
RetroBeads™逆向示踪荧光微粒是Lumafluor公司首创的逆向示踪产品,且是目前唯一证实有效的示踪微粒(该产品的有效性经数百篇从无脊椎动物到哺乳动物实验的研究论文证实),目前Lumafluor公司的绿色和红色荧光示踪微粒产品只能从本公司采购。
该示踪产品体内注射高度集中不易扩散,信号强,对活细胞或活体无毒,且存留时间大于一年,与大多顺向示踪剂、原位杂交检测技术、免疫组化技术兼容。
部分产品信息如下:
Red Retrobeads (100 µl)
Green Retrobeads IX (100 µl)
Red Retrobeads™IX(100µl)
该说明书总结了大多数使用荧光胶乳微球(beads)作为神经元逆向示踪剂的操作流程,其中关于绿色beads的信息请在本说明书末尾查看。更为详尽的信息请参考Katz,L.C.的以下论文:
1.Katz,L.C.,Burkhalter,A.,andDreyer,W.D.FluorescentlatexmicrospheresasaretrogradeneuronalMarkerforinvivoandinvitrostudiesofvisualcortex.Nature310:498-500(1984)
2.Katz,L.C.andIarovici,D.M.Greenfluorescentlatexmicrospheres:anewretrogradetracer.Neuroscience34:511-520(1990)
Lumafluor高效RetroBeads操作说明
一、包装与稀释:
Lumafluor的beads包装于一支密封的小瓶内,内含的浓缩beads悬浮于蒸馏水中。如使用红色Beads作为神经通路的逆向示踪,其稀释方法推荐采用:大鼠视皮层内可采用1:4比例进行稀释而不减少Beads的荧光标记强度和质量。然而对于首次实验我们不推荐使用稀释的Beads而使用原液进行注射示踪。除蒸馏水外,常规的盐溶液如NaCl、KCl溶液也可作为稀释液。如使用绿色Beads,则强烈建议使用原液,无需稀释。
二、储存:
为避免蒸发,Bead溶液应存放于冰箱内4度冷藏,切忌勿冷冻!冷冻的Beads将失去效用,无法使用。而变干的beads同样也无法使用(无法重悬),该产品并无明显的使用期限,如按要求存放可保存数年。
三、注射:
Beads最好使用压力注射,如1mlHamilton微量注射器或气压注射系统,如需小区域微量注射(30-50nl),可采用末端30-50um直径的玻璃电极注射,而常规的逆向示踪(注射量0.1-0.3ul)可使用更大直径的玻璃电极。尽管如此,即使注入更大的剂量,Beads,也不会明显从注射位点扩散(通常扩散距离少于1mm),因此,为尽量完全标记投射到一个较大神经核团的神经元,需使用多点注射。尽管Beads带有负电荷,但是不建议采用离子渗透法注入示踪Beads。
四、存活时间:
在大多数恒温脊椎动物系统中,检测Beads的最短有效时间是24小时,在48小时内标记强度随着体内注射时间而延长,48小时以后荧光强度基本保持恒定。而在冷血动物中,检测Beads的时间推荐为1周。目前并未检测Beads的最长可检测期,然而在Beads的荧光强度和质量至少可保持在体内14个月以上不变,而细胞可能会被永久标记。目前并未发现Beads在动物或神经元中表现出毒性作用的报道。
五、固定和处理:
标准的固定方法是:0.1MPBS冲洗或灌注后在4%的多聚甲醛(0.1MPBS配制,pH7.4)中固定,用戊二醛固定会产生大量的组织自发荧光,妨碍Beads标记的神经元,并且绿色Beads在戊二醛固定的组织中将完全观察不到,因此应尽量避免采用。如采用冰冻切片,切片应用PBS漂洗后用明胶包被的载玻片贴片晾干,在完全风干后,再用二甲苯透明1分钟,然后用荧光封片剂(Fluoromount或Krystalon)封片。Fluoromount可从AtomergicChemetalsCorp.,(Farmingdale,NY)公司购买;Krystalon可从
Harleco(EMIndustries,Gibbstown,NJ)购买。切片只可短期暴露在乙醇或二甲苯中,但是长时间暴露(大于5分钟)会损坏Beads。Beads对甘油非常敏感,在甘油环境中荧光会迅速萃灭,因此切忌使用甘油类封片剂,如无法避免,还可采用水杨酸甲酯代替甘油作为封片剂。封片后的切片如存放于黑暗环境中,荧光Beads标记的细胞可保持一年不萃灭(但是切片的自身荧光背景会增加)。迄今为止,还没有成功采用塑胶材料包被Beads标记的组织的记录。
观察:
红色Beads中的染料为罗丹明,因此所有与罗丹明匹配的荧光滤镜均可使用,部分老的尼康公司的罗丹明滤镜因背景较高,可能导致无法观察到荧光Beads,通常Zeiss和Leitz的标准罗丹明滤镜可获得较好的观察效果。而大多绿色荧光滤镜均可较好地观察绿色Beads的荧光结果,设置为荧光黄的滤镜可获得较强的明亮荧光,但是同时也带来较高的背景干扰。较宽波段的荧光滤镜比窄波段的荧光滤镜可以获得更强的荧光信号。在长时间的观察和拍照下Beads的荧光也不会淬灭。
