A unique combination of PCR products and a number of proprietary plasmids digested with appropriate restriction enzymes to yield 12 fragments, suitable for use as molecular weight standards for agarose gel electrophoresis. The DNA includes fragments ranging from 100-3,000 base pairs. The 500 and 1,500 base pair bands have increased intensity to serve as reference points. The approximate mass of DNA in each band is provided (0.5 μg a load) for approximating the mass of DNAin comparably intense samples of similar size.The ladder is ready-to-use, and is premixed with loading buffer dye for direct loading on gel.Loading dye contains orange G & xylene cyanol FF as tracking dyes.
Range: 100bp - 3000bp
Number of bands: 12
Recommended Load: 5 μl/well (0.5 μg)Stable for shipping at ambient temperatures
Storage/Handling:Store at 25°C for 6 months. Store at -20°C for 24 months.
Comparison between 100 bp and 100 bp PLUS ladders
Guide to Choosing Your DNA Ladder
GoldBio活体成像技术：早在1999年由美国哈佛大学Weissleder博士率先提出了分子影像学(molecularimaging，MI)的概念，即应用影像学的方法对活体状态下的生物过程进行细胞和分子水平的定性和定量研究。活体成像便是基于分子影像学孕育而生的，通过这个成像系统，可以观测活体动物体内肿瘤的生长及转移，感染性疾病的发展进程，特定基因的表达等生物学过程。活体成像技术主要采用生物发光（bioluminescence）与荧光（fluorescence）两种技术。★生物发光是用荧光素酶基因标记细胞或DNA。★荧光技术则采用荧光报告基团（GFP、RFP,Cyt及dyes等）进行标记。★这一技术对肿瘤微小转移灶的检测灵敏度极高，不涉及放射性物质和方法,非常安全。操作极其简单、所得结果直观、灵敏度高。
活体成像两种检测技术介绍活体成像特点优点缺点生物发光检测bioluminescence★荧光素酶（Luciferase）对基因、细胞和活体动物进行标记；★荧光素酶催化底物（例如荧光素钾盐）反应后，会产生化学发光。这种光是由化学反应而来，不需要激发光；★标记方法是通过克隆技术，将荧光素酶的基因插入到预期观察的细胞染色体内，通过对克隆细胞进行筛选，培养出能稳定表达荧光素酶的细胞株。再将细胞株转移至特定的小鼠体内形成模型。★特异性强，无自发荧光；★高灵敏度，在体内可检测到几百个细胞，检测的深度在3-100px；★定量精确 ★信号较弱，检测时间较长；★仪器精密度要求较高；★细胞或基因需要转基因标记；★不可用于人体，不适用于抗体、多肽等标记荧光检测fluorescence★采用荧光报告基因(GFP、RFP等)或荧光染料进行标记；★需要外接激发光源，利用报告基因、荧光蛋白质或染料产生的荧光，就可以形成体内的生物光源。★荧光染料、蛋白标记能力强；★信号强，成像速度快，操作简便，实验成本较低；★未来可用于人；★适用范围广，可以是动物、细胞、微生物，也可以是抗体、药物、纳米材料等。★存在自发荧光，影响灵敏度；★光容易被动物组织吸收；★检测深度受限；★背景光干扰，定量准确度低
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不懂得请别粘贴那些有的没的，浪费资源
采用的给全部分
1、DNA提取问题：现在核算提取试剂盒大部分都是吸附柱法,相信你应该不会操作错误,如果提取之后进行核酸定量结果很低的话,试着再最后一步溶解核算的时候把水稍微加温（37℃就可以了）,溶解时间稍微长一些,然后再离心的时候采用分次离心,比如开始你用200ul溶解的话,你可以分两次用100ul水溶解离心,这样可以提高DNA的产率.
2、电泳问题：如果你核酸定量浓度不低的话就考虑电泳问题,电泳的时候加上1kb的marker,如果marker跑不出来说明你凝胶有问题,一般只要marker跑出来了,DNA浓度又比较高,而没有条带这样的现象很少见,DNA提取比较简单而且相当稳定,本人当时做甲基化提取的DNA有一次拿出来电泳忘了放回冰箱了,结果大夏天的在外面放了一天,心怀忐忑的进行了一次电泳,结果条带依然给力,一点都没有降解.
buffer P1：除去RNA
buffer P2：裂解细胞
buffer P3：沉淀DNA
buffer WA、buffer WB：都是洗涤液（这两个之间有什么区别我也不清楚）
TE：溶解DNA.
能有效的处理土壤样品中一些很难处理的组分如： 真细菌孢子（eubacterial spores）、内芽孢（endospores）、格兰仕阳性菌（gram positive bacteria）、酵母（yeast）、线虫（nematodes）、海藻（algea）、真菌（fungi）等。2. 样品处理过程中使用的 MT Buffer和Sodium Phosphate Buffer可在整个提取过程中有效的保护核酸，并最大限度的降低RNA污染。3. 基于硅珠的纯化方法，可有效地去除腐植酸、多元酚等PCR抑制物4. 纯化所得的DNA可直接用于PCR、酶切都后续实验之中。5. 对腐植酸含量特别高的样品，附加额外的处理方法。注：对于去除腐植酸的方法在使用以下任何一种方法之前，请预先准备5.5M的异硫氰酸胍（Guanidine Thiocyanate）溶液方法A：1.当操作到土壤DNA提取试剂盒的第九步时，使用14,000 x g (~约5秒)的短时离心替代硅珠的自然沉降，移除上清。2.用1ml事先准备好的异硫氰酸胍溶液洗涤、重悬硅珠。3.14,000 x g (~约5秒)短时离心该离心管，除去上清。4.重复上述的洗涤步骤，直到硅珠恢复到原先的颜色。5.最后一次洗涤之后，用1ml的异硫氰酸胍溶液重悬硅珠，将600μl重悬液转移到SPIN filter里，14,000 x g离心1分钟。6.移除接液管中的废液，将剩余的重悬液转移至SPIN filter里，14,000 x g离心1分钟，弃去废液。7.从提取试剂盒操作说明的第十二步开始继续操作。方法B：1.将下列成分混合于1.5ml的离心管中，组成腐植酸洗涤液：978 μl Sodium Phosphate Buffer122 μl MT Buffer250 μl PPS2.充分混匀后，全速离心1分钟，将上清转移到一个新的离心管中（容量大于或等于2ml）3.加入等体积的5.5M的异硫氰酸胍溶液、混匀。4.完成了土壤试剂盒操作说明中的第九步后，将500μl的腐植酸洗涤液加入SPIN filter5.14,000 x g离心1分钟，弃去废液。6.重复上述的洗涤步骤，直到硅珠恢复到原先的颜色。7.从提取试剂盒操作说明的第十二步开始继续操作。
大家都用过哪些DNA提取试剂盒，能不能推荐几种
