。
最近在做黄体化颗粒细胞分离培养，但是注射器吸取大卵泡液或者从下颗粒细胞离心时就会凝固成果冻状，大家有碰到过这样的事情么？已经好几次了，一直是这样，大家给支个招吧
大概步骤如下：c57小鼠大概六七只，酒精浸泡后不处死取出，迅速打开胸腔取出心脏放入冰PBS冲洗。待心脏取出完毕，冲洗移入有PBS青霉素小瓶中用眼科剪剪成较小组织块。
之后加入0.1％胰酶消化（之前浓度为0.25％，活细胞数量更少。）吹打1min.放入孵箱中3min.弃去上清，加入∥型胶原酶（0.1％）吹打10Min，放入孵箱15Min。取出后加入1ml胰酶。吹打1Min后加入含血清F12培养液终止消化，800转离心5Min。之后取沉淀重悬种板。90Min差速贴壁法纯化心肌细胞。
48h后只有少量（个位数）细胞贴壁，呈三角形。
第一次用0.25％胰酶时离心后有大量鼻涕样物质。
第二次胰酶浓度减小后没有，但细胞沉淀少，且为半透明微白。是不是离心时间不够。
感觉细胞整体状态都不好，几次都没有大量心肌细胞，更不用说观察到心肌细胞搏动。
老师们能不能帮忙分析一下是哪里的原因呢。
有没有比较稳定的小鼠乳鼠心肌细胞分离步骤呢。
希望大神快点出现。
