用λ噬菌体 PL 启动子在大肠杆菌中表达克隆基因实验
实验材料 | 载体和细菌菌株PL表达载体阳性对照质粒 试剂、试剂盒 | 考马斯亮蓝染色溶液或银染溶液L-色氨酸SDS凝胶加样缓冲液SDS-聚丙烯酰胺凝胶靶基因或CDNA片段LB琼脂平板LB培养基M9基本培养基 仪器、耗材 | SorvallGSA转头或相当的转头沸水浴振荡培养器 实验步骤 | 材料 缓冲液和溶液 贮存液、缓冲液和试剂的成分参见附录1。 贮存液稀释至适当浓度。 考马斯亮蓝染色溶液或银染溶液 参见附录8。 1XSDS凝胶加样缓冲液 不含DTT的1xSDS凝胶加样缓冲液室温保存,1mol/LDTT贮存液现用现加于上述缓冲液。 L-色氨酸(10mg/ml) 凝胶 SDS-聚丙烯酰胺凝胶(10%) 用于分离蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶的制备参考附录8。 核酸和寡核苷酸 靶基因或cDNA片段 培养基 LB琼脂平板 LB培养基 根据所用载体在培养基中加入不同的抗生素。 加热到65°C的LB培养基 备选,参见步骤13。 M9基本培养基 灭菌后补加0.5%(m/V)葡葡糖,0.2%(m/V)酪蛋白酸水解物和所需抗生素,用于色氨酸诱导的表达载体。 离心机和转头 SorvallGSA转头或相当的转头 特别配备 沸水浴 设定为30°C和40°C的振荡培养器 只有使用λ噬菌体cI基因的温度敏感型等位基因时才需要。 补充试剂 本方案步骤1需要第8章方案7中所列试剂。 本方案步骤2需要第1章方案17或19中所列试剂。 本方案步骤3需要第1章方案23~26中所列试剂。 本方案步骤4需要第12章方案3中所列试剂。 载体和细菌菌株 带有λ噬菌体cI基因的cIts857等位基因或野生型等位基因的大肠杆菌菌株在M5219菌珠中是热诱导的clts857等位基因,在GI724菌珠(ATCC55151cI基因)中是色氨酸诱导的野生型cI基因。 PL表达载体(如pHUB,pPLc,pKC30,pASl,pCQV2,pAL-781和pTrxFus) 阳性对照质粒(表达已知大小融合蛋白的PL表达载体) 方法 含重组表达载体的大肠杆菌菌株的构建 1.PCR修饰(第8章方案7)或限制性内切酶消化分离DNA片段,片段5"端和3"端带有与PL表达载体对应的限制酶位点。 必要时可在cDNA/基因的ATG上游置入强的核糖体结合位点。 为确定扩增反应没有引入错误突变,应对PCR产物进行序列分析。 2.靶cDNA/基因的DNA片段与表达载体连接(第1章方案17或19)。 3.连接产物转化含有cIts857等位基因或野生型cI基因的大肠杆菌菌株。将转化体铺于含相应选择抗生素的LB平板(通常为50ug/ml的氨苄青霉素),于30°C(含有cIts857等位基因)或37°C(含有色氨酸诱导的野生型cI基因)过夜培养。 空的表达质粒转化相同的大肠杆菌菌株作阴性对照。 4.通过菌落杂交和/或小量制备质粒的限制酶切分析、寡核苷酸杂交或序列分析筛选带有插入片段的转化体(请参见第12章方案3)。 诱导靶蛋白表达的优化 许多研究表明细胞生长速率严重影响外源蛋白的表达,因此必须对接种细菌量、诱导前细胞生长时间和诱导后细胞密度进行控制。生长过度或过速都会加重细菌合成系统的负担,导致形成包涵体。 5.通过提髙温度或加入色氨酸,下调cI阻抑蛋白,诱导靶蛋白表达,筛选最佳表达条件。 影响诱导表达的因素请参见方案1步骤8的注解。 对于溫度诱导系统 a.对照菌和重组菌分别挑取1~2个菌落,接入1ml含所需抗生素的LB培养液,30°C培养过夜。 编码己知大小蛋白的表达载体作阳性对照。 b.取50ul接入10ml含抗生素的LB培养液,在50ml摇瓶中于30°C培养至对数中期(A550=0.5?1.0)。 c.吸出lml未经诱导的培养物放在一个微量离心管中,按下面步骤6和7所述进行处理。 d.调整温度至40°C,诱导剩余培养物。继续步骤6。 尽管在本书其他章节中采用42~45°C灭活λ噬菌体cIts857阻抑物,但此处采用40°C以便减少热激蛋白的诱导并使细菌能够继续生长。 对于色氨酸诱导系统 a.含空载体和重组表达载体的大肠杆菌(带有cI野生型等位基因)分别挑取1~2个菌落,接入1ml补充M9培养液,37°C培养过夜。 编码已知大小蛋白的表达载体作阳性对照。 b.取50ul接入10ml补充M9培养液,在50ml摇瓶中于37°C培养至对数中期(A550=0.5~1.0)。 c.吸出1ml未经诱导的培养物放在一个微量离心管中,按下面步骤6和7所述进行处理。 d.剩余培养物中加入色氨酸至终浓度100ug/ml,37°C继续培养。 6.诱导不同时间(如1、2、4和6h)后取1ml样品放于微量离心管中,测定A550,室温高速离心1min。 7.沉淀悬于100ul1XSDS凝胶加样缓冲液,100°C加热3min,室温高速离心lmin,冰上放置,待全部样品处理完后上样。 8.样品加热至室温,取40ug或相当于0.15OD550培养物的悬液上样于10%SDS聚丙烯酰胺凝胶。 9.8~15V/cm电泳,至溴酚兰迁移到分离胶底部。 10.考马斯亮蓝染色或银染,或免疫印迹,观察表达产物条带(见附录8)。 未转化的大肠杆菌细胞和转化了空载体的细胞,蛋白质带形应该没有区别。诱导一定时间的重组菌应有一条与预计大小一致的带。 大量表达靶蛋白 11.挑取一个重组大肠杆菌菌落接入50ml含抗生素的LB培养液或补充M9培养液, 在250ml摇瓶中于30°C或37°C过夜培养。 12.取50ml过夜培养物接入450ml含抗生素的LB培养液或补充M9培养液,在2L摇瓶中于30°C或37°C振荡培养至对数中期(A550=0.5~1.0),按步骤13或14进行诱导。 13.加入500ml加热至65°C的13培养基,诱导带cIts857等位基因的大肠杆菌。40°C培养预试验确定的最佳时间。或者于室温以12000g(8600r/minSorvall转头)离心5min收集细胞,沉淀重悬于500ml40°C的LB培养基,40°C继续培养预试验确定的最佳时间。 14.加入色氨酸至终浓度100ug/ml,诱导带cI等位基因的大肠杆菌。37°C继续培养预试验确定的最佳时间。 15.诱导适当时间后,于4°C以5000g(5500r/minSorvallGSA转头)离心15min收集细胞,继续后面的纯化方案: •如果表达的是GST融合蛋白,继续方案5 •如果表达的是麦芽糖结合蛋白融合蛋白,继续方案6 •如果表达产物带有组氨酸标签,继续方案7 |
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发布于 : 2018-08-03
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