在低倍数或低数值孔径物镜下(如X4,X10)通常难以观察到Bads的荧光信号,只有细胞被显著标记,X10的油镜(数值孔径大于0.4)或者更大倍数的物镜才可观察到。通常情况下,X25的油镜可以清晰地观察到低倍镜下无法观察到的标记细胞。物镜的选用对绿色荧光Beads尤其重要。在做出实验失败的决定前(在目标区域无法观察到标记细胞),可先用油镜仔细观察注射位点附近的细胞是否被标记,此处应该观察到大量的标记细胞。
对使用绿色荧光Beads标记的额外提醒:目前已发现绿色荧光Beads在年青动物比年老动物中标记更为理想的情况,此外,年青动物的组织自发荧光(背景)也更低,因此,假如可以的话,在使用绿色荧光Beads做逆向标记实验时请尽量使用年轻动物。
因为绿色荧光Beads的激发光段比红色荧光Beads短,因此组织自发荧光是个麻烦,因此,应采用减少自发荧光的步骤以获得更理想的实验结果,这些方法有:(1)使用更薄的切片,如30微米比40或50微米理想;(2)使用年青的动物;(3)封片后立即观察拍照(随着时间增加背景也会增加)。
对使用色荧光Beads标记的额外提醒:目前已发现绿色荧光Beads在年青动物比年老动物中标记更为理想的情况,此外,年青动物的组织自发荧光(背景)也更低,因此,假如可以的话,在使用绿色荧光Beads做逆向标记实验时请尽量使用年轻动物。
因为绿色荧光Beads的激发光段比红色荧光Beads短,因此组织自发荧光是个麻烦,因此,应采用减少自发荧光的步骤以获得更理想的实验结果,这些方法有:(1)使用更薄的切片,如30微米比40或50微米理想;(2)使用年青的动物;(3)封片后立即观察拍照(随着时间增加背景也会增加)。
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我想用共聚焦观察间期染色体,用涂染探针,有一个问题很困扰我,我想涂染完染色后用DAPI复染细胞核,但是目前哈尔滨的共聚焦都没有紫外激发光,不能激发DAPI,我怎么才能实现,用红色涂一条染色体,用绿色涂另一条,用DAPI蓝色染核,同时成像呢,所说的双光子显微镜可以么?我实在很迷惑,求求版主别再删我的帖子,尽管我现在只是一个索取者,还不能给大家提供有用的信息,但是相信有一天会为大家做贡献的,谢谢了
是欢快活泼的光辉色彩,是暖色系中最温暖的色,它使人联想到金色的秋天,丰硕的果实;
是一种富足、快乐而幸福的颜色。让人感觉成一种稳重、含蓄又明快的温暖;
橙色也会带来一种甜甜的感觉。
(1)、分子内含有发射荧光的基团,如羰基、氮氮双键、碳氮双键等。
(2)、分子内含有助色基团。助色基团使光谱红移并增大荧光效率,如伯胺基、仲胺基、羟基、醚键、酰胺基等。
(3)、分子内含有刚性平面结构的共轭π键。分子内共轭体系愈大平面性愈强其荧光强度愈高。一些能提高共轭度的因素能提高荧光效率,并使荧光波长向长波方向移动。 就是荧光染料的附着物,主要作用有帮助荧光染料展色、提高荧光染料与下游树酯的相溶性、保护荧光染料的性能。通常载体树脂是强极性树脂,分子中含有胺基、羟基、醚键、酰胺基等强极性基团,一方面有助色作用,增大荧光效率;另一方面与荧光染料有很好的相溶性,有助于染料的均匀分散。
荧光颜料常用的载体树脂有胺基树脂、苯代三聚氰胺一甲醛树脂、聚丙烯酸酯树脂、聚酰胺树酯、聚酯树脂、聚氨酯树脂等。 (1)、热塑性荧光颜料:线型
(2)、热固性荧光颜料: 体型
(3)、可溶解色精荧光颜料
(4)、水乳型荧光颜料 (1)、胺基树酯
(2)、聚酰胺树酯
(3)、聚酯树酯
(4)、丙烯酸乳液 (1)、塑胶类
低温型
中温型
高温型
(2)、涂料类
水性涂料
油性涂料
粉末涂料 (1)、含甲醛
(2)、不含甲醛
荧光燃料使用的问题有两个:
一个就是迁移性,使用时要严格控制用量,以避免产生迁移现象;
二是荧光染料使用有一个极限值,如果超量使用,导致荧光线被吸收,使吸收和发光成叠所致。
碘化丙啶(propiolium iodide,PI)能嵌入DNA双螺旋中,可使荧光强度增加约20倍,以488nm波长激发,DNA/PI复合物最大的发射波长约为615nm.
1.小鼠Lewis肺癌细胞DNA含量测定方法
(1).从C57BL/6小鼠上切除肿块,在培养皿内用PBS冲洗.
(2).去除结缔组织及脂肪,剪碎肿块.
(3).小碎片移入1.20×38mm注射针,加压使其通过,于4℃条件下重悬细胞于HBSS中.
(4).将200~300μL细胞悬液(5×105细胞/mL)中加入3mL PI(50μg/mL),染色3LL细胞,于4℃存放20~30分钟.
(5).测定580~750nm之间的发射荧光,以去除末结合PI产生的激发光与发射光谱线之间的重叠部分.

