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毛细管电泳在蛋白质分析中的应用_图文
来自 : 蚂蚁淘
实验方法原理
实验材料
仪器、耗材
实验步骤

「操作条件选择」具体见「其他」


1.毛细管电泳柱的制备:清洗、反应与柱平衡;


2.移开进样端的缓冲溶液池,换上样品管;


3.使用低压或电迁移方式进样;


4.再换上缓冲溶液池;


5.施加分离所需的电压。进行电泳分析。

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注意事项
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其他

操作条件选择


1.毛细管尺寸


最常用的为内径为25~75um熔融石英毛细管,从分析时间上考虑,毛细管应尽可能得短,常用的有效长度(进样端至检测窗之间的距离)为20~50cm。


2.高压电源


HPCE所用的高压电源要能提供30kV的直流电压和200~300uA的电流。欲获得迁移时间的高重现性,须使电压稳定在±0.1%。电源极性应能切换。恒压方式最为常用,当进行等速电泳或温度不能很好控制时,则应采用恒流或恒功率方式,从而获得恒定的迁移时间。


3.温度控制


由于进样和迁移时间决定于溶液的黏度,应将温度控制在±0.1℃,这对于操作的重现性是很重要的。采用液体恒温较气体恒温更为有效。


4.进样量


样品区带长度应该小于毛细管长度的1%~2%。样品超载会使峰变宽,峰形畸变。


5.进样方式


采用流体力学的方式,进样量基本不受样品基质的影响;电迁移进样时,进样量决定于每一个组分的电泳淌度,应注意歧视效应带来的影响。


6.样品预浓缩


在等速电泳和等电聚焦分析中,样品在稳态时可被浓缩许多倍,有利于紫外检测分析,但在毛细管区带电泳中,样品区带会展宽,因此常需要采用样品堆积、等速电泳和色谱法,通过对低电导介质的电动进样或压力进样来达到样品堆积的目的。非连续的缓冲系统被用于柱上低浓度样品的浓缩,进样体积较常规方法要大30倍。采用整个毛细管进样技术,样品可以浓缩400~1000倍。


瞬态等速电泳浓缩既可采用典塑的等速电泳电解质系统,也可以在样品中补充高淌度的与分离的样品电荷符号相同的离子(co-ion),而电解质的同号离子具有低淌度。在电泳过程中,由等速电泳模式逐渐转变为区带电泳模式。


色谱法预浓缩是先将样品捕集于一反相或亲和填料,然后用少量溶剂洗脱下来,同时使样品得到净化,如蛋白G和结合亚胺二乙酸金属螯合功能团的固定相。采用很低浓度的缓冲液和孔径非常小的聚丙烯酰胺凝胶进行浓缩,样品中的水扩散入凝胶,盐分同时被脱除,可适用于少量样品的处理。

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