Features:
-Excellentgenedeliveryefficiencyinmostcelltypesincludingdividingandnon-dividingorprimarycells.
-MultipleSEROtypes(AAV-1,AAV-2,AAV-3,AAV-4,AAV-5,AAV-6,AAV-8,AAV-9,AAV-DJ/8andAAV-DJ).
-Persistenttransgeneexpression.
-Induceefficientgenesilencing.
LargeshRNA/miRNA/gRNAAAVcisvectorinventoryforconstructingAAVcisplasmidwithaspecificpromoterandreporter:
| ForConventionalshRNA/miRNA/TuDrAAVProduction | |||||
Single-promotershRNA/miRNAAAVcisvector | Dual-promotershRNA/miRNArAAVcisvector | ||||
Promoterless |
| Promoterless | CMV | eGFP | |
| ForCRISPR/Cas9rAAVProduction | |||||
Single-promoterCRISPR/Cas9AAVcisvector | Dual-promoterCRISPR/Cas9AAVcisvector | ||||
Promoterless | Empty | Cas9 hCas9 SpCas9 hSpCas9 SaCas9 AsCpf1 hAsCpf1 ftCas9 st1Cas9 cjCas9 cdCas9 ciCas9 ncCas9 st3Cas9 nmCas9 mgCas9 nsCas9 | Promoterless | CMV | Cas9 |
ServiceDescription:
1.Design,synthesizeandcloneshRNA/miRNAintoAAVcisvectors.
2.LargescaletransfectionofAAV·HT™293cellsinto2xcellstack.
3.HarvestrAAVfollowedbypurificationviaadvanced2xCsClultra-centrifugationtoobtainclinicaltrialgradeofrAAVvector*.
4.Desalting,filtersterilization,andAAVtitrationviaqPCR.
rAAVSerotypesWeOffer:
AAV-1,AAV-2,AAV-3,AAV-4,AAV-5,AAV-6,AAV-7,AAV-8,AAV-9,AAV-PHP.B,AAV-DJ/8andAAV-DJ.
RequiredMaterials:NCBIaccession#,shRNAtargetsequence,validatedsiRNAorvalidatedshRNAsequence;miRNAaccession#,pre-miRNAormaturemiRNAorTuD(toughdecoy)miRNA.
TurnaroundTime:3~4weeks.
Deliverables:>1.0mLsuperpurifiedinvivograderAAVvectorat>1E+13VG/mL*.
Weofferdiscountfornewcustomer,pleaserequestaquotewithustoday.
WealsooffertruncatedcustomshRNAAAVservice,pleaserequestaquotewithustoday.

Figure1.AcomparisonofpurityandinfectivityofrAAVvectorsfromdifferentsourcesshowingsuperpurifiedandsuperinfectious(closetoclinicaltrialgrade)rAAVvectorpreparedviaouradvanceddoubleCsClultra-centrifugationapproach.
A.rAAVvectors(total1E+9VGperlane) fromdifferentsourceswereresolvedonSDS-PAGEfollowedbysilverstaining. Lane1:GMPmanufacturedrAAVvectorfromCHOP;Lane2:rAAVpreparedviaouradvanced2xCsClultra-centrifugationapproach;Lane3:rAAVfromVectorCoreofBCM;Lane4:rAAVfromourcompetitor"V";Lane5:rAAVfromourcompetitor"C";Lane6:ProteinMarker.
B.SuperinfectiousrAAVvectorpreparedviaadvanceddoubleCsClultra-centrifugation. Leftpanel:rAAV9-GFP(total5E+9VG)fromourcompetitor"V"injectedtomouseeye;Rightpanel:rAAV-9-GFP(total5E+9VG)purifiedviaadvanced2xCsClultra-centrifugationinjectedtomouseeye. 
Figure2.AcomparisonofinfectivityofrAAVvectorsfromdifferentsourcesshowingsuperpurifiedrAAVpreparedviaadvanceddoubleCsClultra-centrifugationapproachissuperinfectious.
rAAV1-GFP(total2E+9VG)fromdifferentsourceswereinjectedtomousemuscletissue. TheGFPfluorescencewasvisualized3weekspostinjection. A.rAAV1-GFPfromourcompetitor"V";B.rAAV1-GFPfromourpre-maderAAVsstockpurifiedviaadvanceddoubleCsClultra-centrifugation. C.QuantificationdatashowedthatoursuperpurifiedrAAV(bar2)is~9timesmoreinfectiousthanthat(bar1)preparedviaconventionalCsClultra-centrifugation.
*Finalviralyieldmaydependonthenatureoftransgene.
ebiomall.com
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
>
DXY721认为:
悬浮细胞和贴壁细胞在转染过程中差别不大,主要差别在于转染后的筛选,当然如果你做的是瞬时转染就不存在筛选的问题了。
其实转染的过程很简单,问题是能不能转的进去的,转染率能有多少,转进去是否可以稳定表达目的蛋白等等。
我们也是用脂质体做悬浮细胞的转染,说明书上都有具体的操作过程,将脂质体和目的基因按比例混合,然后加到细胞悬液里就OK了,说的简单,实际上还是有一些细节要注意的,比如脂质体和目的基因混合的比例,转染的细胞数,细胞的代数,细胞的状态,有的还要求在转染的前一天传代一次,不过不要怕,这些在脂质体说明书上都有明确的说明,按照说明书做就可以了。
jinghuanlv认为:
悬浮细胞和贴壁细胞转染还是有很大不同的。
脂质体转染的原理基于电荷吸引原理,先形成脂质体-DNA复合物,散布在细胞周围,然后通过细胞的内吞作用,将目的基因导入细胞内,而脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会比悬浮细胞高出很多倍,所以,脂质体转染时悬浮细胞的转染效率要明显低于贴壁细胞。
我们实验室转染悬浮细胞是用的电穿孔法,目前为止,悬浮细胞转染的最好方法还是电转,我们实验室用的电转仪是Bio-Rad的,使用条件是电压250V,电容975uF,效果不错,不妨一用。
其次要看下你选择单位的规模如何,上海这边的,你可以看下基尔顿生物,原代细胞培养,动物造模,整体课题外包。
本人研究生
GFP发出绿色荧光的原理是Ca离子进入GFP的beta-barrel结构中引起的特定能级,因此只要这个结构仍然保持着,就可以发出荧光。
由于GFP的beta-barrel结构非常稳定,一些版本的GFP蛋白(如EGFP)甚至能抵抗94C的高温几分钟而不完全变性,因此想在溶液状态下去掉GFP的荧光是很难的,一般需要用光漂白法。
基于其非常稳定的结构,即便细胞被固定了,仍然会有一部分的GFP蛋白保持其构象而发出荧光。此时荧光可能较弱。在荧光显微镜下是有可能看得到的。
各位版友求助,
我使用Hek293构建转染模型,瞬转5质粒,用lipo2000做转染体系。
转染48h,发现荧光较强的细胞都在爬片的边缘,比例十分少。是因为我添加试剂的手法不对吗。
同时也发现加入转染体系后细胞状态特别差。想问一下用lipo2000时可以用无双抗的10%FBSDMEM吗。我转染前6h现在用的是纯DMEM,不含FBS。
请各位大神帮忙
但是有在转染前,将细胞进行重新传代的情况,这样做的目的在于保持细胞的活性状态。
“转染前将细胞以1.5-4.5X104 cells/well 的量(具体接细胞数请参考表1)接种在孔板中,于37℃, 5%CO2 的条件下进行培养,18-24小时( sf9细胞为3-4小时)后转染。”

