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凝胶DNA回收试剂盒说明书
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实验方法原理
试剂盒适合从各种琼脂糖凝胶中提取多至8μgDNA(70bp-10Kb),回收率为60-85%。琼脂糖凝胶在温和的缓冲液(DE-A溶液)中溶解,其中的保护剂能防止线状DNA在高温下降解,然后在DE-B溶液的作用下使DNA选择性结合到膜上。纯化的DNA纯度高,并保持片断完整性和高生物活性,可直接用于连接、体外转录、PCR扩增、测序、微注射等分子生物学实验。
 
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤
一、试剂盒组成、贮存、稳定性
 
1. 说明书,耗材:DNA制备管、2ml离心管、1.5ml离心管。
 
2. BufferDE-A:凝胶熔化剂,含DNA保护剂,防止DNA在高温下降解。室温密闭贮存。
 
3. BufferDE-B:结合液(促使大于70bp的DNA片段选择性结合到DNA制备膜上)。室温密闭贮存。若出现沉淀,应于70°C温育溶解并冷却至室温后再使用。
 
4. BufferW1:洗涤液,室温密闭贮存。
 
5. BufferW2concentrate:去盐液,使用前,根据瓶上数量加入乙醇,混合均匀,室温密闭贮存。可用
100%无水乙醇或95%乙醇。
 
6. Eluent:2.5mMTris-HCl,pH8.5,室温密闭贮存。
 
二、实验准备
 
1. 第一次使用前,BufferW2concentrate中加入指定体积的无水乙醇。
 
2. 准备无核酸和核酸酶污染的Tip头、离心管。
 
3. 准备75°C水浴。
 
三、操作步骤
 
1. 在紫外灯下切下含有目的DNA的琼脂糖凝胶,用纸巾吸尽凝胶表面液体并切碎。计算凝胶重量(提前记录1.5ml 离心管重量),该重量作为一个凝胶体积(如100mg=100μl体积)。
 
2. 加入3个凝胶体积的BufferDE-A,混合均匀后于75°C加热(低熔点琼脂糖凝胶于40°C加热),间断混合(每2-3min),直至凝胶块完全熔化(约6-8min)。
 
3. 加0.5个BufferDE-A 体积的BufferDE-B,混合均匀;当分离的DNA片段小于400bp时,加入1个凝胶体积的异丙醇。
 
步骤4-6可以选择负压法或离心法。
 
A. 负压法
 
4A. 正确连接负压装置,将DNA制备管插到负压装置的插口上。吸取步骤3中的混合液,转移到制备管中,开启并调节负压至-20-30英寸汞柱,缓慢吸走管中溶液。
 
5A. 加0.5mlBufferW1,吸尽管中溶液。
 
6A. 加0.7mlBufferW2,吸尽管中溶液。以同样的方法再用0.7mlBufferW2洗涤一次。
 
* 确认在BufferW2concentrate中已按试剂瓶上的指定体积加入无水乙醇。
 
B. 离心法
 
4B. 吸取3中的混合液,转移到DNA制备管(置于2ml 离心管)中,12000×g离心1min。弃滤液。
 
5B.将制备管置回离心管,加0.5mlBufferW1,12000×g离心30s,弃滤液。
 
6B. 将制备管置回离心管,加0.7mlBufferW2,12000×g离心30s,弃滤液。(可选步骤)以同样的方法再用0.7mlBufferW2洗涤一次12,000×g离心1min。
 
* 确认在BufferW2concentrate中已按试剂瓶上的指定体积加入无水乙醇。
 
7. 将制备管置于2ml离心管中,12000×g离心1min。
 
8. 将制备管置于洁净的1.5ml 离心管中,在DNA制备膜正中央加25-30μl 水或Eluent,室温静置1min。12000×g离心1min洗脱DNA。
注意事项
1. 在步骤1中,将凝胶切成细小的碎块可大大缩短凝胶熔化时间(线型DNA长时间暴露在高温条件下易于水解),从而提高回收率。勿将含DNA的凝胶长时间地暴露在紫外灯下,减少紫外线对DNA造成的损伤。
 
2. 在步骤2中凝胶必须完全熔化,否则将严重影响DNA回收率。
 
3. 将Eluent或水加热至65°C,有利于提高洗脱效率。
 
4.DNA分子呈酸性,建议在2.5mMTris-HCl,pH8.5洗脱液中保存。
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